吴川丽 陈国宁 张冠壮 陈兴活
(海南省中医院急诊科,海南 海口 570203)
RNA干扰水通道蛋白4抑制创伤性脑水肿的效果及相关机制
吴川丽 陈国宁 张冠壮1陈兴活1
(海南省中医院急诊科,海南 海口 570203)
目的探究水通道蛋白(AQP)4对创伤性脑水肿(TBE)的抑制效果及相关机制。方法健康雄性Wistar大鼠随机分为治疗组、空质粒组、创伤组和假手术组。治疗组和空质粒组大鼠脑损伤后分别注射AQP4 siRNA质粒和空白质粒,创伤组大鼠脑损伤后无治疗处理,假手术组大鼠假手术后注射生理盐水。于不同时间点检测各组大鼠脑组织含水率、AQP4 mRNA的表达水平和伊凡思蓝(EB)浓度。结果脑损伤后,治疗组、空质粒组和创伤组大鼠脑组织含水率、AQP4 mRNA表达水平和EB浓度均高于假手术组,随时间增加呈上升趋势,48~72 h达到峰值,而假手术组大鼠脑组织含水率、AQP4 mRNA表达水平和EB浓度随时间无明显变化。进一步分析显示AQP4 siRNA治疗组大鼠的脑组织含水率,AQP4 mRNA表达水平和EB浓度均明显低于空质粒组和创伤组(P<0.05或P<0.01)。结论AQP4 siRNA治疗能够下调AQP4的表达水平,有效减轻大鼠TBE的程度,推测AQP4表达下调可以减少血脑屏障的通透性,抑制脑水肿的发展。
创伤性脑水肿;水通道蛋白4;血脑屏障
创伤性脑水肿(TBE)多数是由颅脑损伤所致,以颅内压升高为主要特征〔1〕。TBE的发生机制目前尚不完全清楚,而且,临床上也缺少有效的治疗药物和方法。因此,寻找TBE的有效治疗方法成为目前研究的热点〔2〕。目前,TBE的机制存在诸多学说〔3~5〕,其中血脑屏障损伤学说被认为是早期脑水肿发生的重要原因。水通道蛋白(AQP)4是一种跨膜通道蛋白,主要分布于中枢神经系统中〔6,7〕,转运水分子时的耗能低,而且对水分子的选择性较高〔8〕。动物实验显示,AQP4基因敲除小鼠在脑损伤后脑水肿的程度显著下降。体外研究中,siRNA转染星形胶质细胞可以下调其AQP4的表达〔9〕。本研究通过AQP4 siRNA转染TBE大鼠模型,观察其对脑组织AQP4表达水平和脑水肿程度的影响。
1.1实验动物、仪器、试剂 10周龄雄性Wistar大鼠336只,平均体重280 g,动物饲养及操作符合本省实验动物管理委员会的要求,饲养间的温度保持在25℃,相对湿度控制在40%~70%,尽量使大鼠不要受到噪音的影响,每天定时为大鼠笼舍进行卫生清洁,标准饲料及其他与动物接触的物品均经高压灭菌处理,确保大鼠能够健康饲养。手术显微镜;显微手术器械;大鼠脑离体定向仪;电子分析天平;AQP4 siRNA质粒;大鼠体内转染试剂;浓缩型SABC-Cy3试剂盒。
1.2大鼠TBE模型的建立 使用戊巴比妥钠麻醉大鼠,并俯卧固定于手术面板上。确定大鼠脑颅的正中线,剪开约1.5 cm的切口,分离皮下组织及骨膜。将大鼠转移置海绵上,采用冠矢状缝交点为中心将垫片放置于大鼠颅骨正中线,从1.7 m高度使用打击棒以自由落体的速度击打垫片。待大鼠生命体征稳定后,转移至手术面板上,充分暴露颅骨后,在显微镜下确定冠矢状缝交点右侧1 mm处为中心点,使用魔钻造开骨窗,控制半径为0.25 cm。
1.3动物分组 健康雄性Wistar大鼠336只,随机分为创伤组、治疗组、空质粒组和假手术组,每组84只。创伤组大鼠造模后即缝合头皮。治疗组大鼠造模后,于冠状缝前1.0 mm、中线偏右侧1.5 mm处,使用微量注射器垂直进针约3 mm,注射AQP4 siRNA质粒(质粒与大鼠体内转染试剂按照1∶1比例混合),注射质粒后即缝合头皮。空质粒组大鼠造模后,采取以上相同方式注射不含AQP4 siRNA的空质粒。假手术组大鼠造模时,不进行击打,并且采取以上相同方式注射生理盐水。
1.4脑组织含水率的测定 4组按照4、12、24、48、96、120、168 h共7个时间点,每组各随机抽取4只大鼠,断头处死后取脑组织,使用滤纸吸干脑组织表面液体后使用电子分析天平称量脑组织湿重,然后将脑组织放在100℃的烘箱中1 d,称量其干重,脑组织含水率=(湿重-干重)/湿重×100%。
1.5伊凡思蓝(EB)浓度测定 用生理盐水配制浓度分别为8.0、4.0、2.0、1.0、0.5、0.25 μg/ml的EB标准液,使用分光光度计测定OD632值,制作EB标准曲线。
每组在不同时点(同1.4)各随机抽取4只大鼠,在各检测时间点前2 h按照3 ml/kg的剂量注射EB溶液。2 h后将大鼠断颈取脑并确定脑损伤中心位置。称取约100 mg脑组织,放置于含有二甲基甲酰胺的试管中,60℃水浴24 h后,1 500 r/min离心10 min,抽取上清液。使用分光光度计测定OD632值,同时取双蒸水作为空白对照。参照EB标准曲线,计算脑组织中的EB浓度。
