紧密连接蛋白Claudin-2研究进展

2018-03-21 18:28冯燕海综述王凤君审校
重庆医学 2018年5期
关键词:通透性孔道旁路

冯燕海 综述,王凤君 审校

(陆军军医大学西南医院全军烧伤研究所/创伤、烧伤与复合伤国家重点实验室,重庆 400038)

紧密连接蛋白Claudin-2是构成细胞间紧密连接的重要蛋白分子,在维持细胞极性和紧密连接的屏障功能方面具有重要作用。Claudin-2在细胞旁路孔通道形成、阳离子通透、离子大小选择性及水分转运方面均有重要作用,并参与多种疾病如肿瘤、炎症、细菌或病毒感染等的发生与发展。本文对Claudin-2的相关研究进展进行综述,以便对Claudin-2有一较全面的了解。

1 Claudin-2概述

紧密连接是细胞间连接的一种常见形式,广泛存在于上皮、内皮和间皮细胞,在维持上皮细胞极性及屏障功能中具有重要作用。在众多的紧密连接相关蛋白中,最重要的跨膜蛋白是Claudin蛋白家族。人类Claudin蛋白家族至少有24个成员,均包含4个跨膜区域和2条细胞外链,2条细胞外链中均包含有带不同电荷的氨基酸残基和2个细胞内尾巴[1]。第1条细胞外链由大约50个氨基酸组成,是细胞旁路孔道形成的主要结构基础,对跨细胞电阻和细胞旁路的电荷选择性均具有重要作用[2];第2条细胞外链有大约25个氨基酸,主要具有支持功能,有助于紧密连接束的形成,使细胞旁路的裂缝更加紧密[3]。不同的Claudin家族成员在细胞旁路通透性的调控中有着不同的功能,如Claudin-2、-7、-10、-15、-16被称作是孔道形成蛋白,而Claudin-1、-4、-5、-8、-11、-14、-19则在肠黏膜屏障中表现出封闭作用,可降低细胞旁路通透性[4]。因此,Claudin-2在孔道形成等方面发挥重要作用,进而调节肠屏障功能。

2 Claudin-2的生物学作用

2.1Claudin-2与细胞旁路孔通道阳离子选择性的关系 Claudin家族蛋白细胞外链的带电残基决定了孔道的电荷选择性[5],并且2条细胞外链间的相互作用是离子通透性和跨上皮电阻(TER)形成的分子基础[4];在不同细胞中,孔道密度随着Claudin-2的高表达而增加[6]。因此,Claudin-2是孔道形成的必要蛋白。在犬肾传代细胞(madin darby canine kidney,MDCK)Ⅱ细胞中,Claudin-2缺失可导致其对Na+通透性降低[7],且在无内源性Claudin-2表达的MDCK Ⅰ细胞敲入外源性Claudin-2可使其对Na+和K+通透性增加,但不改变其对Cl-和大分子物质如甘露醇及4×103葡聚糖的通透性[8]。有研究表明,Claudin-2蛋白细胞外链第65位天冬氨酸所带负电荷及第67位的络氨酸残基可通过阳离子-π相互作用(Cation-π interaction)或肠腔空间效应(Luminal steric effect)赋予其阳离子通透性的特点[9-10]。因此,Claudin-2以其特殊的氨基酸组成为基础,成为了细胞旁路孔道对Na+等阳离子通透的主要决定因素。除Na+外,Claudin-2形成的孔道对其他单价阳离子如K+、Rb+、Li+和Cs+等也存在通透性,其通透性大小依次为K+>Rb+>Na+>Li+>Cs+[9]。

2.2Claudin-2与水转运 用环孢霉素A处理人肾小管上皮细胞后,Claudin-2 mRNA表达及细胞旁路水转运均明显降低[11];敲除Claudin-2基因后,小鼠表现出喝水行为增加、近端肾小管液体重吸收量降低、尿量增加及尿液渗透压降低[12]。这些研究提示,Claudin-2确实可增加上皮细胞对水的通透性,该效应可能与Claudin-2对Na+通透所引起的细胞内外渗透压梯度有关。

