犬细小病毒病的诊断与治疗

张明星

（甘肃农业大学动物医学院动物科学专业，甘肃定西 743026）

犬细小病毒病的诊断与治疗

张明星

（甘肃农业大学动物医学院动物科学专业，甘肃定西 743026）

犬细小病毒病是由犬细小病毒引起的犬的一种急性、高度接触性的传染病，本病在临床上以剧烈呕吐，血样粪便，出血型肠炎，脱水，非化脓性心肌炎为特征，剖检可见小肠广泛性出血、肠黏膜脱落、坏死。其感染率高达100%，致死率高达10%～50%等为特征。本病一年四季均可发生，寒冷季节多发，多见于犬类比较聚集的单位或地区。不同年龄、性别和品种的犬均能感染本病，但以未成年的幼犬最为易感，给养犬业造成很大损失。本论文选取其中一个典型病例，对该病的症状、诊断和治疗等进行分析和总结。

1　典型病例

2015年1月25日，定西市康乐动物医院一只患病边牧犬前来就诊，基本信息如下：雌性，体重3.5kg，年龄两个半月，体温38.8℃。临床表现：腹泻两天，呕吐，口色泛白，狂躁，无食欲，无饮欲，脉搏116次/min，搏动差，心律不齐，肠音差。经了解，该犬只采食单纯犬粮，未免疫，未驱虫，基本在家饲养很少遛狗，来之前发病4～5d。

2　诊疗试剂

犬细小病毒抗原诊断试剂盒（韩国产）、犬细小病毒抗体诊断试剂盒（韩国产）、犬细小单克隆抗体、参麦注射液（10ml）、西咪替丁注射液（0.2g/2ml）、酚磺乙胺注射液（0.25g/2ml）、维生素C注射液（0.5g/2ml）、维生素B6注射液（0.1g/1ml）、辅酶A（100单位）、ATP注射液（20mg/2ml）、0.9%氯化钠、（100ml，250ml）、5%葡萄糖注射液（100ml，250ml）、肌苷注射液（100mg/2ml）、羊胎素转移因子注射液（15mg/10ml）、犬细小抑制蛋白（冻干型）（400万单位）、复方氯化钠（500ml）、硫酸阿米卡星注射液（0.2g/2ml）（20万单位）。

3　诊疗设备

体温计、听诊器、注射器、输液器、消毒棉、镊子、针头、橡胶管、试管、留置针、输液泵、胶布、移液枪、迈瑞BC-2800Vet全自动血球计数仪、犬冠状病毒抗原快速检测试纸、犬细小病毒抗原快速检测试板。

4　临床症状

临床表现为腹泻，呕吐，口色泛白，狂躁，无食欲，无饮欲，搏动差，心律不齐，肠音差。

5　诊断

5.1血常规检查

在病犬前肢静脉采血，用移液枪取20微升，加入稀释液中，用迈瑞BC-2800Vet全自动血球计数仪检测。

5.2犬细小病毒抗原检查

用犬细小病毒抗原快速检测试板检测：用采样棒蘸取口水，放入收集管中使之浸泡于缓冲液中，充分摇匀，然后再于肛门采取粪样，放入收集管中使之浸泡于缓冲液中，充分摇匀，用滴管吸取缓冲液上层，向检测板样品孔中滴加3～4滴，等待检测液在吸收衬垫上扩散完毕，加样5～10 min后，即可判读结果。通过检测线与对照线是否出现色带，来判读结果。阴性结果：检测线T没有出现色带，而对照线C出现色带；阳性结果：T与C都出现色带；无效结果：T与C都没有出现色带，或只出现T色带。

5.3犬冠状病毒抗原检查

用犬冠状病毒抗原快速检测试纸检测，用采样棒蘸取患犬肛门粪样，放入装有稀释液的样品管中充分搅拌混合，然后再取口水，放入收集管中使之浸泡于缓冲液中，充分摇匀，静置2 min，用吸管吸取上清液，在试剂盒样品孔中滴加2～4滴提取液，等待5 min观察结果，10 min后的结果无效。判断结果：根据检测线与对照线的结果判断阴性和阳性。阴性：只有对照线C呈红色或者紫色线时，此情况表示没有感染病毒；阳性：只有检测线T与对照线C均呈红色或紫色时，此情况表示已经感染病毒；无效结果：T 与C都没有出现色带，或只出现T色带。

