王雅宁 蔺 超 刘云启 高金祥 刘益涛 高 洁
(滨州医学院附属医院肾内科,山东 滨州 256603)
在长期腹膜透析过程中,腹膜结构和功能的改变与腹膜血管生成密切相关,越来越多证据表明,腹腔局部血管内皮生长因子(VEGF)的上调是其中心环节〔1,2〕。成人VEGF主要通过与其受体VEGFR1(Flt-1)、VEGFR2(Flk-1/KDR)结合发挥生物学效应。此外,Flt-1基因尚编码一种可溶性的形式sFlt-1,其与VEGF有很强的亲和性,与之结合后即阻断VEGF的一系列分子生物学效应〔3〕。与长期腹膜透析腹膜损害有关的诸多因素,如透析液的生物不相容性、葡萄糖降解产物(GDP)、腹腔慢性炎症等均可影响腹腔局部VEGF表达〔4〕。本文旨在探讨不同腹膜透析液对大鼠腹膜间皮细胞(RPMCs)VEGF及其受体表达及分泌的影响。
1.1材料 清洁级SD雄性大鼠,体重150~180 g,由山东大学实验动物中心提供。主要试剂:DMEM/F12培养基、DMEM培养基、胎牛血清(FBS,美国Gibco),Trizol试剂(Ambion公司),腹膜透析液(美国Baxter公司),RT试剂盒(Fermentas公司),鸡抗大鼠VEGFR2抗体(Prosci公司),兔抗大鼠VEGFR1抗体(Labvison公司),小鼠抗大鼠GAPDH抗体、小鼠二抗、兔二抗(美国CST公司),鸡二抗(Upstate公司),鼠VEGF及sFlt-1酶联免疫吸附试验(ELISA)试剂盒(R&D公司)。
1.2RPMCs的分离培养及鉴定 取SD雄性大鼠,腹腔内注射含0.25%胰酶及0.02%乙二胺四乙酸(EDTA)溶液进行消化。120 min后无菌操作下剖开大鼠腹腔,吸取腹腔内液体,置15 ml离心管,1 500 r/min离心10 min,弃上清。DMEM/F12(含0.5%FBS)洗涤1次,离心弃上清。加入含12%FBS的DMEM/F12培养基,将细胞打散为均匀悬浮液,接种于25 cm2培养瓶中,置于37℃ 5% CO2培养箱中培养。待90%~95%细胞融合,消化传代。第2代细胞经形态鉴定及抗细胞角蛋白抗体、抗Ⅷ因子抗体免疫组织化学鉴定,确定为腹膜间皮细胞后,用于下游试验。
1.3不同腹膜透析液对RPMCs VEGF及其受体表达的影响 稳定培养的第1代RPMCs消化传代,同步化培养24 h后,分别以不同腹膜透析液〔1.50%葡萄糖腹膜透析液(dextrose)(低糖组)、2.50% dextrose(中糖组)、4.25% dextrose(高糖组)、7.50% icodextrin(糊精组)〕进行刺激培养,无血清DMEM为阴性对照(对照组),刺激24 h后收集细胞,提取核酸及蛋白以供检测。
1.4RT-PCR检测RPMCs的VEGF、VEGFR1、VEGFR2和sFlt-1 mRNA表达 冲洗RPMCs后,按照Trizol试剂盒说明书提取细胞总RNA,随后取2 μg RNA,按逆转录试剂盒说明书合成cDNA。基因序列通过GenBank获得,引物设计由PRIMER5.0软件按照引物要求完成,由上海英骏公司合成。VEGF:上游 5′-CCACGACAGAAGGGGAGCA-3′,下游5′-ACACCGCATTAGG GGCACA-3′;VEGFR1:上游5′-CAAGGGACTCTACAC TTGTC-3′,下游5′-CCGAATAGCGAGCAGATTTC-3′;VEGFR2:上游5′-GCCAATGAAGGGGAACTGAAGAC-3′,下游5′-TCTGACTGCTGGTGATGCTGTCA-3′;sFlt-1:上游5′-AATCTGCTCGCTATTCGGTG-3;下游5′-GTGGGTAGAGAGGTGGGCTT-3′;GAPDH:上游5′-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3′,下游5′-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3′。反应结束后取10 μl PCR产物以1.5%琼脂糖凝胶电泳,溴乙锭(EB)染色,凝胶成像系统成像及进行扫描定量分析,以其所测得积分吸光度与内参照GAPDH积分吸光度的比值代表半定量值。
