慢病毒介导的FOXQ1过表达对人脐带间充质干细胞衰老的影响*

2017-06-07 08:21马珊珊石振庆黄团结刘艳霞关方霞
郑州大学学报(医学版) 2017年3期
关键词:郑州大学脐带质粒

张 涛,王 攀,马珊珊,石振庆,程 康,黄团结,刘艳霞,杨 波,关方霞#

1)郑州大学生命科学学院 郑州 450001 2)郑州大学第一附属医院检验科;河南省检验医学重点实验室 郑州 450052 3)郑州大学第一附属医院神经外科 郑州 450052

慢病毒介导的FOXQ1过表达对人脐带间充质干细胞衰老的影响*

张 涛1),王 攀2)#,马珊珊1),石振庆1),程 康1),黄团结1),刘艳霞1),杨 波3),关方霞1)#

1)郑州大学生命科学学院 郑州 450001 2)郑州大学第一附属医院检验科;河南省检验医学重点实验室 郑州 450052 3)郑州大学第一附属医院神经外科 郑州 450052

#通信作者,关方霞,女,1969年2月生,博士,教授,研究方向:干细胞与再生医学,E-mail:guanfangxia@126.com;王攀,男,1986年11月生,博士,助理研究员,研究方向:细胞衰老机制,E-mail:wpzzu2004@126.com

FOXQ1;过表达;慢病毒载体;人脐带间充质干细胞;衰老

目的:构建FOXQ1慢病毒载体,探究FOXQ1过表达对人脐带间充质干细胞(hUC-MSCs)衰老的影响。方法:PCR扩增FOXQ1序列,构建慢病毒pHBLV-FOXQ1-Puro重组载体,包装病毒、感染hUC-MSCs(过表达组),感染空载体病毒的hUC-MSCs为对照,分别采用实时荧光定量PCR、Western blot检测2组细胞FOXQ1 mRNA及蛋白的表达水平,采用CCK-8法检测细胞增殖能力的变化,采用SA-β-Gal与AP染色检测hUC-MSCs衰老表型。结果:慢病毒pHBLV-FOXQ1-Puro重组载体构建成功,病毒包装后感染hUC-MSCs效果良好。过表达组FOXQ1蛋白及mRNA表达水平均高于对照组(P<0.05)。过表达组细胞增殖能力较强,FOXQ1过表达可以延缓hUC-MSCs衰老。结论:成功建立FOXQ1稳定过表达的hUC-MSCs细胞系,FOXQ1过表达可以延缓hUC-MSCs衰老。

叉头框(forkhead box,FOX)家族在胚胎发育、糖类和脂类代谢、细胞周期调控、细胞衰老、免疫调节等多种生物学过程中发挥重要作用[1]。FOXQ1是近年研究较多的FOX家族成员,目前发现其在多种肿瘤组织高表达,通过促进上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)[2],增强癌细胞的增殖侵袭能力[3]。人脐带间充质干细胞(human umbilical cord mesenchymal stem cells,hUC-MSCs)在体外培养过程中容易衰老,影响其进一步实验应用。作者旨在建立一种成熟有效的FOXQ1过表达手段,进一步探究过表达该基因在hUC-MSCs衰老中的作用。

