青钱柳扦插过程中内源激素变化研究

刘振华， 童方平， 李 贵， 陈 瑞， 吴 敏， 童 琪

(1.湖南省林业科学院， 湖南 长沙 410004； 2.中南林业科技大学， 湖南 长沙 410004)

青钱柳扦插过程中内源激素变化研究

刘振华1， 童方平1， 李 贵1， 陈 瑞1， 吴 敏1， 童 琪2

(1.湖南省林业科学院， 湖南 长沙 410004； 2.中南林业科技大学， 湖南 长沙 410004)

为了探明青钱柳扦插生根机理，以青钱柳半木质化枝条为插穗，用I系和K系处理插穗，纯净水为对照，研究扦插生根过程中插穗内源激素含量的变化。结果表明：用I系和K系处理插穗能够促使插穗生根，尤其以质量浓度为600 mg/L处理的插穗生根率和生根数最好。经过I系和K系处理后的插穗IAA含量均表现出先升后降再升的规律；ABA的变异规律呈“先降后升”模式；ZR的变异规律呈“先升后降再升再降”模式；GA的变异规律呈“先降后升再趋平稳”模式；IAA/ABA值的变异规律呈“先升后降再升再降”模式。

青钱柳； 扦插； 内源激素

青钱柳(Cyclocaryapaliurus)是我国特有的单种属植物及重点保护的濒危植物之一，属三类保护植物。青钱柳具有药用、保健、材用和观赏等多种用途，极具开发利用的潜在价值[1]。研究表明，青钱柳叶含多糖、三萜、皂苷、黄酮等多种重要药效成分，能够有效降低甘油三脂和胆固醇，具有神奇的天然降血压、降血糖、降血脂的功能，同时对增强人体免疫力、抗氧化、抗衰老，保护脂肪肝具有独特作用，尤其对糖尿病人群有显著降血糖的功效，适宜现代三高类慢性疾病人群饮用[2-3]。青钱柳作为一种纯天然降血压、降血糖、降血脂保健食品，深受心血管病人喜爱。

目前，市场对青钱柳的需求量越来越大，现有的青钱柳资源主要是天然林，不仅数量少，而且多零星分布于深山老林和一些自然保护区中，可供利用资源非常有限。由于其种子败育严重并具有深休眠性[4]，一般播种后需隔年甚至2年后才萌发，并且自然发芽率低，仅为0.1%～0.2%[5-6]。一些学者对解除青钱柳种子休眠的措施进行了探索，虽一定程度上提高了发芽率，但还远不能满足生产的需要[7-8]。因有性繁殖方法严重制约了青钱柳的人工资源培育和开发利用，而无性繁殖能够避开种子败育和发芽率低的问题，目前的研究多采用组织培养和扦插两种无性繁殖的方法。由于青钱柳组培快繁过程中存在外植体易褐变、生根难等问题，至今尚未建立其组培快繁的完整体系[9]，在短时间内解决组培中出现的问题较为困难，因此进行扦插繁殖成为了解决青钱柳繁殖快速、有效的方法。植物内源激素的含量是扦插生根的关键，开展青钱柳内源激素的变化对生根影响的研究，为其扦插生根快繁奠定基础，对促进青钱柳产业发展有重要意义。

1 材料与方法

1.1试验材料

插穗均采自湖南省林业科学院试验林场苗圃内，在生根过程中，采取插穗基部2 cm以内的韧皮部作为试验材料。扦插试验在自动间歇喷雾温室中进行。

1.2试验方法

1.2.1 扦插试验 本试验采用完全随机区组设计，选择2种植物生长调节剂、4种浓度处理插穗，共计10个处理，每处理50个插穗，3次重复。10个处理分别是生根诱导剂K系(K系+KT+2，4-D+维生素C(Vc)，简称K系)( CK(0 mg/L)，200 mg/L，400 mg/L，600 mg/L，800 mg/L)、生根诱导剂I系(I系+KT+2，4-D+维生素C(Vc)，简称I系)(CK(0 mg/L)，200 mg/L，400 mg/L，600 mg/L，800 mg/L)，基质为泥炭土∶珍珠岩=2.5∶1。扦插始期，于清晨温度较低时选择当年生半木质化的枝条，枝条剪取时保留2个芽，保留2～3对叶片，每片叶剪掉上部的50%，插穗基部在拌有泥浆的生根诱导剂液中浸1 h左右。将扦插好的苗放入自动喷雾的温室中，喷雾间隙时间为20 min，每次喷雾时间为6 s。