1.6AQP4 mRNA原位杂交 各组在各时间点(同1.4)均随机抽取4只大鼠,取大鼠脑组织制作石蜡切片,常规脱蜡后,双氧水处理以暴露mRNA的核酸片段。以人工合成的地高辛标记的大鼠AQP4靶基因的mRNA作为寡核苷酸探针,进行AQP4 mRNA原位杂交。然后,以HRP标记的鼠抗地高辛作为二抗与杂交复合物反应,最后进行二氨基联苯胺(DAB)显色。封片后在显微镜下进行观察,每张切片随机选择5个不重叠的视野采集图像,图像分析软件计算脑组织中单位面积内AQP4 mRNA的平均表达量。
1.7统计学处理 采用SPSS17.0软件,组间比较采用单因素方差分析和多重比较。
2.1各组大鼠脑组织含水率和EB浓度 创伤组大鼠脑组织的含水率于脑损伤后4 h开始增加,72 h达到高峰,随后开始下降,而假手术组大鼠脑部含水率随时间无明显变化。AQP siRNA治疗后,脑损伤大鼠各时间点的脑组织含水率均明显低于创伤组和空质粒组,但仍高于假手术组(P<0.05或P<0.01)。说明AQP4 siRNA治疗可以减轻大鼠脑损伤后脑水肿的程度。创伤组脑组织中的EB浓度随时间增加而增加,损伤后72 h达到高峰。随后开始逐渐降低,而假手术组大鼠脑组织中EB浓度随时间无明显变化。说明脑水肿动物模型制备成功。治疗组各时间点EB浓度均明显低于创伤组和空质粒组(P<0.05或P<0.01),但仍高于假手术组(P<0.05或P<0.01),说明AQP4 siRNA可能通过改变血脑屏障的通透性调节脑组织的含水量,从而抑制脑水肿的发生和发展。见表1和表2。
表1 各组大鼠脑组织含水率
与创伤组、空质粒组和假手术组比较:1)P<0.05,2)P<0.01;下表同
表2 各组大鼠脑组织EB浓度
2.2AQP4 siRNA对大鼠脑组织AQP4 mRNA表达的影响 创伤组大鼠脑组织中的AQP4 mRNA表达水平于损伤后4 h开始增加,48 h达到高峰,随后逐渐下降。而假手术组大鼠脑内AQP4表达水平无明显变化。AQP4 siRNA治疗后,脑损伤大鼠各时间点脑内AQP4 mRNA表达水平均明显低于创伤组和空质粒组,但仍明显高于假手术组相应时间点(均P<0.05)。见图1。
与创伤组、空质粒组和假手术组比较:1)P<0.05;与创伤组和空质粒组比较:2)P<0.05图1 各组大鼠脑组织AQP4 mRNA的表达水平
TBE主要分为两大类,即细胞毒性脑水肿以及血管源性脑水肿〔10,11〕。无论是细胞毒性脑水肿还是血管源性脑水肿,最终都表现为水分子平衡的打破。
既往研究表明,AQPs在维持脑内水平衡方面发挥着至关重要的作用,为研究体内水平衡以及水分子的转运开创了新的领域〔12,13〕。近年来,AQP4参与脑内水转运、维持水平衡的研究日益增多。研究发现,AQP4基因敲除小鼠脑损伤后,出现脑水肿的概率及脑水肿的程度均明显低于野生型小鼠〔14〕。而上调大鼠体内AQP4的表达,可促进大鼠脑损伤后脑水肿的发生发展。本研究结果显示,大鼠脑损伤后,如不加以任何干预治疗(空质粒组和创伤组),其脑水肿程度随时间增加呈上升趋势,72 h到达峰值,而AQP4 siRNA治疗组大鼠脑受损后脑水肿的程度较空质粒组和创伤组明显降低。进一步分析发现治疗组大鼠脑组织内AQP4 mRNA的变化趋势与脑水肿变化趋势基本一致,而假手术组大鼠脑组织AQP4 mRNA的表达水平随时间无明显变化。证明AQP4参与了脑水肿的发生发展,而且AQP4表达下调可以有效减轻大鼠TBE的程度,这与既往的研究报道〔14〕一致。
研究表明,当血脑屏障通透性增加时,EB可以进入血管内,与血管内的蛋白成分结合,并转移到组织间隙〔15〕。因此,检测损伤脑组织中的EB浓度可以间接反映血脑屏障的通透性改变。研究结果显示,EB浓度的变化趋势与AQP4 mRNA表达以及脑水肿程度的变化趋势基本一致,提示AQP4 siRNA治疗降低了血脑屏障的通透性。因此,我们推测AQP4可能通过调节血脑屏障的通透性参与了脑水肿的发生发展过程。在外力所致脑损伤等应激情况下,AQP4表达增加,从而增加血脑屏障的通透性,脑组织内含水率增加,发展成脑水肿。而siRNA干扰能抑制或减少AQP4的表达,进而减少血脑屏障的通透性,减轻脑水肿的程度。
1Ali A,Konakondla S,Zwagerman NT,etal.Glycerol accumulation in edema formation following diffuse traumatic brain injury〔J〕.Neurol Res,2012;34(5):462-8.