2.3Claudin-2与TER 有学者发现,小鼠CMT93-Ⅰ与CMT93-Ⅱ均可表达Claudin-4、-6、-7、-12,但CMT93-Ⅱ细胞株的TER仅为CMT93-Ⅰ细胞株的1/7[13],究其原因可能是Claudin-2蛋白只表达于CMT93-Ⅱ细胞,而不表达于CMT93-Ⅰ细胞。同样,高TER的MDCKⅠ细胞与低TER的MDCKⅡ细胞间的区别在于MDCKⅡ细胞有Claudin-2表达,而MDCKⅠ细胞不表达Claudin-2[8]。因此,Claudin-2被认为可降低细胞TER。此外,多种因子可通过影响Claudin-2的表达来调控细胞TER,如饥饿诱导的Caco-2肠上皮细胞自噬可通过降解Claudin-2而引起TER明显增加,从而保护肠上皮屏障功能[14]。但是,Claudin-2降低细胞TER的分子机制仍有待阐明。

3 Claudin-2与疾病

3.1Claduin-2与肿瘤 目前的研究发现,在胃癌、结直肠癌和乳腺癌等均有Claudins蛋白的异常表达,且Claudin-2在不同癌细胞的表达量也不同,在肝细胞癌、结直肠腺癌的肝转移及胰腺癌,Claudin-2表达降低[15];而在纤维板样肝细胞癌、结直肠癌、胃癌、乳腺癌肝转移等,Claudin-2表达则明显增加[16]。(1)Claudin-2与消化道肿瘤:有研究表明,在胃癌中可检测到Claudin-2的高表达[17],而幽门螺杆菌的CagA可通过Cdx2,在转录和翻译水平均增加Claudin-2表达,进而破坏紧密连接和诱导胃上皮细胞的去分化,导致幽门螺杆菌相关胃癌的发生[18]。与正常组织相比,Claudin-2 mRNA水平在结直肠癌组织中明显上调并与肿瘤进展有关,这可能是结直肠癌微环境通过激活表皮生长因子受体(EGFR)或者偶对蛋白(Symplekin)通过与ZO-1相关核酸结合蛋白的相互作用,增加Claudin-2的蛋白表达,从而促进肿瘤细胞生长[19-20]。因此,Claudin-2在消化道肿瘤的发生、发展中具有重要作用,可能是新的治疗靶点。(2) Claudin-2与乳腺癌:与正常组织相比,原发性乳腺癌的Claudin-2表达降低,但在乳腺癌肝转移中,Claudin-2表达却明显增加[21-23];肝转移时Claudin-2表达增加,一方面通过增强α2β1-和 α5β1-整合素复合物表达,利于乳腺癌细胞与细胞外基质如纤连蛋白或Ⅳ型胶原黏附,进而促进乳腺癌肝转移[24];另一方面,通过其第一条细胞外链形成Claudin-2-Claudin-2同源复合物,介导乳腺癌细胞与肝细胞间黏附进而促进乳腺癌细胞的肝转移[25]。由此可见,Claudin-2是乳腺癌肝转移的重要调节子,在乳腺癌肝转移的发生中具有重要作用。因此,有学者认为可将Claudin-2作为乳腺癌肝转移的生物标记物[23]。(3)Claudin-2与肺癌:据报道,Claudin-2在不同类型肺癌的表达不尽相同,如在鳞癌、腺癌和良性肿瘤有Claudin-2表达[26],但有学者在小细胞肺癌中却未检测到Claudin-2表达。对A549细胞的研究发现,Claudin-2表达呈时间依赖性增加,其可能机制是基质金属蛋白酶分泌EGF后,激活EGFR/MEK/ERK/c-Fos信号通路,引起c-Fos入核与Claudin-2 基因启动子的AP-1位点结合,增强其转录活性[27]。

3.2Claduin-2与肠道炎症 有研究发现,在肠道炎症发生时Claudin-2表达明显增加[28]。炎症性肠病(IBD)时Claudin-2表达增加可能与炎症局部组织细胞因子增加有关,如溃疡性结肠炎时,肠黏膜Th2淋巴细胞释放白细胞介素(IL)-13增加,由IL-13诱导Claudin-2表达增加[29]。IBD时Claudin-2表达增加可能是机体自身的一种保护性反应,研究表明,在肿瘤坏死因子α(TNF-α)或硫酸葡聚糖钠盐诱发的肠道炎症中,Claudin-2(-/-)小鼠的炎症程度均较Claudin-2(+/+)小鼠明显严重,其机制可能与Claudin-2抑制肌球蛋白轻链激酶依赖性的信号通路活化有关,也可能与Claudin-2通过PI-3K/Bcl-2通路阻止肠细胞死亡有关[30-31]。

