张珊,刘宝山
Notch信号通路是一条高度保守的信号通路,在细胞间的信息交流中扮演重要角色。Notch信号广泛存在于多种细胞中,如造血细胞[1]、巨噬细胞[2]等。在免疫系统中,Notch信号通路不仅可以调控T/B细胞谱系的产生,还参与调节外周成熟T细胞及其亚群分化及功能的发挥,如Notch信号可在CD4+T细胞表面广泛表达,对调节性T细胞(Treg)、辅助性T细胞17(Th17)的增殖、分化、凋亡及细胞发挥免疫功能产生重要影响[3]。最近研究表明Notch信号通路与多种免疫功能异常的疾病有着密切的联系,如再生障碍性贫血、类风湿性关节炎[4]、自身免疫性脑脊髓炎等。本文简要综述了Notch通路对Treg/Th17的调控机制及两者在血液系统疾病、自身免疫系统疾病中的联系。
Notch信号通路根据是否依赖RBP-Jκ可分为经典通路和非经典通路,其主要由Notch受体、配体、CSL DNA 结合蛋白(CBF1、Suppressor of Hairless、Lag1的合称)、调节分子及其他效应物组成。目前发现哺乳动物中共有4种受体(Notch1-4)、5种配体(又称为DSL结构域)。Notch配体分属于2个家族:Dll家族(Dll1、Dll3、Dll4)和 Jagged家族(Jagged1、Jagged2)。由于Notch1-4的胞外端EGF区和胞内段的PEST区域存在较大差异,4种受体功能存在一定的差异,靶基因也有所不同。Notch1主要存在于胸腺细胞、巨噬细胞以及骨髓的前体细胞中;Notch2存在于胸腺细胞、B淋巴细胞以及前体细胞中;Notch3在许多不同种类的造血细胞中均有表达;Notch4主要存在于内皮细胞。对于Notch配体来讲,Jagged家族、Dll家族在骨髓与胸腺中均有表达,对中枢免疫系统的淋巴细胞分化起着不同作用。Dll1、Dll4主要诱导造血干细胞、胸腺淋巴细胞向T细胞系列发育,但Dll1主要促进前体T细胞发育;Jagged1、2也可促进T细胞发育,但有向自然杀伤(natural killer,NK)细胞发育的潜质。
Notch受体以单体蛋白的形式合成,在S1位点被furin样蛋白酶裂解,形成的2个亚单位以共价键连接,结合形成异二聚体。在受体转移至细胞膜前,Fringe蛋白将EGF样重复序列糖基化。当Notch受体胞外部分转移至细胞膜与配体结合时启动Notch信号途径,随后发生2次水解过程,释放出具有核定位信号的胞质区(Notch intracellular domain,NICD),NICD转移至细胞核内,与CSL(又称为RBPJ或CBF1)结合并招募核转录激活蛋白MAML等,形成三元络合转录激活物,激活下游靶基因如Hes、Hey、Deltex1、IL2RA等,进而调节细胞发育各个过程[5]。Notch蛋白还可以通过非依赖RBP-Jκ方式激活Notch通路,具体机制还不十分清楚[6]。此外,Notch信号通路还可与其他信号通路之间存在“对话”、“协同表达”,如核因子-κB(NF-κB)、缺氧诱导因子(HIF)、转化生长因子(TGF)-β等。
幼稚CD4+T细胞需要经过刺激从而分化成与细胞免疫密切相关的Th1、Th2、Th17、Treg等细胞亚群。其分化进程受到细胞外分子(如细胞因子)和细胞内分子(如转录因子)的调节。
Th17细胞因主要分泌白细胞介素17(IL-17)而得名,在自身免疫性疾病中发挥主要作用,其主要功能为招募中性粒细胞等炎性细胞,引起细胞浸润、组织破坏。另外,Th17还可分泌IL-21、IL-22、IL-26等多种细胞因子。Th17细胞核内表达视黄酸相关孤 儿 受 体 γt(retinoid acid-related prphan receptor gamma t,RORγt)和信号传导及转录激活因子 3(signal transducers and activators of transcription 3,STAT3),两者对Th17细胞的发育和相关细胞因子的产生极其重要[7]。Th17细胞的分化还受多种细胞因子的调节,IL-6、TGF-β、IL-21、IL-23等在Th17细胞分化过程中起积极的促进作用,而IL-27、IL-2、干扰素(IFN)-γ等则参与Th17细胞分化发育的负向调控[8]。