1 材料与方法

1.1 材料 hUC-MSCs由脐带(正常剖宫产的健康产妇志愿捐献)分离、纯化后,培养至第3代使用。慢病毒包装质粒pHBLV-Puro、psPAX2、pMD2.G及FOXQ1模板质粒pIRES-FOXQ1均由北京大学基础医学院童坦君教授惠赠。293T细胞由郑州大学干细胞实验室保存。标准胎牛血清、DMEM/F12培养基、DMEM高糖培养基、磷酸盐缓冲液购自Hyclone公司。KOD FX DNA聚合酶购自Toyobo公司,核酸内切酶、DNA连接酶、反转录试剂盒及SYBR Premix Ex TaqⅡ酶购自TaKaRa公司。无内毒素质粒提取试剂盒购自TIANGEN公司,磷酸钙转染试剂盒购自Leagene公司,嘌呤霉素购自Gene Operation公司。全蛋白提取试剂盒、BCA蛋白浓度测定试剂盒、RNA提取试剂盒及PCR相关引物购自上海生工生物工程有限公司,FOXQ1一抗购自美国Santa Cruz公司,GAPDH一抗及山羊抗兔二抗购自武汉三鹰公司。CCK-8购自日本同仁公司。SA-β-Gal检测试剂盒购自美国GENMED,BCIP/NBT碱性磷酸酯酶(alkaline phosphatase,AP)显色试剂盒购自碧云天公司。

1.2 pHBLV-FOXQ1-Puro慢病毒骨架质粒的构建 以pIRES-FOXQ1质粒为模板进行PCR。上游引物5’-CGGAATTCATGAAGTTGGAGGTGTTCG-3’,下游引物5’-GCTCTAGATCAGGCTAGGAGCGTCT-3’。反应体系参照KOD FX DNA聚合酶使用说明书。反应条件:94 ℃ 5 min,95 ℃ 15 s,59 ℃ 30 s,72 ℃ 75 s,34个循环,72 ℃ 10 min,电泳后成像观察切胶回收,将PCR产物插入pHBLV-Puro质粒EcoR Ⅰ、XbaⅠ酶切位点之间,调节目的片段及质粒片段的酶切产物质量浓度至50 mg/L,按5:1比例16 ℃连接,转化热激后,涂板倒置于37 ℃烘箱15 h。挑取若干单克隆摇菌16 h,菌液经PCR鉴定,阳性克隆提取质粒后送至上海生工生物工程有限公司测序。

1.3 细胞的培养 hUC-MSCs的分离、培养参照文献[4]。293T细胞使用DMEM高糖培养基,培养条件同hUC-MSCs。

1.4 慢病毒包装及感染 包装:将慢病毒包装质粒psPAX2、pMD2.G、pHBLV-FOXQ1-Puro及pHBLV-Puro分别通过转化扩大,使用无内毒素质粒提取试剂盒提取质粒。将293T细胞接种至10 cm细胞培养皿中,12 h后将pHBLV-FOXQ1-Puro(A组)或pHBLV-Puro(B组)、psPAX2、pMD2.G按照1:1:1比例,磷酸钙法共转染293T细胞,8 h后换液,36 h后提取病毒液,1 500 r/min离心5 min后,取上清液通过0.45 μm滤头过滤,4 ℃保存备用(1周内使用)。24 h后可二次提取病毒液。

感染:感染前12 h将hUC-MSCs传代,使感染前细胞汇合度达到约40%。将A、B 2组病毒液分别感染hUC-MSCs(过表达组和对照组),并加入终质量浓度为5 mg/L聚凝胺,感染8 h后,更换为正常培养基。第1次感染24 h后可进行二次感染。感染3 d后,加入终质量浓度1 mg/L嘌呤霉素筛选3~5 d。

1.5 Western blot检测FOXQ1蛋白的表达水平 收集2组hUC-MSCs,计数后取1×106个,提取细胞全蛋白,BCA法测定蛋白浓度,SDS-PAGE电泳分离。加入按1:1 000稀释的FOXQ1与GAPDH一抗,4 ℃孵育过夜,加入1:4 000稀释的相应二抗孵育2 h,使用ECL发光液曝光,图片使用Image J软件进行灰度分析。实验重复3次。

1.6 实时荧光定量PCR检测FOXQ1 mRNA的表达水平 收集2组hUC-MSCs,计数后取5×105个,提取细胞总RNA,反转录后于-20 ℃保存。使用SYBR Green染料法,反应条件:95 ℃变性30 s,95 ℃ 5 s,60 ℃ 34 s,45个循环。用2-ΔΔCT法计算相对表达量。实验重复3次。引物序列及扩增产物大小见表1。