1.2.2 内源激素含量的测定 试验共取样 5次，从扦插当日开始，之后每隔6 d取样1次，每次取样随机抽取5～10根插穗，用蒸馏水将插穗清洗干净，在插穗下切口至下切口上端1 cm处取韧皮部，每处理共计5 g，现场采用液氮速冻，之后放于-70 ℃超低温冰箱中保存。采用高效液相色谱法(HPLC)测定4种内源激素玉米素核苷(ZR)、赤霉素(GA)、吲哚乙酸(IAA)、脱落酸(ABA)的含量。具体方法如下：(1)分别取3 g新鲜的样品，液氮研磨，加入50 mL 80%预冷甲醇，15 μL 30 mg/mL抗氧化剂二乙基二硫代氨基甲酸钠，4 ℃避光浸提10 h。(2)将过夜浸提的样品5 500 r/min、4 ℃离心10 min，收集上清液。(3)将再次浸提的物质5 500 r/min、4 ℃离心10 min，收集上清液，混合两次的溶液。(4)将溶液加入到旋转蒸发仪中，50 ℃减压蒸干，收集浓缩液。(5)在浓缩液中加入等体积的乙酸乙酯和石油醚(1∶1)溶液，漩涡混匀，5 500 r/min、4 ℃离心5 min，弃去酯醚相。(6)将收集的水相萃取3次，在水相中加入0.1 g PVP60，在20 ℃条件下震荡培养20 min。(7)震荡培养之后，将溶液10 000 r/min、4 ℃离心10 min，取上清液。(8)利用1 mol/L的柠檬酸调pH值至3.0。(9)将上清液加入到鼓风干燥箱中，30 ℃风干液体。(10)用少量50%色谱甲醇溶解沉淀至2 mL。(11)用0.45 μm滤膜抽滤，取50 μL上样，HPLC检测。

1.2.3 数据分析 数据分析采用Excel 2007和Spss 17.0软件处理。

2 结果与分析

2.1经过K系和I系处理后插穗生根情况

经观测发现，青钱柳插穗不定根的形成可划分为扦插始期、初始愈伤期、大量愈伤期、初始生根期和大量生根期5个阶段。由表1和表2可知，I系和K系处理青钱柳插穗能够促使青钱柳生根，不同处理生根率和生根数存在显著差异。未经处理的插穗均未生根，经过K系和I系处理的插穗均有较高的生根率，在一定范围内，随着激素浓度的升高，生根率和生根数也在升高，两种激素均以600 mg/L质量浓度处理生根率和生根数最高，在此浓度下，K系生根率达98.01%，每插穗生根数达3.8根；I系生根率达94.14%，每插穗生根数达3.5根。当质量浓度为800 mg/L处理时，生根率和生根数又开始下降。试验结果表明：经过I系和K系两种外源激素处理后的插穗能够促使青钱柳生根，并且生根率、生根数量均较好。这可能是外源激素调节了生根所需物质的生成合成与释放，恢复某些分裂能力强的细胞起动、分化出根原基，进一步形成完整的根的组织结构[10]。

表1 不同浓度K系、I系生根率、生根数方差分析表Tab 1 VarianceanalysisofrootingrateandnumberofrootingofdifferentconcentrationsofKandI生根剂观测因子变异来源自由度均方F值p值K系生根率区组间20 04273 3890 0952处理间435 1272797 426∗∗0生根数区组间20 026 0 38 0 6959处理间46 6997 664∗∗0I系生根率区组间20 05913 9060 0854处理间426 96522312 937∗∗0生根数区组间20 114 2 7470 1235处理间45 619135 398∗∗0

