利用SRAP检验棉花种子纯度

2018-11-22 11:06王桂峰魏学文王琰宋焕
棉花科学 2018年4期
关键词:纯度检验

王桂峰 魏学文 王琰 宋焕

摘要: SRAP是一种新型的基于PCR的标记系统,分别利用SRAP技术和田间种植鉴定方法对对鲁垦棉33号、仁和39号、鲁棉研18号、中植棉2号、鲁棉研36号共5个棉花品种进行纯度的鉴定,结果表明:SRAP鉴定结果与田间种植鉴定结果的一致性较好,利用SRAP标记进行种子纯度鉴定,替代田间种植鉴定,操作简便,鉴定快速经济高效,同时可以克服田间种植鉴定周期长、易受环境影响等缺点。

关键词:棉花种子;纯度;检验;SRAP

中图分类号:S562.091 文献标识码:A 文章编号:2095-3143(2018)04-0002-05

DOI:10.3969/j.issn.2095-3143.2018.04.001

0 引言

种子纯度,作为评价农作物种子质量的最重要指标之一,只有达到相关规定的要求,才能真正发挥品种在产量、品质和抗逆等方面的优良特性。檢验农作物品种种子纯度的方法主要包括大田形态鉴定、生化标记鉴定和分子标记鉴定等三种方法。其中,大田形态标记鉴定所需周期长,存在误差大,且对性状差异小的品种鉴定难度高;生化标记鉴定则受制于组织或器官特异性,存在较大的局限性。棉花种子纯度鉴定技术是业界的一大难题[1-5]。分子标记技术的发展,为品种鉴定提供了新的途径。多种分子标记方法已开始用于品种纯度和真伪的检验,也为棉花种子纯度检验提供了理论和可行方法。为此,项目组引进了相关序列扩增多态性(Sequence Related Amplified Polymorphism,SRAP)技术,开展棉花种子纯度鉴定,为保证棉种质量提供了技术基础。

SRAP是一种新型的基于PCR的标记系统,通过设计一对独特的引物,对基因的开放阅读框(Open reading frames,ORFs)的特定区域进行扩增,该技术由美国加州大学蔬菜作物系Li等于2001年提出[6]。上游引物(Forward primer)长17bp,包括5?端14bp的核心序列和3?端3bp选择性碱基,其中核心序列前10bp为填充序列,无任何特异组成,后接“CCGG”序列特异结合G、C含量丰富的外显子;下游引物(Reverse primer)长18bp,包括5?端15bp的核心序列和3?端3个选择碱基,其中核心序列前11bp为填充序列,接着是“AATT”序列,特异结合A、T含量丰富的启动子和内含子。由于不同个体以及物种的内含子、启动子和间隔序列变异很大,利用该引物对外显子区域、内含子区域和启动子区域进行特异扩增,从而产生多态性。

SRAP技术的引物具有简便、稳定、高效、产率高、易测序、便于克隆目标片段等特点,目前已经广泛应用于小麦、玉米、烟草、花生、萝卜等多种作物的遗传多样性分析、遗传连锁图谱的构建、种质鉴定、重要性状的标记以及相关基因的定位克隆等方面[3,5,7-11]。

本研究从实用的目的出发,利用SRAP技术对棉花品种进行鉴定和种子纯度分析,同时参考田间鉴定结果,为棉花种子纯度鉴定提供一个实用、快速、准确、可行的鉴定方法。

1 材料与方法

1.1 植物材料与取样方法

试验选用山东省棉花原原种场保存的不同种质资源RM0001~RM0027及繁育较多的鲁垦棉33号、仁和39号、鲁棉研18号、中植棉2号及鲁棉研36号等品种为实验材料。每个品种选取单株的幼叶,液氮速冻,-80℃保存,用于DNA提取。

1.2 DNA提取与PCR扩增

利用CTAB法提取棉花DNA。本实验所有SRAP引物(表1)按照Li等提出的原则设计,委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成,用于PCR的Taq酶购自TaKaRa公司。按照试剂盒说明书配制20μlPCR扩增体系,PCR扩增在LabCycler 48(SensoQuest GmbH, G?ttingen, Germany)PCR仪上进行,程序为:94℃变性5 min;94℃变性60 s,35℃退火60 s,72℃延伸60 s,共5个循环;94℃变性60 s,50℃退火60 s,72℃延伸60 s,共35个循环;72℃延伸5 min;4℃保存。

1.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳

电泳系统采用北京六一电泳仪,扩增产物经6%的非变性聚丙烯胺凝胶电泳检测,180V恒压电泳90 min。

1.4 银染检测

电泳结束后,用蒸馏水稍微冲洗凝胶,按以下方法银染: 10%(V/V)乙醇和0.5%(V/V)冰乙酸固定15 min,;0.2% AgNO3溶液银染20 min;蒸馏水漂洗5s左右,0.002%(wv)硫代硫酸钠的水溶液漂洗2 min;用1% NaOH和0.5%甲醛溶液显色至谱带清晰;0.75%Na2CO3溶液终止显色。之后自来水反复漂洗几次,减少甲醛残留。