5.4诊断结果

5.4.1血常规检查结果

使用兽用血液细胞分析仪检测血常规，结果详见表1。

表1　兽用血液细胞分析仪细胞计数

由检测结果显示该犬白细胞数目、中性粒细胞数目低于正常水平，这是犬病毒感染的标志。血小板数目高于正常水平，说明该犬有出血。

5.4.2犬细小病毒抗原检查结果

使用检测反应板检测抗原，结果详见下图。

由检测结果显示为阳性（T与C都出现色带），说明该犬为犬细小病毒感染者。

5.4.3犬冠状病毒抗原检查结果

使用检测反应板检测抗原，结果详见下图。

由检测结果显示结果为阴性（只有对照线C呈红色或者紫色线时），说明该犬没有感染犬冠状病毒。

综合各项诊断结果，确诊该犬感染细小病毒。

6　治疗

6.1抑制病原体

治疗原则：抑制疾病的发展，控制继发感染，提高动物机体抵抗力。

肌肉注射药物：CPV抑制蛋白240万单位，参麦注射液2.0 ml，羊胎素转移因子注射液2.0 ml，硫酸阿米卡星注射液0.5 ml，以上药物肌肉注射，每天1次，连用3～5d。

静脉注射：第一组，0.5%葡萄糖60.0 ml，CPV单抗4 ml。第二组，0.5%葡萄糖50.0 ml，Vitamin C0.5g，Vitamin B61.0 ml，西咪替丁注射液1.0ml，酚磺乙胺注射液1.0 ml。第三组，0.5%葡萄糖50.0 ml，肌苷注射液2 ml，辅酶A 50单位，ATP注射液2 ml。第四组，复方氯化钠10.0 ml。静脉注射，每天1次，连用3～5d。

6.2对症疗法

对症治疗原则：止血、止吐、止泻、抗休克、抗菌消炎及灌肠处理。止血时，临床常用酚磺乙胺，维生素K，在治疗过程中给予一定量维生素C，能够提高止血的功效，有利于消化道黏膜损伤的快速愈合，提高止血作用。止吐一般用维生素B6、甲氧氯普胺、阿托品等药物，胃肠道出血时不能使用甲氧氯普胺。止泻主要使用斯密达，因病犬呕吐，口服给药不好，最好用深部灌肠。抗生素类药物可以选择氨苄西林钠，庆大霉素静脉注射，每天1次或2次。心功能不全（心肌炎）者可静脉滴注参麦注射液1～10ml，VB120.25～0.5mg，肌苷50～100mg，混合肌注。

6.3护理措施

犬细小病毒病在治疗过程中，护理非常重要，病犬的整个消化系统基本不能接受食物，但在治疗过程中给予少量清淡饮食如稀饭、面糊等有利于治疗本病，愈后开始饲喂时，可饲喂易于消化的流体样食物，不能饲喂肉、蛋、牛奶制品及高蛋白饲料，否则会导致胃肠二次损伤。体温偏低时，应注意保暖。

6.4治疗结果

药物治疗4d后，该犬精神好转，食欲饮欲良好，没有出现呕吐，腹泻等现象，预计该犬已经康复，现做血常规检查和犬细小病毒抗原检查。结果如下：

6.4.1血常规检查

使用兽用血液细胞分析仪检测血常规，结果详见表2。

表2　兽用血液细胞分析仪细胞计数

综合犬细小病毒抗原检查和血常规检查，该犬细小病毒已经治愈。

6.4.2犬细小病毒抗原检查

由检测结果显示为阴性（检测线T没有出现色带，而对照线C出现色带）。表明该犬细小病毒已经治愈，达到了理想的治疗效果。

7　讨论与分析

7.1流行病学特点

本病分为间接传染和直接接触传染。病犬、康复犬和带毒犬都是传染源，病犬主要从尿液粪便和呕吐物中排毒，而康复犬可能从尿液和粪便中长期排毒，污染饮水、饲料、食具和周围环境，使接触受到感染。

7.2诊断

在犬的常见病症中，犬细小病毒病应注意与犬冠状病毒肠炎、犬瘟热、犬细菌性胃肠炎等疾病的鉴别。

7.3预防

（1）接种疫苗：预防本病的根本措施是免疫接种，进口苗和国产苗的品种很多，一定要到正规医院按要求连续注射质量较好的疫苗。

（2）作好消毒工作：犬细小病毒对多种理化因素和常用消毒剂具有较强的抵抗力，存活时间长，故其传染性极强，但对福尔马林，84 消毒液等敏感。一旦发病，应迅速隔离病犬，对病犬污染的犬舍饲具、用具、运输工具进行严格的消毒，

（3）加强日常工作：时常做好保温工作，需要长途运输的情况应做到尽量减少其应激反应，可在运输之前通过饮水加入电解多维，以缓解其反应。定时定量饲喂饲料，定期驱虫。健康犬不要接触病犬，动物医院对患病犬做好隔离工作。

[1]侯加法.小动物疾病学[M］.中国农业出版社，2002：82-84.

[2]陈溥言.兽医传染病学（第五版）[M］.北京：中国农业出版社，2005.

[3]祝兴林，何剑斌，赵玉军，等.犬细小病毒感染的研究现状[J］.辽宁畜牧兽医，2004，（10）：40-42 .