2Shochat A,Abookasis D.Differential effects of early postinjury treatment with neuroprotective drugs in a mouse model using diffuse reflectance spectroscopy 〔J〕.Neurophotonics,2015;2(1):12-6.
3Higashida T,Kreipke CW,Rafols JA,etal.The role of hypoxia-inducible factor-1α,aquaporin-4,and matrix metalloproteinase-9 in blood-brain barrier disruption and brain edema after traumatic brain injury:laboratory investigation〔J〕.J Neurosurg,2011;114(1):92-101.
4Balu R.Inflammation and immune system activation after traumatic brain injury〔J〕.Curr Neurol Neurosci Rep,2014;14(10):1-8.
5Imer M,Omay B,Uzunkol A,etal.Effect of magnesium,MK-801 and combination of magnesium and MK-801 on blood-brain barrier permeability and brain edema after experimental traumatic diffuse brain injury〔J〕.Neurol Res,2009;31(9):977-81.
6Clausen F,Hånell A,Israelsson C,etal.Neutralization of interleukin-1β reduces cerebral edema and tissue loss and improves late cognitive outcome following traumatic brain injury in mice〔J〕.Eur J Neurosci,2011;34(1):110-23.
7Fukuda AM,Pop V,Spagnoli D,etal.Delayed increase of astrocytic aquaporin 4 after juvenile traumatic brain injury:possible role in edema resolution〔J〕?Neuroscience,2012;222:366-78.
8Beziaud T,Chen XR,El Shafey N,etal.Simvastatin in traumatic brain injury:effect on brain edema mechanisms〔J〕.Crit Care Med,2011;39(10):2300-7.
9Chen SJ,Yang JF,Kong FP,etal.Overactivation of corticotropin-releasing factor receptor type 1 and aquaporin-4 by hypoxia induces cerebral edema〔J〕.Proc Nat Acad Sci,2014;111(36):13199-204.
10Kenne E,Erlandsson A,Lindbom L,etal.Neutrophil depletion reduces edema formation and tissue loss following traumatic brain injury in mice〔J〕.J Neuroinflammation,2012;9(1):17.
11Laird MD,Sukumari-Ramesh S,Swift AEB,etal.Curcumin attenuates cerebral edema following traumatic brain injury in mice:a possible role for aquaporin-4〔J〕.J Neurochem,2010;113(3):637-48.
12Lescot T,Fulla-Oller L,Palmier B,etal.Effect of acute poly (ADP-ribose) polymerase inhibition by 3-AB on blood-brain barrier permeability and edema formation after focal traumatic brain injury in rats〔J〕.J Neurotrauma,2010;27(6):1069-79.
13Yang K,Cao F,Sheikh AM,etal.Up-regulation of Ras/Raf/ERK1/2 signaling impairs cultured neuronal cell migration,neurogenesis,synapse formation,and dendritic spine development 〔J〕.Brain Struc Func,2013;218(3):669-82.
14Shahrokhi N,Khaksari M,Soltani Z,etal.Effect of sex steroid hormones on brain edema,intracranial pressure,and neurologic outcomes after traumatic brain injury〔J〕.Canad J Phys Pharmacol,2010;88(4):414-21.
15Jain KK.Role of nitric oxide in neurological disorders 〔J〕.Humana Press,2013;31(6):249-82.
〔2016-11-15修回〕
(编辑 徐 杰)
R651.1
A
1005-9202(2017)18-4493-03;doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2017.18.027
1 海南省中医院脑病科
吴川丽(1981-),女,主管护师,主要从事中医急诊研究。