表2 两种生根剂的不同浓度对插穗生根影响的LSD多重比较Tab 2 LSDmultiplecomparisonofcuttingsrootingeffectbydifferentconcentrationsoftworootingreagent生根剂观测因子CK200400600800K系生根率0 0Ee80 32Dd95 92Bb98 01Aa86 13Cc生根数0Dd2 4Cc3 4ABa3 8Aa2 9BCbI系生根率0 0Ee84 29Cc88 22Bb94 14Aa82 57Dd生根数0De2 6BCd3 1ABb3 5Aa2 1Cc

2.2内源激素IAA在插穗生根过程中的动态变化

表3 I系处理插穗生根过程中内源激素IAA含量Tab 3 ThecontentofendogenousIAAinthecuttingsrootingprocessbyI(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 03437 3±96 4A3876 3±171 5A1552 4±106 7A3037 9±65 9A2146 0±11 7A2003688 2±160 7B4033 2±59 1AB3789 9±75 2B3821 2±83 2B2745 4±91 2B4003967 9±160 7C4332 2±341 1B3759 5±170 5B4560 6±129 1C3003 2±13 0C6004129 6±98 6DC7696 2±214 3C4272 10±964 5C5654 9±102 6D3882 9±11 4D8003756 7±64 92BC4067 8±97 4AB3887 6±150 8B4272 3±155 0E2956 1±40 7C

图1 I系处理插穗生根过程中内源激素IAA含量变化图Fig.1 The content of endogenous IAA in the cuttings rooting process by I

由表3和图1可以看出，经过I系处理后的插穗在扦插始期各个处理插穗中的IAA含量均表现出“先升后降再升再降”的规律，在生根过程中IAA含量出现了两个峰值，分别处于初始愈伤期和初始生根期。方差分析表明，经过激素I系处理后的插穗，除了初始愈伤期CK与I系200 mg/L和I系800 mg/L之间差异不明显外，其余各处理之间均存在显著差异，经过处理的插穗IAA含量均高于对照，经过I系600 mg/L处理的IAA含量最高，并且除扦插始期与I系400 mg/L差异不显著外，其它各个时期均与其他处理差异显著，CK始终处于最低水平。

表4 K系处理插穗生根过程中内源激素IAA含量Tab 4 ThecontentofendogenousIAAinthecuttingsrootingprocessbyK(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 03437 3±96 4A3876 3±171 5A1552 4±106 7A3037 9±65 9A2146 0±11 7A2003688 2±187 4AB4179 3±98 5B3879 3±71 0B4041 2±146 8B3843 4±104 5B4003623 0±14 9BC4828 3±29 8C3402 8±26 4C5462 7±220 0C3906 2±15 0BC6006755 8±63 9D8198 2±31 9D4308 9±23 0D5775 4±79 6D3740 8±48 7BD8003589 5±80 2B4325 8±44 4B4124 8±85 3E4529 7±61 8E3754 9±108 1BD

图2 K系处理插穗生根过程中内源激素IAA含量变化图Fig.2 The content of endogenous IAA in the cuttings rooting process by K

由表4和图2可以看出，经过K系处理后的插穗在扦插始期各个处理插穗中的IAA含量也表现出 “先升后降再升再降”的规律，在生根过程中IAA含量出现了两个峰值，分别处于初始愈伤期和初始生根期。方差分析表明，除了初始愈伤期CK与I系200 mg/L之间差异不显著之外，经过激素K系处理后的插穗与对照之间均存在显著差异，经过K系600 mg/L处理的插穗在各个时期均与其他处理存在显著差异，CK 内源IAA含量始终处于最低。