Treg细胞由Gershon等发现,在维持体内免疫稳态过程中起关键作用[9]。初始T细胞可在TGF-β作用下生成Treg,而Treg细胞主要分泌IL-10、IL-35、TGF-β等细胞因子。叉状头/翅膀状螺旋转录因子(Fork/winged helix transcription factor,Foxp3)作为免疫调节的关键因子,是Treg细胞的特异性转录因子,影响Treg细胞的分化及功能。Treg细胞功能失调及Foxp3表达异常均可导致机体的多器官自身免疫反应及早期死亡[10]。
间充质干细胞(MSCs)介导的免疫调节参与Treg 细胞的增殖,而此过程依赖 Jagged1[11]。Yao等[12]在体外培育Treg细胞时,发现蜕膜血管内皮细胞(decidua vascular endothelial cell,DVEC)表面表达Notch配体如Jagged1、Dll1、Dll4,可维持Foxp3的表达,进而促进Treg细胞的增殖和分化,同时在Treg细胞表面可检测到高表达的Notch1受体,使用慢病毒shRNA转导下调Treg表面Notch1受体可使Foxp3表达下降,而Foxp3是Notch信号通路下游的靶基因。另外,Notch信号通路和TGF-β信号通路之间存在对话,TGF-β通路活化后可上调Hes1的表达[13],Notch也可与 TGF-β通路内的细胞传感器Smad3协同合作,或者NICD与Smad3直接作用,在CSL和NICD存在的情况下,Smad3被招募到CSL结合位点,从而对调控Treg的分化产生影响。
Keerthivasan 等[14]研 究 表 明 Notch1 可 通 过RORγt和IL-17基因启动子调控Th17细胞的表达。Wang等[15]则认为Jagged1通过降低RORγt的表达,进而抑制Th17细胞的分化。也有研究认为RBPJ是IL23R关键驱动者,IL-23R信号也参与Th17细胞的调控,RBPJ通过绑定和反式激活IL23R启动子诱导IL-23R表达[16]。另外,树突细胞(dendritic cell,DC)表达的Notch信号可作为Treg/Th17平衡的调节器。有研究发现RBPJ缺陷小鼠的DC促进了Th17细胞的分化,而抑制Treg细胞的分化;这与其可表达少量的Aldh1a2蛋白有关,该蛋白能促进维甲酸的合成;但RBPJ缺陷小鼠的DC过表达Aldh1a2蛋白,却不能促进Th17细胞的分化[17]。
3.1 Notch通路调控Treg/Th17与造血系统疾病的关系 再生障碍性贫血(aplastic anemia,AA)是一种自身免疫性疾病,Li等[18]研究发现Notch/RBP-J/Foxp3/RORγt途径可以调控Th17/Treg细胞的平衡,AA患者输注MSCs后外周血中Th17比例下降、Treg比例增加,而且Dll1、Jagged1、Notch1-2也有所增加;该团队进一步检测了AA患者Notch相关转录因子的表达情况,发现RBP-J、Foxp3增多,而RORγt降低;与转录因子表达相一致,细胞因子TGF-β升高,而TNF-α降低。这表明MSCs调节Treg/Th17平衡依赖Notch信号途径,RBP-J作为Notch信号通路的效应蛋白,与Foxp3、RORγt之间存在密切联系。Th17/Treg平衡失调在免疫相关性血小板减少症(immune thrombocytopenia,ITP)中也扮演着重要角色,Yu等[19]研究发现应用γ分泌酶抑制剂DAPT对ITP患者外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)进行处理后,RORγt、IL-17 及 Notch1、Hes1、Hey1表达减少,而Treg及Foxp3没有显著变化,Notch信号表达参与了ITP患者Th17细胞的调节,DAPT抑制Th17细胞分化与RORγt、IL-17转录下调有关,因此,Notch信号失活可能成为ITP患者潜在的免疫调节策略。然而黄文烨等[20]认为ITP患者体内Treg数量降低,表达和分泌TGF-β较少,诱导靶细胞表面Notch1表达上调及激活Notch1-Hes功能减弱,对靶细胞免疫抑制作用减弱,从而引起自身反应性T细胞过度活化。在T淋巴细胞白血病中,Luo等[21]证明了Notch信号与Foxp3之间存在“crosstalk”,Notch1信号通路可能通过p-ERK1/2、STAT1、NF-κB等靶基因参与Treg细胞的分化。
