徐玉钰 马泽刚
[摘要]目的探讨α突触核蛋白A53T转基因小鼠早期认知功能的改变及其可能的机制。
方法选取3月龄α突触核蛋白A53T转基因小鼠和野生型小鼠,采用新物体识别和转棒仪实验观察小鼠的认知及运动功能,采用Western Blot方法观察小鼠海马和前额叶皮质内脑源性神经营养因子(BDNF)表达,采用免疫组织化学的方法观察小鼠黑质多巴胺能神经元数目。
结果新物体识别实验表明,与野生型小鼠相比,A53T转基因小鼠出现认知功能障碍。Western Blot检测显示,A53T转基因小鼠的海马和前额叶皮质内BDNF的表达较野生型小鼠下调(t=2.584、4.189,P<0.05)。A53T转基因小鼠在旋转棒上的停留时间与野生型小鼠相比差异无显著性(P>0.05),黑质多巴胺能神经元的数目与野生型小鼠相比也无明显改变(P>0.05)。
结论3月龄A53T转基因小鼠出现认知功能障碍且早于运动症状的发生。
[关键词]A53T小鼠;认知功能障碍;帕金森病;脑源性神经营养因子
[中图分类号]R741
[文献标志码]A
[文章编号] 20965532(2018)02020204
帕金森病(PD)是一种常见的神经退变性疾病,其病理表现主要是黑质致密部多巴胺(DA)能神经元的选择性死亡和脑内路易小体的形成[13]。α突触核蛋白是PD特征性病理标志物路易小体的主要成分,在黑质DA能神经元中广泛存在[45]。在某些因素作用下,α突触核蛋白可发生构象变化形成聚集体,并引起DA能神经元的死亡[4,6]。PD经典的运动症状包括静止性震颤、肌强直、运动迟缓和姿势不稳等[7]。然而,一些非运动症状如嗅觉障碍、认知
[LL]能力下降、记忆力减退等可在运动症状出现之前发生或伴随着运动症状而发生[812]。目前,PD的研究多集中在黑质纹状体系统上。但有研究表明,只有当黑质区DA能神经元损伤或缺失达到80%以上时,才能出现明显的运动症状[13]。因此,对PD早期非运动症状进行研究并在发病前及时干预,将有利于延缓或阻止PD的发病进程。α突触核蛋白A53T转基因小鼠携带了人突变型α突触核蛋白A53T基因,且其运动症状出现较晚,可模拟PD发病过程中神经病理学过程的改变,是研究PD早期非运动症状的理想实验模型。本研究以该模型鼠为实验对象,探讨PD早期认知功能的改变以及可能的机制。现将结果报告如下。
1材料与方法
1.1实验材料和动物
实验所用试剂除做特别说明外,均购自美国Sigma公司。脑源性神经营养因子(BDNF)抗体为美国abcam公司产品,βactin抗体为中国博奥森公司产品。选取20只雄性健康3月龄C57/BL6小鼠(其中A53T转基因小鼠和野生型小鼠各10只),体质量(22±2)g,由安徽博源实验动物有限公司提供。小鼠饲养温度为(19±2)℃,12 h/12 h昼夜自動循环光照,自由进食、饮水。
1.2实验方法
1.2.1转棒实验转棒实验可以评估小鼠的运动协调能力。小鼠首先被放置在静置的转棒上适应2 min,然后旋转杆以4~40 r/min均匀加速共5 min。实验期间,小鼠掉下转棒或在转棒上连续跑超过5 min,系统会自动停止,并记录小鼠停留在旋转杆上的时间。实验每天测试3次,连续3 d,取平均值。每次测试时间间隔不小于1 h。
1.2.2新物体识别该实验周期为5 d。前3 d是适应期:每只小鼠放置在测试箱内熟悉环境,测试箱内不放置任何物品,10 min后把小鼠放回原饲养笼内。第4天为熟悉期:将小鼠放回装有两个完全相同物体的测试箱中,让小鼠自由探索,训练持续10 min。第5天为测试期:先让小鼠在测试箱内自由探索两个相同的物体10 min,1 h后进行记忆测试。测试期和熟悉期过程类似,只是测试箱内的两个相同的物体中的一个被改变,测试5 min。每次测试结束后,用体积分数0.75乙醇清洗物体和箱子,以减少物体上的气味。如果小鼠在1 cm之内指向或用鼻子触及物体,则视为探索行为。用摄像机记录测试视频,离线分析并记录小鼠对新旧物体的探索时间。
1.2.3酪氨酸羟化酶(TH)阳性神经元免疫荧光化学染色行为学实验结束后,每组取5只小鼠用80 g/L水合氯醛(400 mg/kg,腹腔注射)麻醉,先用37 ℃生理盐水灌注心脏15 min,待流出的液体变清澈后,快速换成40 g/L多聚甲醛灌注10 min,然后在冰上快速断头取脑。用40 g/L多聚甲醛在4 ℃下固定6 h,300 g/L蔗糖脱水24~48 h后,用包埋液将整个脑组织包埋后,进行连续冠状切片,切片厚度为20 μm。将收集的脑片放置在24孔板中,进行黑质区TH阳性神经元荧光染色及计数。1×PBS冲洗3次后,将脑片放置在配置好的兔抗小鼠TH一抗(1∶2 000)中,每孔300 μL,4 ℃摇床过夜。1×PBS冲洗3次后,每孔加入300 μL的山羊抗兔荧光二抗(1∶500),室温避光孵育2 h。1×PBS冲洗3次后,将脑片贴于载玻片上并用体积分数0.70甘油封片。使用蔡司显微镜进行扫描,计数黑质区TH阳性神经元总数。