表1 引物序列及扩增产物大小

1.7 CCK-8法检测细胞增殖 分别取2组第10代hUC-MSCs,计数后接种于96孔板,每孔2×103个细胞,实验设置3个复孔。分别于12、36、60、84 h加入CCK-8孵育2 h,在酶标仪波长450 nm处检测光密度值。实验重复3次。

1.8 SA-β-Gal染色 分别取2组第5代hUC-MSCs,计数后以每孔2×105个细胞接种于6孔板,每组设3个复孔,8 h后,使用SA-β-Gal检测试剂盒检测细胞衰老,衰老细胞呈蓝色。于倒置显微镜下观察,取3个视野,计数衰老细胞。

1.9 AP染色 取2组第10代hUC-MSCs,计数后以每孔1×105个细胞接种于6孔板,每组设3个复孔,8 h后,加入40 g/L多聚甲醛溶液固定15 min,按照试剂盒说明书进行AP染色,阳性细胞染色偏向深棕色。倒置显微镜下观察染色结果,选取3个视野,计数阳性细胞。

1.10 统计学处理 使用SPSS 17.0处理数据。使用两独立样本t检验比较2组hUC-MSCs FOXQ1蛋白和mRNA表达水平及SA-β-Gal与AP染色阳性细胞数的差异,检验水准α=0.05。

2 结果

2.1 pHBLV-FOXQ1-Puro载体构建结果 PCR扩增结果条带单一,亮度高,引物特异性强(图1);重组质粒测序结果与FOXQ1基因CDS序列(NM_033260.3)进行BLAST比对,全长1 212 bp,完全一致,提示载体构建成功。

1:Marker;2:FOXQ1。图1 PCR基因扩增全长凝胶电泳图

2.2 hUC-MSCs分离培养及感染后形态学观察 原代干细胞呈扁平长梭状,体型较小,感染后第3代hUC-MSCs较原代细胞略长(图2)。

A:原代hUC-MSCs;B:对照组;C:过表达组。图2 hUC-MSCs形态学观察(×100)

2.3 2组hUC-MSCs中FOXQ1蛋白和mRNA的表达水平比较 过表达组hUC-MSCs中FOXQ1蛋白和mRNA的表达水平均高于对照组(图3、表2)。

图3 2组Western blot结果比较

表2 2组FOXQ1蛋白及mRNA表达水平的比较

2.4 细胞增殖检测结果 过表达组细胞生长速度高于对照组(图4)。

A:过表达组;B:对照组。图4 2组增殖曲线

2.5 SA-β-Gal和AP染色结果 过表达组hUC-MSCs蓝染细胞(衰老细胞)数明显低于对照组,AP染色阳性细胞数明显多于对照组,见图5、6,表3。

A:过表达组;B:对照组。图5 2组hUC-MSCs SA-β-Gal染色观察(×100)

A:过表达组;B:对照组。图6 2组hUC-MSCs AP染色观察(×100)

表3 2组SA-β-Gal与AP染色结果比较阳性细胞数

3 讨论

FOXQ1蛋白作为FOX家族重要的一员,具有重要的生物学作用。FOXQ1在结肠癌[5]、乳腺癌[6]、食管癌[7]、肝癌[8]等多种癌组织异常高表达,FOXQ1的表达量直接与癌变阶段、恶性程度正相关[9]。而且,高表达FOXQ1的患者多预后不佳[10]。FOXQ1在细胞增殖、侵袭及细胞周期分布等方面具有重要调控作用。在乳腺癌细胞株MDA-MB-231及胃癌细胞株 MGC-803 中沉默FOXQ1可以显著降低癌细胞增殖能力[11-12]。肿瘤细胞的侵袭与转移在肿瘤发生发展中具有重要意义[13-14],而FOXQ1可直接被一些microRNA调控[15],进而增强肿瘤细胞侵袭转移能力。