3.3Claudin-2与感染 发生细菌或病毒感染时,受侵组织Claudin-2表达也会发生相应变化,但不同细菌或病毒对Claudin-2表达的影响截然不同。有学者在对HT29C19A进行的研究发现,幽门螺杆菌由其编码的CagA通过Cdx2连接于Claudin-2基因的3′侧翼区,在转录和翻译水平均增加Claudin-2表达[18]。相反,鼠疫杆菌却抑制HT29/B6肠上皮细胞Claudin-2表达[32]。病毒如人类免疫缺陷病毒1型(HIV-1)则可能是通过增加炎症因子如TNF-α等的产生,来破坏包括Claudin-2在内的紧密连接蛋白,导致黏膜上皮紧密连接结构破坏,从而有利于病毒自身或其他细菌的入侵[33]。

4 结 语

紧密连接蛋白Claudin-2是紧密连接的重要组成成分,在机体发育、屏障的离子选择性、水转运及跨细胞电阻的调控等方面都具有重要作用,并与多种疾病如肿瘤、炎症、细菌或病毒感染等密切相关。然而,Claudin-2与这些疾病的发生、发展及转归的复杂关系,以及这些疾病状态下Claudin-2表达的调控机制仍需更深入的研究。

[1]GUNZEL D,FROMM M.Claudins and other tight junction proteins[J].Compr Physiol,2012,2(3):1819-1852.

[2]WEN H J,WATRY D D,MARCONDES M C,et al.Selective decrease in paracellular conductance of tight junctions:role of the first extracellular domain of claudin-5[J].Mol Cell Biol,2004,24(19):8408-8417.

[3]PIONTEK J,WINKLER L,WOLBURG H,et al.Formation of tight junction:determinants of homophilic interaction between classic claudins[J].FASEB J,2008,22(1):146-158.

[4]KRAUSE G,WINKLER L,MUELLER S L,et al.Structure and function of claudins[J].Biochim Biophys Acta Biomembr,2008,1778(3):631-645.

[5]VAN ITALLIE C M,HOLMES J,BRIDGES A,et al.Claudin-2-dependent changes in noncharged solute flux are mediated by the extracellular domains and require attachment to the PDZ-scaffold[J].Ann N Y Acad Sci,2009,1165(1):82-87.

[6]VAN ITALLIE C M,HOLMES J,BRIDGES A,et al.The density of small tight junction pores varies among cell types and is increased by expression of claudin-2[J].J Cell Sci,2008,121(Pt 3):298-305.

[7]HOU J,GOMES A S,PAUL D L,et al.Study of claudin function by RNA interference[J].J Biol Chem,2006,281(47):36117-36123.

[8]FURUSE M,FURUSE K,SASAKI H,et al.Conversion of zonulae occludentes from tight to leaky Strand type by introducing claudin-2 into Madin-Darby canine kidney I cells[J].J Cell Biol,2001,153(2):263-272.

[9]YU A S,CHENG M H,ANGELOW S,et al.Molecular basis for cation selectivity in claudin-2-based paracellular pores:identification of an electrostatic interaction site[J].J Gen Physiol,2009,133(1):111-127.

[10]LI J,ZHUO M,PEI L,et al.Conserved aromatic residue confers cation selectivity in claudin-2 and claudin-10b[J].J Biol Chem,2013,288(31):22790-22797.

[11]WILMES A,ASCHAUER L,LIMONCIEL A,et al.Evidence for a role of claudin 2 as a proximal tubular stress responsive paracellular water Channel[J].Toxicol Appl Pharmacol,2014,279(2):163-172.

[12]MUTO S,HATA M,TANIGUCHI J,et al.Claudin-2-deficient mice are defective in the leaky and cation-selective paracellular permeability properties of renal proximal tubules[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107(17):8011-8016.

[13]INAI T,SENGOKU A,HIROSE E,et al.Comparative characterization of mouse rectum CMT93-Ⅰ and-Ⅱ cells by expression of claudin isoforms and tight junction morphology and function[J].Histochem Cell Biol,2008,129(2):223-232.