各阶段以初始愈伤期IAA含量最高，大量愈伤期IAA含量最低。各阶段IAA的变异规律呈‘先升后降再升再降’模式，即从扦插始期至初始愈伤期升高，至大量愈伤期降低，至初始生根期又升高，至大量生根期又降低。在愈伤组织形成前，经外源激素处理的插穗，在初始愈伤阶段，由叶片产生的IAA经过极性运输，运输到基部插穗内导致IAA含量增高，也可能插穗吸收外源激素后，外源激素可能在植物体内逆转为IAA，同时刺激形成层细胞的活性而产生IAA；愈伤组织形成后，POD 活性上升氧化 IAA，消除体内过多的内源 IAA，故导致初始愈伤期至大量愈伤期IAA降低；随着愈伤组织的形态建成，此时根原基的诱导需要较高含量的IAA来启动，故至初始生根期时IAA含量又上升；根系的诱导完成至开始大量生根时，插穗通过控制IAA含量在一个较低范围以促进根的伸长生长，此时维持较低含量IAA水平促进根的伸长生长，故至大量生根期IAA含量又下降。很多研究都表明 IAA 含量的高峰与根原基出现相一致，不定根发生过程中需要较高水平的内源 IAA 以诱导根原基的形成，而根原基生长和分化阶段 IAA 含量减少，也就是 IAA 含量升高与不定根形成和发生具有相关性[11-17]。本试验同样表现出了相同的规律。

2.3内源激素ABA在插穗生根过程中的动态变化

在生根过程中，经过I系处理的插穗ABA含量见表5。由表5和图3可知，所有处理与CK的ABA含量变化趋势一致，ABA含量在扦插始期至大量愈伤期是下降的，到生根期再缓慢上升。方差分析表明，I系400 mg/L与I系600 mg/L处理过的插穗在各个时期均与对照存在显著差异，其余处理均只有几个阶段与CK存在显著差异。各个时期不同处理插穗ABA含量均表现为I系600 mg/L

表5 I系处理插穗生根过程中内源激素ABA含量Tab 5 ThecontentofendogenousABAinthecuttingsrootingprocessbyI(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 0158 1±5 5A141 1±4 6A127 6±4 5A135 7±1 3A136 9±2 5A200153 5±3 0AB138 9±1 6AB125 3±0 56AB133 2±1 5A133 4±0 89A400145 6±4 6C134 2±1 5BC121 6±2 7B128 6±2 8B129 5±9 9AB600134 2±1 5D119 9±2 2D111 2±2 2C120 5±2 0C121 3±3 2B800149 7±2 4ABC136 3±1 1B123 4±1 3A130 4±1 8B130 7±1 0A

图3 I系处理插穗生根过程中内源激素ABA含量变化图Fig.3 The content of endogenous ABA in the cuttings rooting process by I

经过K系处理的ABA插穗含量见表6。由表6和图4可知，ABA含量变化规律均为“先降后升”。方差分析表明，CK与经过K系处理后的插穗，同样表现出于I系处理类似的规律，其中I系400 mg/L与I系600 mg/L处理的插穗在各个时期均与CK差异显著，并且I系400 mg/L与I系600 mg/L也存在显著差异。各个时期不同处理插穗ABA含量均表现为K系600 mg/L

表6 K系处理插穗生根过程中内源激素ABA含量Tab 6 ThecontentofendogenousABAinthecuttingsrootingprocessbyK(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 0158 1±5 5A141 1±4 6A127 6±4 5A135 7±1 3A136 9±2 5A200147 3±0 82AB134 5±2 6AB121 3±1 3B127 8±2 0B128 1±0 4B400142 7±5 6B131 2±6 1B118 8±4 0B122 2±3 9C121 6±3 1C600122 3±5 8C114 1±4 4C103 0±4 6C106 7±2 5D107 6±1 0D800153 4±1 0A138 7±1 9A125 2±1 0AB132 4±1 2A132 6±1 5E

图4 K系处理插穗生根过程中内源激素ABA变化图含量Fig.4 The content of endogenous ABA in the cuttings rooting process by K