相对于真核质粒转染外源基因表达不稳定等缺点,慢病毒系统具有对外源基因容量大、导入稳定性强、感染细胞种类丰富等优势,近年来获得了广泛使用。同时,随着技术进步,慢病毒包装系统已经发展到第4代,具有更强的选择性、稳定性和安全性[16]。因此,通过慢病毒包装系统过表达FOXQ1是一种安全稳定且成熟有效的手段。

该研究首先构建了FOXQ1过表达慢病毒,感染hUC-MSCs,并初步探究了FOXQ1过表达对hUC-MSCs衰老的影响。有研究[17]表明,随着hUC-MSCs传代次数的增加,其体外增殖能力、分化能力均呈下降趋势。该研究结果显示,过表达组hUC-MSCs增殖能力明显强于对照组;衰老相关SA-β-Gal染色显示,过表达组细胞衰老程度弱于对照组,AP染色实验显示了相同的结果。上述结果表明FOXQ1过表达可有效延缓hUC-MSCs衰老,增强干细胞作用。

综上所述,实验建立了FOXQ1慢病毒稳定表达系统,在hUC-MSCs中成功过表达FOXQ1,并初步探讨了FOXQ1对hUC-MSCs的抗衰老作用,为后续研究FOXQ1过表达延缓hUC-MSCs衰老的机制奠定了基础。

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(2016-09-08收稿 责任编辑徐春燕)

Effects of lentivirus-mediated FOXQ1 overexpression on senescence of hUC-MSCs

ZHANGTao1),WANGPan2),MAShanshan1),SHIZhenqing1),CHENGKang1),HUANGTuanjie1),LIUYanxia1),YANGBo3),GUANFangxia1)

1)SchoolofLifeSciences,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450001 2)ClinicalLaboratory,theFirstAffiliatedHospital,ZhengzhouUniversity;KeyClinicalLaboratoryofHenanProvince,Zhengzhou450052 3)DepartmentofNeurosurgery,theFirstAffiliatedHospital,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450052

FOXQ1;overexpression;lentivirus vector;hUC-MSC;senescence

Aim: To construct the FOXQ1 overexpression lentivirus vector and explore the effect of FOXQ1 overexpression on human umbilical cord mesenchymal stem cells(hUC-MSCs) senescence. Methods: After amplification of FOXQ1 sequences, the recombinant lentivirus vector(pHBLV-FOXQ1-Puro) was constructed. The hUC-MSCs overexpressing FOXQ1 infected by the prepared vector and screened by puromycin screening. The hUC-MSCs infected by the empty vector were used as control. The protein and mRNA expression levels of FOXQ1 were measured by Western blot and qPCR. CCK-8 assay was used to test the ability of cell proliferation. SA-β-Gal and AP staining assay were used to detect the effect of FOXQ1 overexpression on cell senescence.Results: pHBLV-FOXQ1-Puro recombinant vector was constructed successfully, and its infection was effective. The protein and mRNA expression levels of FOXQ1 overexpression group were significantly higher than control group (P<0.05). CCK-8 results showed that FOXQ1 overexpression could enhance the ability of cell proliferation. SA-β-Gal and AP staining results showed that FOXQ1 overexpression could delay senescence of hUC-MSCs. Conclusion: The hUC-MSCs overexpressing FOXQ1 have been successfully constructed, and FOXQ1 overexpression could delay the senescence of hUC-MSCs.

10.13705/j.issn.1671-6825.2017.03.005

*国家自然科学基金资助项目 81471306,81501200;河南省高校科技创新团队基金资助项目 15IRTSTHN022;河南省科技创新人才计划项目 154200510008;中国博士后科学基金面上资助项目 2015M572122;国家教育部高等学校博士学科点专项科研基金项目 20114101110004

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