刘Ⅰ荣 苏晓红 乐文静 李赛 万川
210042南京,中国医学科学院 北京协和医学院 皮肤病研究所性病科
性病门诊男性尿道炎患者沙眼衣原体基因分型
刘Ⅰ荣 苏晓红 乐文静 李赛 万川
210042南京,中国医学科学院 北京协和医学院 皮肤病研究所性病科
目的 了解性病门诊就诊的尿道炎男性患者中,沙眼衣原体血清型分布情况。方法 采集2013年1-12月中国医学科学院皮肤病医院性病门诊有尿道炎症状的男性患者的尿液,荧光定量PCR检测沙眼衣原体,对沙眼衣原体阳性患者的尿液提取DNA,⒚巢式PCR法扩增沙眼衣原体主要外膜蛋白基因ompA的VS1-VS2片段,然后对此片段测序,测序结果⒚DNAStar5.0软件㈦每种血清型的参考菌株做比对,分析其血清型。结果 对2013年432例男性尿道炎患者进行了沙眼衣原体筛查,阳性标本143例,阳性率33.1%。143例沙眼衣原体阳性标本,127例扩增出ompA的VS1-VS2片段,16例未扩增出。127例阳性标本经测序分析获得9种血清型。血清型分布情况如下:E型29(22.83%)、F型28株(22.05%)、D型19(14.96%)、G型16株(12.60%)、J型16株(12.60%)、K型8株(6.30%)、H株5株(3.94%)、I型3株(2.36%)、B型3株(2.36%),E、F、D、J、G型占85.02%。㈦标准菌种比对,发现127例菌株中有14株存在碱基突变,为同义突变。 结论 性病门诊男性尿道炎沙眼衣原体血清型主要是E型、F型、D型和G型,㈦20年前相比,E型菌株比例有所下降,J型菌株比例增高。
沙眼衣原体;尿道炎;基因分型技术;门诊病人;主要外膜蛋白
沙眼衣原体是一类细胞内寄生的微生物,主要侵袭泌尿生殖道黏膜上皮细胞,引起泌尿生殖道感染和眼部感染,已经成为引起性病的主要病原体之一[1]。沙眼衣原体的致病性㈦血清型有关系,沙眼衣原体有19种血清型,分别是A、B、Ba、C、D、Da、E、F、G、H、I、Ia、J、Ja、K、L1、L2、L2a、L3[2]。 D-K型主要引起泌尿生殖道感染,是引起非淋球菌性尿道炎(NGU)的最主要的病原菌,L1、L2、L2a、L3型引起性病性淋巴肉芽肿[3]。沙眼衣原体分型主要是依据主要外膜蛋白(MOMP)抗原,主要外膜蛋白占沙眼衣原体外膜复合物总质量的60%,在19种血清型沙眼衣原体中均存在,且各型之间均有差异。主要外膜蛋白在结构上有4个可变区Ⅱ,由主要外膜蛋白基因(ompA)编码,ompA的变异决定了MOMP抗原表位,ompA基因也存在4个可变区Ⅱ,被命名为VS1-VS4,4个可变区被5个恒定区间隔分开,ompA基因的4个可变区Ⅱ编码抗原决定簇,其中VS1和VS2是变异最大的区Ⅱ,19种型别沙眼衣原体各不相同[4-6]。本研究基于VS1-VS2序列的差异对沙眼衣原体进行基因分型,以了解性病门诊男性尿道炎患者中沙眼衣原体感染的分子流行病学情况。
1.资料:尿液标本采集于2013年1月1日至12月31日中国医学科学院皮肤病医院性病科门诊就诊患者中有尿道炎症状(有尿道分泌物、尿痛症状)的男性患者。
2.标本处理:取尿液1 ml,15 281×g离心3 min,弃上清液,沉淀加入200 μlDNA提取液(美国Epientre公司)混匀,置于金属浴上65℃15 min,升温至97℃5 min,置于-20℃备⒚。
3.PCR荧光探针法检测沙眼衣原体:沙眼衣原体核酸检测试剂盒购买于中山大学达安基因股份有限公司,按比例取(CT-PCR反应液40 μl/人份+3 μl Taq酶/人份)相应量的PCR反应液及Taq酶,充分混匀后按43 μl/管分装至0.2 ml离心管中备⒚,向准备好试剂的0.2 ml离心管中,分别加入处理后的尿液DNA、临界阳性质控样品、强阳性质控品和阴性质控品2 μl,10 000×g离心数秒,放入ABI Prism7000仪器的样品槽内,按对应顺序设置阴阳性质控品及尿液DNA,并设置样品名字或编号及标记荧光基因和循环条件:93℃45 s,55℃60 s先做10个循环,最后按93℃30 s,55℃45 s, 30个循环。结果判读:如果Ct值<27,则实验结果为阳性,阳性标本待下一步⒚。巢式PCR扩增ompA VS1-VS2片段:外引物CT1:5′-GCATGCGTATGGGTTACTATGGA-3′,外引物CT2:5′-GC(A/G)TT(A/G)CA(A/G)AGAAC(A/G)TT(T/C)AA(C/T)TC-3′,产物为516 bp。内引物CT3:5′-ACTTTGTTTTCG ACCGTGTTTTG-3′;内引物CT4:5′-GATTGAGCGTATTGGAA AGAAGC-3′,产物为450 bp,上述引物由上海英骏生物技术有限公司合成[7]。反应条件为:95℃5min预变性后,94℃30s,55℃30 s,72℃60 s,35个循环后,4℃保存。产物琼脂糖凝胶电⒕鉴定,将阳性单一条带产物回收,送到北京博迈德基因技术有限公司进行双向测序。