1.2.4Western Blot方法检测海马和前额叶皮质BDNF蛋白的表达行为学实验后,每组取5只小鼠,冰上快速断头取脑,分离出左右两侧海马和前额叶,分别称质量后保存于-80 ℃备用。每4 mg组织中加入100 μL混合裂解液(RIPA与PMSF以体积分数99∶1混合而成),研磨成匀浆,于冰上静置裂解30 min。4 ℃下以12 000 r/min离心20 min,吸出上清,应用BCA法测定蛋白浓度。蛋白经过SDSPAGE电泳并湿转至0.22 μm的PVDF膜上。切出带有目的蛋白的条带,用50 g/L脱脂奶粉在室温下封闭2 h,分别用BDNF(1∶500)、βactin(1∶10 000)一抗于4 ℃摇床孵育过夜。TBST洗膜后,分别用羊抗鼠HRPIgG(1∶10 000)和羊抗兔HRPIgG(1∶10 000)二抗室温孵育1 h。用ECL发光液进行显影,用LSUVP Vision WorksTM LS软件扫描后进行统计分析。
1.3统计学分析
采用Graphpad prism 5软件进行统计分析,计量资料数据以[AKx-D]±s表示,两独立样本均数比较采用 Students t检验。P<0.05表示差异有显著性。
2结果
2.1A53T转基因与野生型小鼠认知功能比较
实验结果表明,A53T转基因小鼠对新物体的探索时间为(52.70±4.96)s,对旧物体的探索时间为(45.24±2.51)s,A53T转基因小鼠对新旧物体的探索时间比较差异无显著性(P>0.05);野生型小鼠对新物体的探索时间为(62.23±4.32)s,对旧物体的探索时间为(44.87±1.79)s,野生型小鼠对新物体的探索时间明显长于对旧物体的探索时间(t=3.283,P<0.01)。两组小鼠对新旧两种物体的总探索时间差异无显著性(P>0.05)。
2.2A53T转基因与野生型小鼠海马和前额叶皮质BDNF蛋白水平比较
A53T转基因小鼠与野生型小鼠海马的BDNF
水平分别为0.691 8±0.063 4和1.025 0±0.112 1,两组比较差异有显著意义(t=2.584,P<0.05)。A53T转基因小鼠与野生型小鼠脑前额叶皮质的BDNF水平分别为0.300 8±0.033 4和0.466 6±0.023 7,两组相比较差异有统计学意义(t=4.189,P<0.01)。
2.3A53T转基因小鼠和野生型小鼠运动协调能力比较
野生型小鼠停留在旋转杆的时间为(267.1±7.4)s,A53T转基因小鼠为(274.8±10.0)s,两组比较差异无显著性(P>0.05)。
2.4A53T转基因小鼠和野生型小鼠黑质区TH阳性神经元数目比较
野生型小鼠的黑质区TH阳性神经元为(6 945±
261)个,A53T转基因小鼠为(6 194±316)个,两组比较差异无显著性(P>0.05)。
3讨论
DA作为重要的神经递质,可控制情绪和运动能力[14]。本文研究结果显示,3月龄A53T转基因小鼠运动协调能力并无改变,且其黑质区DA标志物TH阳性神经元数目也没有明显改变,提示3月龄A53T转基因小鼠黑质区无明显损伤。推测调节运动功能的纹状体DA含量可能也没有明显变化,这可能是A53T转基因小鼠运动协调能力无明显障碍的原因之一。
本文研究结果显示,A53T转基因小鼠早期出现认知功能下降,海马和前额叶皮质的BDNF水平出现了下调。众所周知,海马和额叶皮质与学习记忆有着内在的联系,但目前尚不清楚这两个区域的损伤是否与认知功能障碍有关。但研究表明,海马损伤可能导致动物和人的空间记忆障碍[15]。另外,BDNF被认为是神经元存活的主要调节因子[1618],BDNF基因的变化也与神经退行性疾病的發病有关[1921]。
[HJ2mm]
BDNF是维持神经元完整性和促进神经细胞生长与分化的重要调节因子,其主要表达于中枢神经系统的神经元内[2223]。另外,BDNF还有修复受损神经元,调节神经突触功能以及参与学习记忆的功能[24]。BDNF不仅在神经胶质细胞和DA能神经元中广泛分布,并且也分布在中枢神经系统的其他神经元中[2526]。本文研究结果显示,海马和前额叶的BDNF水平均下调,这可能是A53T转基因小鼠认知能力下降的一个原因。有研究结果表明,
在黑质区中正常浓度的α突触核蛋白可以同步提
[LL]高BDNF的水平,但在黑质中过度表达的α突触核蛋白却能下调BDNF的水平,这表明BDNF水平的下降也可能与突变型A53T小鼠α突触核蛋白的聚集有关[11,2728]。还有研究显示,老年鼠和AD病人海马中BDNF表达均出现了下调[2930]。另外,有研究在其他脑区内也发现了BDNF水平的改变,MOGI等[31]应用ELISA技术研究显示,PD病人黑质纹状体DA能神经元分布区的BDNF水平明显低于正常对照组,BDNF浓度的改变可能与PD的发病有着某种关联。另有研究发现,杏仁核是识别和调节情绪的脑区,也与学习和记忆相关,杏仁核内BDNF的下调也与抑郁症等相关[32]。但本研究中并未涉及其他脑区内BDNF水平的变化,有待今后进一步研究。