[14]NIGHOT P K,HU C A,MA T Y.Autophagy enhances intestinal epithelial tight junction barrier function by targeting claudin-2 protein degradation[J].J Biol Chem,2015,290(11):7234-7246.

[15]HOLCZBAUER A,GYOENGYOESI B,LOTZ G,et al.Distinct claudin expression profiles of hepatocellular carcinoma and metastatic colorectal and pancreatic carcinomas[J].J Histochem Cytochem,2013,61(4):294-305.

[16]PATONAI A,ERDELYI-BELLE B,KOROMPAY A,et al.Claudins and tricellulin in fibrolamellar hepatocellular carcinoma[J].Virchows Arch,2011,458(6):679-688.

[17]JUNG H,JUN K H,JUNG J H,et al.The expression of claudin-1,claudin-2,claudin-3,and claudin-4 in gastric cancer tissue[J].J Surg Res,2011,167(2):e185-191.

[18]SONG X,CHEN H X,WANG X Y,et al.H.pylori-encoded CagA disrupts tight junctions and induces invasiveness of AGS gastric carcinoma cells via Cdx2-dependent targeting of Claudin-2[J].Cell Immunol,2013,286(1/2):22-30.

[19]DHAWAN P,AHMAD R,CHATURVEDI R,et al.Claudin-2 expression increases tumorigenicity of colon cancer cells:role of epidermal growth factor receptor activation[J].Oncogene,2011,30(29):3234-3247.

[20]BUCHERT M,PAPIN M,BONNANS C,et al.Symplekin promotes tumorigenicity by up-regulating claudin-2 expression[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107(6):2628-2633.

[21]KIM T H,HUH J H,LEE S,et al.Down-regulation of claudin-2 in breast carcinomas is associated with advanced disease[J].Histopathology,2008,53(1):48-55.

[22]FLORES A R,REMA A,CARVALHO F,et al.Reduced expression of claudin-2 is associated with high histological grade and metastasis of feline mammary carcinomas[J].J Comp Pathol,2014,150(2/3):169-174.

[23]KIMBUNG S,KOVCS A,BENDAHL P O,et al.Claudin-2 is an independent negative prognostic factor in breast cancer and specifically predicts early liver recurrences[J].Mol Oncol,2014,8(1):119-128.

[26]MOLDVAY J,JCKEL M,PSKA C,et al.Distinct claudin expression profile in histologic subtypes of lung cancer[J].Lung Cancer,2007,57(2):159-167.

[27]IKARI A,SATO T,WATANABE R,et al.Increase in claudin-2 expression by an EGFR/MEK/ERK/c-Fos pathway in lung adenocarcinoma A549 cells[J].Biochim Biophys Acta Mol Cell Res,2012,1823(6):1110-1118.

[28]LUETTIG J,ROSENTHAL R,BARMEYER C,et al.Claudin-2 as a mediator of leaky gut barrier during intestinal inflammation[J].Tissue Barriers,2015,3(1/2):e977176.

[29]WATSON A J,DUCKWORTH C A,GUAN Y,et al.Mechanisms of epithelial cell shedding in the Mammalian intestine and maintenance of barrier function[J].Ann N Y Acad Sci,2009,1165(1):135-142.

[30]NISHIDA M,YOSHIDA M,NISHIUMI S,et al.Claudin-2 regulates colorectal inflammation via myosin light chain kinase-dependent signaling[J].Dig Dis Sci,2013,58(6):1546-1559.

[31]AHMAD R,CHATURVEDI R,OLIVARES-VILLAGMEZ D,et al.Targeted colonic claudin-2 expression renders resistance to epithelial injury,induces immune suppression,and protects from colitis[J].Mucosal Immunol,2014,7(6):1340-1353.

[32]HERING N A,RICHTER J F,KRUG S M,et al.Yersinia enterocolitica induces epithelial barrier dysfunction through regional tight junction changes in colonic HT-29/B6 cell monolayers[J].Lab Invest,2011,91(2):310-324.

[33]NAZLI A,CHAN O,DOBSON-BELAIRE W N,et al.Exposure to HIV-1 directly impairs mucosal epithelial barrier integrity allowing microbial translocation[J].PLoS Pathog,2010,6(4):e1000852.

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