1.5Western印迹检测RPMCs的VEGFR1、VEGFR2蛋白表达 裂解细胞后,置于冰上,4℃ 10 000 r/min离心10 min,收集上清,测蛋白浓度。取20 μl总蛋白上样于7%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE)凝胶电泳分离,湿法转膜,5%脱脂奶粉室温1 h。分别加入兔抗大鼠VEGFR1抗体,鸡抗大鼠VEGFR2抗体,小鼠抗大鼠GAPDH抗体,4℃孵育过夜。以辣根过氧化物酶(HRP)标记的相应二抗孵育1 h,洗膜;电化学发光(ECL)显影,自动成像系统成像并分析。
1.6ELISA检测RPMCs培养上清中VEGF及sFlt-1蛋白表达 收集细胞培养上清,离心去除细胞碎片。15 min内加完所有样本,具体步骤按照说明书进行。
1.7统计学方法 采用SPSS17.0软件进行单因素方差分析。
2.1大鼠腹膜间皮细胞的培养和鉴定 常规培养的大鼠腹膜间皮细胞生长至融合状态后呈现多边形、菱形、椭圆形,大小不等,具有典型的鹅卵石状或铺路石样上皮细胞形态,抗大鼠角蛋白(Keratin)、波形蛋白(Vimentin)阳性,证实为腹膜间皮细胞见图1。
图1 大鼠腹膜间皮细胞的鉴定
2.2各组RPMCs VEGF及其受体mRNA表达 中糖组、高糖组VEGF、VEGFR1、sFlt-1 mRNA表达水平显著高于低糖组、糊精组及对照组(均P<0.01),低糖组与糊精组明显高于对照组(均P<0.05),低糖组与糊精组差异无统计学意义(P>0.05)。中糖组、高糖组VEGFR2 mRNA表达显著低于低糖组、糊精组及对照组(均P<0.01),低糖组与糊精组VEGFR2 mRNA表达低于对照组(P<0.05),低糖组与糊精组差异无统计学意义(P>0.05),见表1,图2。
图2 各组RPMCs的VEGF、VEGFR1、sFlt-1和VEGFR2 mRNA表达
组别VEGF mRNAVEGFR1 mRNAsFlt-1 mRNAVEGFR2 mRNA对照组0.236±0.0191)0.118±0.0111)0.131±0.0121)1.234±0.1091)低糖组0.578±0.0231)2)0.203±0.0181)2)0.364±0.0321)2)0.882±0.0651)2)中糖组0.976±0.1100.685±0.0490.782±0.0510.276±0.019高糖组1.146±0.2140.981±0.0780.912±0.1160.193±0.012糊精组0.553±0.0421)2)0.211±0.0211)2)0.385±0.0141)2)0.891±0.0861)2)
与中糖及高糖组比较:1)P<0.01;与对照组比较:2)P<0.05
2.3各组RPMCs VEGF及其受体蛋白表达比较 Western印迹法结果显示,中糖组、高糖组VEGFR1蛋白表达水平显著高于低糖组、糊精组及对照组(均P<0.05),低糖组与糊精组差异无统计学意义(P>0.05);中糖组、高糖组VEGFR2蛋白表达显著低于低糖组、糊精组及对照组(均P<0.01),低糖组明显低于对照组(P<0.01);ELISA结果显示,中糖组、高糖组VEGF、sFlt-1表达水平显著高于对照组(P<0.05),高糖组显著高于低糖组及糊精组(P<0.05),低糖组与糊精组差异无统计学意义(P>0.05),见图3,表2。
图3 各组RPMCs的VEGFR1和VEGFR2蛋白表达
组别VEGF(pg/ml)sFlt-1(pg/ml)VEGFR1VEGFR2对照组236.7±25.4113.1±27.30.142±0.0120.703±0.081低糖组325.3±30.2123.2±21.60.245±0.0270.452±0.0273)中糖组437.2±33.74)152.8±25.44)0.487±0.0321)4)0.211±0.0182)3)高糖组528.1±36.51)4)198.7±36.11)4)0.602±0.0461)4)0.122±0.0102)3)糊精组318.0±28.9121.9±19.90.250±0.0150.649±0.059