综上所述,在PD早期会出现认知功能障碍等非运动症状,且非运动症状会早于运动症状发生。在PD早期非运动症状中,认知功能障碍是最容易被发现的,但目前并不清楚出现认知功能障碍的确切原因。认知能力的下降可能是早期PD海马功能受损和脑相关区域BDNF水平下降所致。如能在运动症状出现之前及时诊断PD并进行干预,可减轻PD病人的痛苦。本文结果也为治疗PD病人认知功能障碍提供了一个有效的靶点。
[参考文献]
[1]TOLLESON C M, FANG J Y. Advances in the mechanisms of Parkinsons disease[J]. Discovery Medicine, 2013,15(80):6166.
[2]陈伟贤,张赛. 帕金森病的诊断和治疗[J]. 中华全科医学, 2015,13(5):692693.
[3]DISSANAYAKA N N, LAWSON R A, YARNALL A J, et al. Anxiety is associated with cognitive impairment in newlydiagnosed Parkinsons disease[J]. Parkinsonism & Related Disorders, 2017,36(1):6368.
[4]GUBELLINI P, KACHIDIAN P. Animal models of Parkinsons disease: an updated overview[J]. Revue Neurologique, 2015,171(11):750761.
[5]PUSPITA L, CHUNG S Y, SHIM J W. Oxidative stress and cellular pathologies in Parkinsons disease[J]. Molecular Brain, 2017,10(1):5357.
[6]TOLMASOV M, DJALDETTI R, LEV N, et al. Pathological and clinical aspects of alpha/beta synuclein in Parkinsons di
sease and related disorders[J]. Expert Review of Neurotherapeutics, 2016,16(5):505513.
[7]KANSARA S, TRIVEDI A, CHEN Sheng, et al. Early diagnosis and therapy of Parkinsons disease: can disease progres
sion be curbed[J]? Journal of Neural Transmission (Vienna,Austria:1996), 2013,120(1):197210.
[8]SHIMIZU S, OHNO Y. Improving the treatment of Parkinsons disease: a novel approach by modulating 5HT(1A) receptors[J]. Aging and Disease, 2013,4(1):113.
[9]OZANSOY M, BASAK A N. The central theme of Parkinsons disease: αsynuclein[J]. Molecular Neurobiology, 2013,47(2):460465.
[10]KWON K Y, LEE H M, LEE S M, et al. Comparison of motor and nonmotor features between essential tremor and tre
mor dominant Parkinsons disease[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2016,361(15):3438.
[11]GRAH M, MIHANOVIC M, RULJANCIC N, et al. Brainderived neurotrophic factor as a suicide factor in mental disorders[J]. Acta Neuropsychiatrica, 2014,26(6):356363.