经过I系和K系处理的插穗，不同处理浓度、不同阶段其内源ABA浓度有极显著差异。适量的生根诱导剂能抑制ABA，无论K系还是I系，以对照处理内源激素ABA水平最高，200 mg/L或800 mg/L次之，400 mg/L再次之，600 mg/L最低；各阶段以扦插始期ABA含量最高，大量愈伤期ABA含量最低。各阶段ABA的变异规律呈‘先降后升’模式，即从扦插始期经初始愈伤期至大量愈伤期ABA含量降低，愈伤组织期是根原基的形成时期，ABA含量的下降有助于叶片中IAA或其它有利生根物质向植株基部运输[18]。后经初始生根期至大量生根期ABA含量升高。因形成愈伤组织细胞分裂加速产生较少ABA，愈伤形成后进入生根阶段，细胞分裂减少，故产生较多的ABA。内源ABA含量与生根率规律完全相反，表明高水平的ABA含量能够抑制不定根的形成。

2.4内源激素ZR在插穗生根过程中的动态变化

经过I系处理的插穗ZR含量见表7，从表7和图5可以看出，各处理ZR的含量均呈现先升后降再升再降的趋势。方差分析表明，CK与各处理在大部分时期均差异显著，其中 I系600 mg/L处理的插穗在各个时期均表现出与CK存在显著差异，I系400处mg/L理的插穗除大量愈伤期与CK没有显著差异外，其他时期与CK均存在显著差异。

图5 I系处理插穗生根过程中内源激素ZR含量变化图Fig.5 The content of endogenous ZR in the cuttings rooting process by I

表8 K系处理插穗生根过程中内源激素ZR含量Tab 8 ThecontentofendogenousZRinthecuttingsrootingprocessbyK(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 0282 6±3 7A386 0±8 3A342 5±14 6A354 7±3 3A304 9±5 7A200312 3±5 6B465 9±7 9B373 1±5 3B412 8±3 5B396 1±10 0B400336 9±5 3C478 5±10 7B389 7±7 2BC430 7±3 5C410 7±6 6C600398 9±6 2D524 8±5 5C422 7±14 1D485 8±12 1D479 3±9 1D800302 4±4 6E435 2±5 9D359 8±1 7AB387 4±7 2E363 4±5 0E

图6 K系处理插穗生根过程中内源激素ZR含量变化图Fig.6 The content of endogenous ZR in the cuttings rooting process by K

经过K系处理的插穗ZR含量见表8，由表8和图6可以看出，各处理ZR的含量也均呈现先升后降再升再降的趋势。方差分析表明，各处理除CK与K系800 mg/L处理的插穗在大量愈伤期没有显著差异外，其余各个时期均存在差异显著。

经过生根诱导剂K系、I系处理，不同处理浓度、不同阶段其ZR浓度有极显著差异。适量的生根剂能诱导产生ZR，两种生根诱导剂均以600 mg/L处理内源激素ZR水平最高，400 mg/L处理次之，200 mg/L或800 mg/L再次之，对照最低。各阶段以初始愈伤期ZR含量最高，扦插始期ZR含量最低。各阶段ZR的变异规律呈‘先升后降再升再降’模式，即从扦插始期至初始愈伤期升高，至大量愈伤期降低，至初始生根期又升高，至大量生根期又降低。ZR是细胞分裂素的一种，可能和IAA是协同作用，故其作用规律是一致的。

2.5内源激素GA在插穗生根过程中的动态变化

经过I系处理的插穗生根过程中内源激素GA含量见表9，由表9和图7可知，所有处理插穗GA含量的变化总体呈现“先下降后上升再趋于平衡”的趋势。方差分析表明，CK除在扦插始期与I系200 mg/L、I系800 mg/L处理之间差异不显著之外，与其他处理在各个时期差异显著。在整个生根过程中，各时期各处理的内源GA含量均值大小为CK>I系400 mg/L>I系800 mg/L>I系200 mg/L>I系600 mg/L。

表9 I系处理插穗生根过程中内源激素GA含量Tab 9 ThecontentofendogenousGAinthecuttingsrootingprocessbyI(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 01139 3±5 0A1076 6±94 4A874 1±18 0A1154 1±40 4A1126 2±45 7A2001121 2±4 8AB986 5±4 6B812 7±6 5B914 7±6 9B908 2±5 7B4001061 9±72 6B928 5±8 0BC763 4±2 2C773 7±4 1C782 4±34 7C600960 0±35 8C890 9±22 3C693 9±8 7D750 1±21 9D741 6±10 5D8001093 4±10 5A951 3±5 1B789 7±7 1E821 4±7 6E816 9±8 0CD