3.2 Notch调控Treg/Th17与自身免疫系统疾病的关系 Li等[22]研究发现过敏性哮喘患者较正常对照组Notch1 mRNA水平显著增高,Th17/Treg细胞比例上调。这表明Th17/Treg平衡失调在过敏性哮喘中可能因Notch1过表达引起的,Notch1与Th17发育分化密切相关。另一项研究则发现给予DAPT的哮喘小鼠组较模型组IL-17水平降低,而IL-10、TGF-β水平升高[23]。Zhang等[24]认为IL-17水平下调与阻断Notch信号后NICD表达降低有关。Huang等[25]进一步探索发现,Dll4同时可诱导Treg及Th17细胞的分化,但对Foxp3的调控存在优势;阻断Dll4后过敏性哮喘反应加重,而阻断Jagged1作用则相反。
Notch信号的表达可能促进自身免疫性脑脊髓炎 (experimental autoimmune encephalomyelitis,EAE)、类风湿性关节炎(rheumatoid arthritis,RA)等疾病的发生及进展。Wongchana等[26]发现巨噬细胞表面Notch1基因敲除的EAE小鼠IL-6和CD80表达降低,而且分泌的IL-17也减少,认为Notch1/CSL/RBP-Jκ通路可能通过调节IL-6及共刺激分子CD80的表达从而参与Th17的促炎反应。Bassil等[27]研究则发现在EAE小鼠模型中,Dll4可抑制TGF-β以及Foxp3表达过程中的酪氨酸蛋白激酶JAK3以及STAT5磷酸化,而STAT5是Foxp3表达必不可少的转录因子。而对于RA来讲,Th17是其发病的重要免疫细胞,Treg细胞则有利于RA的缓解。有研究表明,RA小鼠经DAPT处理后,Th17细胞及IL-17减少,并显著地降低了关节炎症状和关节损伤的严重程度[28]。而且Notch3与Th17增殖与分化密切相关,应用Notch3单克隆抗体可减少Th17细胞及相关因子的表达,但对Treg细胞无明显抑制作用[29]。
3.3 Notch调控Treg/Th17与其他疾病的关系 Qin等[30]研究发现慢性丙肝患者较正常对照组PBMC中Notch1、Notch2 mRNA显著增多,应用DAPT后,Th17相关因子RORγt、IL-17、IL-22等水平下降,而Treg相关因子Foxp3、IL-10水平没有显著变化,但Treg细胞的抑制功能降低。这表明Notch信号通路调控Treg与Th17细胞数量的同时,还可以对两者的功能产生影响。Treg细胞在母体预防胎儿免疫排斥中起重要作用,敲除DEVC表面Jagged1和Dll1配体,Treg细 胞 表 达 受 到 抑 制[12]。 Cao 等[31]研 究 发 现 因Notch1-4受体及Dll4水平显著升高,妊高症患者外周血Th17相关因子增多,Treg相关因子减少。以上诸多研究证明,Notch信号通过调控Treg/Th17广泛参与免疫系统疾病的发生、发展,Notch信号通路的激活可能是调节两者关系的关键,进而可激活其他通路共同参与Treg/Th17的调控。因此通过调控Notch信号通路中的各个相关靶点,促进两者调控的平衡,有利于免疫系统失衡疾病的恢复。
由于不同疾病产生的内在环境不同,Notch信号受体与配体结合激活下游靶基因类型不同,由此可激活其他信号通路,因而同一种受体或配体对Th17和Treg细胞的调控不同。Contaz等[32]发现,Notch信号作用的发挥具有环境依赖性。当Notch负调控Th17细胞的分化时,Notch能够通过影响胞内细胞因子的转运而促进Th17细胞因子的释放,从而抵消原有的效应。也有研究认为,Notch既不单一启动T细胞程序,也不受细胞因子的影响,而是同时调控Th细胞的基因序列[33]。即使在强极性的情况下,Notch也可直接调节CD4+T细胞的分化。而且,Th17和Treg细胞在分化上高度相关,两者具有高度的可塑性。这更增加了探究Notch通路调控Th17、Treg细胞平衡机制的难度。
综上所述,Notch信号途径在CD4+T细胞及其亚群的增殖、分化及功能的调节中具有重要意义,目前对Notch信号的研究尚处于起步阶段,Notch信号通路介导调节Th17/Treg细胞机制及对机体各种疾病的影响尚未完全清楚,进一步探明Notch信号途径及对CD4+T细胞的调节过程,不仅有助于免疫学理论的发展,还在血液系统疾病、自身免疫性疾病中均有潜在的应用价值。
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