[12]KONNO T, DEUTSCHLANDER A, HECKMAN M G, et al. Comparison of clinical features among Parkinsons disease subtypes: a large retrospective study in a single center[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2018,386(1):3945.
[13]BERNHEIMER H, BIRKMAYER W, HORNYKIEWICZ O, et al. Brain dopamine and the syndromes of Parkinson and Huntington. Clinical, morphological and neurochemical correlations[J]. Journal of the Neurological Sciences, 1973,20(4):415455.
[14]CHANG P K, YU L, CHEN J C. Dopamine D3 receptor blockade rescues hyperdopamine activityinduced deficit in novel object recognition memory[J]. Neuropharmacology, 2018,133(1):216223.
[15]KHALIL H, ALOMARI M A, KHABOUR O F, et al. Relationship of circulatory BDNF with cognitive deficits in people with Parkinsons disease[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2016,362(15):217220.
[16]WANG Q M, WANG G L, MA Z G. Protective effects of myricetin on chronic stressinduced cognitive deficits[J]. Neuro Report, 2016,27(9):652658.
[17]LIU F F, XUAN Aiguo, CHEN Yan, et al. Combined effect of nerve growth factor and brainderived neurotrophic factor on neuronal differentiation of neural stem cells and the potential molecular mechanisms[J]. Molecular Medicine Reports, 2014,10(4):17391745.
[18]YUE L P, MA L Y, CUI S, et al. Brainderived neurotrophic factor in the infralimbic cortex alleviates inflammatory pain[J]. Neuroscience Letters, 2017,655(8):713.
[19]SIUDA J, PATALONGOGIEWA M, ZMUDA W, et al. Cognitive impairment and BDNF serum levels[J]. Neurologia I Neurochirurgia Polska, 2016,51(1):2432.
[20]TOME D, FONSECA C P, CAMPOS F L. Role of neurotrophic factors in Parkinsons disease[J]. Current Pharmaceutical Design, 2017,23(5):809838.
[21]SMITH P A. BDNF: no gain without pain[J]? Neuroscience, 2014,283(283):107123.
[22]CHAGAS M H, ZUARDI A W, TUMAS V, et al. Effects of cannabidiol in the treatment of patients with Parkinsons di
sease: an exploratory doubleblind trial[J]. Journal of Psychopharmacology (Oxford, England), 2014,28(11):10881098.
[23]葉心国,李涛,李翔,等. 帕金森病患者血清EGF和BDNF水平变化与认知障碍的关系[J]. 脑与神经疾病杂志, 2016,24(7):406409.
[24]HAN Z M, HUANG H M, WANG F F. Brainderived neurotrophic factor genemodified bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Experimental and Therapeutic Medicine, 2015,9(2):519522.
[25]DA SILVA P G, DOMINGUES D D, DE CARVALHO L A, et al. Neurotrophic factors in Parkinsons disease are regulated by exercise: evidencebased practice[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2016,363(8):515.
[26]TRONCI E, NAPOLITANO F, MUNOZ A, et al. BDNF overexpression induces striatal serotonin fiber sprouting and increases the susceptibility to lDOPAinduced dyskinesia in 6OHDAlesioned rats[J]. Experimental Neurology, 2017,297(3):7381.
[27]FANG F, YANG W L, FLORIO J B, et al. Synuclein impairs trafficking and signaling of BDNF in a mouse model of Parkinsons disease[J]. Scientific Reports, 2017,7(1):3868.
[28]刘佳,黄永璐,高宗良. 血清脑源性神经营养因子与老年帕金森病患者认知功能障碍的相关性[J]. 中国老年学杂志, 2015,35(21):61936194.
[29]LEDREUX A, BOGER H A, HINSON V K, et al. BDNF levels are increased by aminoindan and rasagiline in a double lesion model of Parkinsons disease[J]. Brain Research, 2016,1631(19):3445.
[30]赵淑杰,朱雨岚. 脑源性神经营养因子对帕金森病大鼠多巴胺能神经元的影响[J]. 中国实用神经疾病杂志, 2015,18(13):4041.
[31]MOGI M, TOGARI A, KONDO T, et al. Brainderived growth factor and nerve growth factor concentrations are decreased in the substantia nigra in Parkinsons disease[J]. Neuroscience Letters, 1999,270(1):4548.
[32]GUILLOUX J P, DOUILLARDGUILLOUX G, KOTA R, et al. Molecular evidence for BDNFand GABArelated dysfunctions in the amygdala of female subjects with major depression[J]. Molecular Psychiatry, 2012,17(11):11301142.
(本文编辑黄建乡)