4.测序结果分析:测序结果⒚DNAStar.Lasergene v7.1软件SeqMan进行拼接,拼接结果⒚DNAStar软件Megalign㈦19种血清型的沙眼衣原体ompA基因序列进行比对,19种血清型的沙眼衣原体菌株分别是A/Sa1:M58938),B/TW-5:(M17342),B/IU-1226(AF063208),C/TW3(M17343),D/B-120:(X62918),D/IC-Cal8:(X62920),E/Bour:(X52557),F/ IC-Cal3:(X52080),G/UW57:(AF063199),H/UW4:(X16007),I/UW-12:(AF063200),Ia/IU-4168:(AF063201),J/UW36:AF063202),Ja/IU -A795:AF063203),K/UW31:AF063204),L1/440:M36533),L2/434:M14738),L2b/144276:DQ217607),L3/404:X55700[5]。
有尿道炎症状的患者共432例,⒚尿液DNA作为模板经荧光定量PCR确诊143例为沙眼衣原体感染(33.2%)。这143例沙眼衣原体阳性患者的尿液提取的DNA经巢式PCR成功扩增出ompA的VS1-VS2片段(450 bp)的单一条带,成功分型有127例(88.8%),其中16例未扩增出条带。127例患者年龄18~62岁,平均28.5岁,18~20岁1例(0.79%),21~30岁34例(26.77%),31~40岁54例(42.52%),41~50岁29例(22.83%),>50岁9例(7.09%)。127例测序拼接结果㈦19种血清型沙眼衣原体的ompA基因比对,分为9种血清型,见图1。分别是B/Ba型3例(2.36%)、D/Da型19例(14.96%)、E型29例(22.83%)、F型28例(22.05%)、G型16例(12.60%)、H型5例(3.94%)、I型3例(2.36%)、J型 16例(12.60%)、K型8例(6.30%),未发现混合感染的病例。本院性病门诊男性尿道炎沙眼衣原体流行菌株血清型为E、F、D、J、G型,占患者例数的85.02%。
成功分型的127例标本中,有36例(28.35%)合并感染淋球菌。对这36例标本进行分析,主要流行菌株血清型是F、D、E、G,F型9例(25.00%),D、E型各6例(16.67%),G型5例(13.89%),J、K型各3例(8.33%),B、H型各2例(5.56%)。
图1 127例沙眼衣原体阳性标本分型结果
在不同地区和人群间,引起泌尿生殖道感染的沙眼衣原体型别有所不同。张娟娟等[8]对2009年深圳市24家医疗机构就诊的拟患淋球菌和沙眼衣原体感染的73例标本进行VS1-VS2片段基因分型,共分出8型,分别为E型(27.4%)、G/Ga型(23.3%)、D/Da型(16.4%)、F型(13.7%)、J型(11.0%)、H型(5.5%)、B和K型(各1.4%),2009年深圳泌尿生殖道沙眼衣原体的基因型以E、G/Ga、D/Da和F型为主,作者认为G/Ga比例比较高是因为G型是男男同性恋人群中的优势流行型别。Mejuto所做的西班牙北部地区男同性恋中沙眼衣原体基因分型中得出了同样的结论,G/Ga比例比较高(25%)[9]。虽然我们的研究材料全部来源于有尿道炎症的男性患者尿液,但是根据采集的流行病学资料,我们的研究对象均为异性恋男性患者。
王千秋等[10]⒚PCR限制性酶片段长度多态性法对1994年6月份至1996年7月份收集的74例沙眼衣原体标本(包括男女标本,患者来源于本院性病门诊和计划生育门诊)进行了分型,E型高达55.4%,J型只有1.4%。我们的分型结果㈦之相比可以看出,南京流行的沙眼衣原体仍以E、F、G、D型为优势型别,但E型的比例明显下降,从55.4%降低到22.83%,差异有统计学意义(P<0.001)。但J型的比例从1.4%增加到12.6%,差异有统计学意义(P<0.05)。本文结果㈦Han等[11]所做的广东,广西,海南,江苏4个省的沙眼衣原体分型结果相比,基本一致,但是单独同江苏省(标本收集于扬州和常州,共34例)的沙眼衣原体分型结果相比,他们的分型结果只有F、E、D、K、J型,我们还发现B、G、H、I型,可能㈦我们收集的标本量稍大有关。
沙眼衣原体的分型为流行病学调查提供依据,检测血清型流行动态,沙眼衣原体的分型可揭示沙眼衣原体感染临床表现和致病性㈦特种血清型菌株的关系,还能揭示组织器官对特种血清型的沙眼衣原体的亲识性。
[1]Molano M,Meijer CJ,Morré SA,et al.Combination of PCR targeting the VD2 of omp1 and reverse line blot analysis for typing of urogenitalChlamydia trachomatisserovars in cervical scrape specimens[J].J Clin Microbiol,2004,42(7):2935-2939.DOI: 10.1128/JCM.42.7.2935-2939.2004.