1.5 SRAP引物的筛选

用棉花品种RM0001、RM002,对81对引物进行筛选,从而筛选出可用于鉴定不同棉花品种种子纯度的多态性引物。

1.6 遗传多态性分析

用筛选出的引物对RM0001~RM0027以及鲁垦棉33、仁和39、鲁棉研18号、中植棉2及鲁棉研36号进行PCR扩增,并记录扩增情况,按下列公式对各对引物的多态性信息进行统计:引物的多态性比率(%)=多态性条带数/总条带数×100%。

1.7 田间种植鉴定分析

分别于鲁垦棉33号、仁和39号、鲁棉研18号、中植棉2及鲁棉研36号共5个品种的繁育田内随机选取100株,根据个品种的典型性状,对品种植株和杂株进行区分,从而进行田间种植鉴定。

2 结果与分析

2.1 SRAP引物的筛选

利用上文优化的SRAP反应体系,以棉花品种RM0001、RM002筛选81对SRAP引物组合。筛选结果表明,79对SRAP引物扩增出条带,并从79对引物中选择23对条带清晰、稳定性高、重复性好的SRAP引物,对棉花材料进行指纹图谱检测,结果见图1。

2.2 遗传多态性分析

利用23对SRAP引物,以32份棉花材料的DNA为模板进行PCR扩增,不同引物对在不同棉花品种中的扩增结果见表2。结果表明, 152个多态性位点被检测到,多态性位点比例为73.08%,平均每对引物6.9个多态性位点。其中, ME1-EM6和ME3-EM8引物检测到的多态性位点最多,各为10个;ME5-EM4引物检测到的多态性位点最少,为2个。

由于ME1-EM8与ME6-EM6引物对多态性较高,重复性好,稳定性高,能够有效地区分5个棉花品种。因此,本实验采用这2对引物对棉花品种种子纯度进行鉴定分析。

2.3 5种棉花品种纯度鉴定

利用ME1-EM8与ME6-EM6两个引物组合对5种棉花品种进行SRAP纯度鉴定,结果表明,5个种棉花品种的纯度分别为95.311%,97.873%,95.102%,94.799%和95.123%。SRAP纯度鉴定结果与田间种植纯度鉴定结果符合率分别为96.27%,98.86%,98.04%,98.75%和98.06%(表3)。

3 讨论

3.1 关于SRAP扩增谱带的取舍

SRAP扩增产物在基因组中的拷贝数,以及引物及模板的同源性程度均与SRAP扩增条带的强弱有关。所以,SRAP引物作为DNA多态性标记重要的取舍标准是重复性,同时也要兼顾PCR扩增条带的强弱程度。因为如果某一样品模板DNA质量较差,则会造成该样品的PCR扩增条带较弱;如果SRAP引物与模板DNA的匹配程度低,尤其当退火温度升高时,可能会多扩增的稳定性造成影响,从而造成某一个体的大部分带与其它个体强度一致,但仅有一条或少数几条条带较弱的现象。所以,利用SRAP技术对一个扩增位点鉴定分析时,为了提高鉴定的稳定性,需要进行全面的鉴定分析比较。即鉴定时应进行多次重复,选取多态性好、稳定性强的引物对,用于鉴定分析,同时选取稳定性高的条带进行统计记录。

3.2 利用SRAP標记鉴定棉花品种种子纯度的准确性与真实性的影响因素

理论上,SRAP技术是在分子水平上对基因型进行鉴定,其结果可靠、准确。本质上,SRAP技术是PCR扩增反应,因此从采集样品、编号、提取DNA等过程均应做到准确、一致而且无交叉污染,从而保证实验的准确真实。再者,PCR反应条件与PCR结果假阳性也是重要的影响因素,选择高效的Taq酶和适宜的退火温度,可以保证PCR扩增产物的特异性和稳定性。因此,应选择扩增条带简单、退火温度影响不大或对扩增条件不敏感的SRAP引物进行PCR反应。其次,由于影响PCR扩增反应的因素较多,因此需要对不同鉴定材料以及不同品牌的PCR相关试剂进行优化,确保PCR反应体系和程序适宜,从而提高鉴定结果的准确和真实。最后,利用SRAP技术进行种子纯度鉴定时,是对ORFs进行PCR扩增,所以鉴定时使用的引物对越多,鉴定结果的可靠性越高,但成本也随之提高。综上,利用SRAP技术进行种子纯度鉴定时,选择多态性高、稳定性好的SRAP引物对,以便达到鉴定种子纯度的目的。

3.3 利用SRAP标记鉴定棉花品种种子纯度的可行性分析

通过对5种棉花纯度的鉴定表明,SRAP鉴定结果与田间种植鉴定结果的一致性较好,因此,可以选择SRAP标记进行种子鉴定,以替代田间种植鉴定,从而克服其鉴定周期长、易受环境影响等缺点。同时,作物品种种子纯度鉴定,不仅要求简便、快速、准确,还要考虑经济成本因素。在进行种子纯度鉴定时,SRAP技术是通过独特的引物设计对ORFs进行PCR扩增,只需改变引物3′端的3bp的选择性碱基即可得到大量的引物对,且上游引物与下游引物可自由搭配,因此用少量的引物即可获得多种引物组合,具备操作简便,鉴定快速经济高效的特点。

参考文献

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