与低糖组及糊精组比较:1)P<0.05,2)P<0.01;与对照组比较:3)P<0.01,4)P<0.05
在腹膜透析过程中,腹腔长时间暴露于传统的含糖腹膜透析液可引起腹膜功能改变、腹膜间皮细胞丢失、血管增生及腹膜纤维化,血管增生可导致腹膜有效表面积增大,溶质转运系数增加,最终导致超滤衰竭〔5〕。研究表明,腹腔局部VEGF的上调是其中心环节〔6,7〕。动物模型表明,高乳酸盐浓度、转化生长因子(TGF)-β1、低pH等均可促使腹膜血管生成、VEGF合成增加。Bajo等〔8〕证实,用传统的腹透液刺激腹膜间皮细胞后,E-钙黏蛋白(cadherin)表达减少,细胞形态发生改变,VEGF表达增加,而接受低GDP腹透液刺激的细胞则无上述变化。VEGF家族成员包括VEGF-A、VEGF-B、VEGF-C、VEGF-D、VEGF-E和胎盘生长因子(PLGF),其中VEGF-A(通称VEGF)是目前发现最为重要的血管生成正性调节因子,主要通过结合VEGFR1(Flt-1)和VEGFR2(Flk-1/KDR)发挥分子生物学效应〔9,10〕,此外,Flt-1基因仅由选择性剪切的6个Ig区域组成,与VEGF有很强的亲和性。VEGF与受体结合后可迅速增加细胞内Ca2+水平,通过磷酸肌醇特异性磷脂酶C途径,使细胞内IP3水平升高,促进新生血管生成、增加血管通透性。Io等〔11〕研究发现,腹膜组织中VEGF及VEGFR-1 mRNA表达增加,在第21和35 d达到高峰,与本文结果趋势一致。Zhang等〔12〕在尿毒症患者腹膜血管壁检测出了VEGFR1和VEGFR2,且VEGFR2与腹膜微血管密度、小分子溶质转运速率及24 h腹膜蛋白排泄密切相关,提示VEGFR2可能是腹膜基线转运特征的重要决定因子。与本研究结果不同,可能与体内检测的是腹膜组织总VEGFR2表达,而本研究仅检测腹膜间皮细胞VEGFR2表达有关。此外,由于sFlt-1缺乏酪氨酸激酶结构域,没有信号转导功能,当sFlt-1出现后与VEGFR1竞争PLGF、VEGF,与VEGFR2竞争VEGF,也是细胞接受刺激后VEGFR2下调的原因〔13〕。最近研究显示,VEGF的高水平可预测患者的全因死亡率,升高的sFlt-1与炎症因子可联合增加患者全因死亡率的风险;此外,sFlt-1同内皮细胞损伤的标志物细胞间黏附分子(ICAM)-1、血管细胞黏附分子(VCAM)-1正相关,VEGF和sFlt-1同C反应蛋白及白细胞计数相关〔14,15〕,提示VEGF及sFlt-1通过促使炎症细胞趋化参与炎症过程〔16〕,其潜在的病理生理学作用可能为在细胞激活过程中,使其更容易受到炎症因子的攻击,甚至同炎症因子有协同作用〔17〕。糊精腹膜透析液含7.5%多聚葡萄糖,由谷物淀粉水解后产生,其85%分子量在16 800~45 000 D,只有6%分子量小于16 800 D。由于其分子量较大,不能通过腹膜上的小孔吸收,只能通过液体的对流缓慢吸收,故能长时间维持有效渗透压浓度,在高转运及高平均转运患者能改善超滤〔4,18〕,且由于其渗透浓度低,较少形成糖基化终产物,故较dextrose生物相容性更好〔19〕,此外,有研究证实,糊精腹膜透析液能更好地保护残余肾功能〔20〕。有文献报道,7.5% icodextrin也会使腹膜间皮细胞增殖和活力下降,细胞内活性氧增加,细胞功能下降,但和1.5% dextrose调节水平一致,且低于4.25% dextrose〔19〕,与本文结果趋势基本一致。笔者推测,7.5% icodextrin对于VEGF系统的调节是其生物相容性较好的机制之一。综上,腹膜透析液能显著上调VEGF及其受体VEGFR1、sFlt-1的表达,下调VEGFR2的表达,以2.5% dextrose及4.25% dextrose 最为显著,7.5% icodextrin对VEGF及其受体的调节水平低于2.5% dextrose及4.25% dextrose,从新的角度证实了icodextrin具有良好的生物相容性,但VEGF的受体在透析液刺激下发生上述变化的意义还待动物模型证实。