图7 I系处理插穗生根过程中内源激素GA含量变化图Fig.7 The content of endogenous GA in the cuttings rooting process by I

经过K系处理的插穗生根过程中内源激素GA含量见表10，由表10和图8可知，所有处理插穗GA含量的变化总体呈现“先下降后上升再趋于平衡”的趋势，与I系处理后规律一致。方差分析表明，各个处理在各个时期差异均显著；在整个生根过程中，各时期各处理的内源GA含量均值大小为K系600 mg/L>K系400 mg/L>K系200 mg/L>K系800 mg/L>CK。

经过生根诱导剂K系、I系处理，不同处理浓度、不同阶段其GA浓度有极显著差异。无论K系还是I系，以对照处理内源激素GA水平最高，800 mg/L或200 mg/L次之，400 mg/L再次之，600 mg/L处理最低。这与600 mg/L处理能产生较高愈伤、生根率消耗较多由淀粉水解产生的养分而致GA处于较低水平。各阶段GA的变异规律呈‘先降后升再趋平稳’模式，即从扦插始期经初始愈伤期至大量愈伤期GA含量降低，至初始生根期升高，至大量生根期GA含量趋于平稳。因GA能促进淀粉水解，大量愈伤组织形成过程中消耗更多的营养而从扦插始期经初始愈伤期至大量愈伤期GA含量降低；愈伤组织形成后基本具有根系的吸收功能，不需消耗体内自身的养分而进行伸长生长，故GA含量升高。

表10 K系处理插穗生根过程中内源激素GA含量Tab 10 ThecontentofendogenousGAinthecuttingsrootingprocessbyK(ng/g)处理(mg/L)扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期 01139 3±5 0A1076 6±94 4A874 1±18 0A1154 1±40 4A1126 2±45 7A2001036 8±7 8956 4±11 5B796 3±9 4B867 6±3 9B862 1±5 9B400995 6±29 9B916 8±15 6C756 7±6 4C764 1±4 9C766 1±8 9C600784 7±20 1C776 7±6 4D595 9±13 4D655 2±10 4D661 9±2 7D8001078 5±12 9995 8±5 5BC832 7±4 7E896 2±10 3B894 8±8 1B

图8 K系处理插穗生根过程中内源激素GA含量变化图Fig.8 The content of endogenous GA in the cuttings rooting process by K

2.6IAA/ABA比值在插穗生根过程中的动态变化

2.6.1 I系处理插穗内源激素IAA/ABA比值动态 经过I系处理的插穗内源激素IAA/ABA的比值见表11，由表11可知，各处理均表现出“先升后降再升再降”的趋势，在各个生根时期，CK内源激素IAA/ABA的比值都最小。比值最大的为I系600 mg/L处理的插穗，其次为I系400 mg/L处理的插穗。

表11 I系处理插穗生根过程中内源激素IAA/ABA比值Tab 11 EndogenousIAA/ABAratiosinthecuttingsrootingprocessbyI处理扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期CK21 7428 5812 1722 3915 66I系20024 0327 9130 2528 6920 73I系40027 2532 2930 9235 4623 19I系60030 6864 1918 9946 9332 00I系80025 0929 8431 5032 7622 62

2.6.2 K系处理插穗内源激素IAA/ABA比值动态 经过K系处理插穗内源激素IAA/ABA的比值见表12，由表12可知，各处理均表现出“先升后降再升再降”的趋势，在各个生根时期，CK内源激素IAA/ABA的比值都最小，比值最大的为K系600 mg/L处理的插穗，其次为K系400 mg/L处理的插穗。

表12 K系处理插穗生根过程中内源激素IAA/ABA比值Tab 12 EndogenousIAA/ABAratiosinthecuttingsrootingprocessbyK处理扦插始期初始愈伤期大量愈伤期初始生根期大量生根期CK21 7428 5812 1722 3915 68K系20024 0830 8131 9831 6230 00K系40025 3936 8028 6444 7032 12K系60055 2471 8537 9554 1334 77K系80023 4031 1932 9534 2128 32

许多研究表明：IAA对不定根的形成具有促进作用，而ABA表现出抑制作用，IAA/ABA比值与生根相关，IAA/ABA比值高，生根率高，反之生根率低[19-20]，本试验结果符合此规律。

3 结论与讨论

(1)经过K系和I系两种外源激素处理后的插穗，能够促使难生根树种青钱柳生根，并且生根率、生根数量均较好，两种激素处理下，同时都以600 mg/L浓度处理为宜。

(2)经过I系和K系处理后的插穗，在扦插始期各个处理插穗中的IAA含量均表现出来的“先升后降再升”的规律，不同阶段其IAA浓度有极显著差异。适量的生根剂能诱导产生IAA，无论K系还是I系，以600 mg/L浓度处理内源激素IAA水平最高，400 mg/L处理次之，800 mg/L再次之，CK最低。

(3)经过I系和K系处理的插穗，不同处理浓度、不同阶段其ABA浓度有极显著差异。适量的生根诱导剂能抑制ABA，无论K系还是I系，以对照处理内源激素ABA水平最高，200 mg/L或800 mg/L次之，400 mg/L再次之，600 mg/L最低；各阶段以扦插始期ABA含量最高，大量愈伤期ABA含量最低。各阶段ABA的变异规律呈‘先降后升’模式。

(4)经过生根诱导剂K系、I系处理，不同处理浓度、不同阶段其ZR浓度有极显著差异。适量的生根剂能诱导产生ZR，两种生根诱导剂均以600 mg/L处理内源激素ZR水平最高，400 mg/L处理次之，200 mg/L或800 mg/L再次之，CK最低。各阶段以初始愈伤期ZR含量最高，扦插始期ZR含量最低。各阶段ZR的变异规律呈‘先升后降再升再降’模式。

(5)经过生根诱导剂K系、I系处理，不同处理浓度、不同阶段其GA浓度有极显著差异。无论K系还是I系，以对照处理内源激素GA水平最高，800 mg/L或200 mg/L次之，400 mg/L再次之，600 mg/L处理最低。

(6)经过I系和K系处理后的插穗各个时期不同处理插穗内源激素IAA/ABA均以600 mg/L为最大，其次为400 mg/L。IAA/ABA的比值低有利于不定根的诱导与形成，因此两种激素处理均以600 mg/L浓度处理青钱柳插穗生根效果为宜，未经处理的插穗(CK)均未生根。

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Endogenoushormoe’svariationduringtheadventitiousrootsformationofcyclocaryapaliurusbycutting

LIU Zhenhua1， TONG Fangping1， LI Gui1， CHEN Rui1， WU Min1， TONG Qi2

(1.Hunan Forestry Academy， Changsha 410004， China； 2.Central South University of Forestry and Technology， Changsha 410004， China)

In order to find out the adventitious roots formation ofCyclocaryapaliurusby cutting，semi-woody branches as cuttings were studied the contents of endogenous hormones by using I and K hormones and pure water as the control.The results showed that the I system and K system could promote the rooting of cuttings，especially in the treatment of 600 mg/L，the rooting rate and rooting number of cuttings were the best.After I and K treatment of cuttings，the contents of endogenous IAA were shown the “increase-decrease-increase”；the contents of ABA were shown the “decrease-increase”；the contents of ZR were shown the “increase-decrease-increase-decrease”；the contents of GA were shown the “increase-decrease-mode”；the value of IAA / ABA was “increase-decrease-increase-decrease”.

Cyclocaryapaliurus； cutting； endogenous hormones

2015-11-05

湖南省自然科学基金(2015JJ2088)。

刘振华(1984-)，男，湖南省宁乡县人，助理研究员，研究方向：森林培育、林木遗传育种。

童方平，博士，研究员，博士生导师；E-mail：tongfangping@sina.com

S 792.12

A

1003-5710(2016)01-0016-10

10.3969/j.issn.1003-5710.2016.01.000

(文字编校：龚玉子)