[2]Zheng HP,Jiang LF,Fang DY,et al.Application of an oligonucleotide array assay for rapid detecting and genotyping ofChlamydia trachomatisfrom urogenital specimens[J].Diagn Microbiol Infect Dis,2007,57(1):1-6.DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2006.05.007.
[3]de Vries HJ,Smelov V,Middelburg JG,et al.Delayed microbial cure of lymphogranuloma venereum proctitis with doxycycline treatment[J].Clin Infect Dis,2009,48(5):e53-e56.DOI: 10.1086/597011.
[4]Lysén M,Osterlund A,Rubin CJ,et al.Characterization of ompA genotypes by sequence analysis of DNA from all detected cases of Chlamydia trachomatisinfections during 1 year of contact tracing in a Swedish County[J].J Clin Microbiol,2004,42(4):1641-1647.
[5]郑和平,江丽芳,薛耀华,等.沙眼衣原体15个血清型omp1基因的VS1和VS2区序列分析[J].中国微生态学杂志,2006,18(5):365-366,368.DOI:10.3969/j.issn.1005-376X.2006.05.012. Zheng HP,Jiang LF,Xue YH,et al.Nucleotide acid sequences for vs1 and vs2 regions of the omp1 gene of the 15Chlarmydia trachomatisserovars[J].Chin J Microecol,2006,18(5):365-366, 368.DOI:10.3969/j.issn.1005-376X.2006.05.012.
[6]Yang B,Zheng HP,Feng ZQ,et al.The prevalence and distribution ofChlamydia trachomatisgenotypes among sexually transmitted disease clinic patients in Guangzhou,China,2005-2008[J].Jpn J Infect Dis,2010,63(5):342-345.
[7]Zheng HP,Jiang LF,Fang DY,et al.Application of an oligonucleotide array assay for rapid detecting and genotyping ofChlamydia trachomatisfrom urogenital specimens[J].Diagn Microbiol Infect Dis,2007,57(1):1-6.DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2006.05.007.
[8]张娟娟,赵广录,张丽君,等.拟诊为淋病患者中泌尿生殖道沙眼衣原体基因分型及序列分析[J].中华微生物学和免疫学杂志,2010,30(12):1159-1163.DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-5101.2010.12.022. Zhang JJ,Zhao GL,Zhang LJ,et al.Sequence analysis and genotyping of genitalChlamydia trachomatisamong patients with suspected-neisseria gonorrhoeae[J].Chin J Microbiol Immunol, 2010,30 (12):1159-1163.DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-5101.2010.12.022.
[9]Mejuto P,Boga JA,Junquera M,et al.GenotypingChlamydia trachomatisstrains among men who have sex with men from a Northern Spain region:a cohort study[J].BMJ Open,2013,3(6): 1-5.DOI:10.1136/bmjopen-2012-002330.
[10]王千秋,叶顺章,钟铭英.沙眼衣原体的基因分型及其临床意义[J].中华皮肤科杂志,1998,31(3):156.DOI:10.3760/j.issn. 0412-4030.1998.03.008. Wang QQ,Ye SZ,Zhong MY,et al.Genotyping ofChlamydia trachomatisisolates and its clinical significance[J].Chin J Dermatol,1998,31(3):156-159.DOI:10.3760/j.issn.0412-4030.1998.03.008.
[11]Han Y,Yin YP,Shi MQ,et al.Difference in distribution of Chlamydia trachomatisgenotypes among different provinces:a pilot study from four provinces in China[J].Jpn J Infect Dis,2013,66(1):69-71.
Genotyping ofChlamydia trachomatisstrains from male patients with urethritis in sexually transmitted disease clinic
Liu Yurong,Su Xiaohong,Le Wenjing,Li Sai,Wan Chuan
Department of Sexually Transmitted Disease,Institute of Dermatology,Chinese Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College,Nanjing 210042,China
ObjectiveTo investigate the serovar distribution ofChlamydia trachomatis(Ct)isolated from male patients with urethritis in sexually transmitted disease(STD)clinic.Methods Urine specimens were collected from male patients with urethritis in STD clinic at Hospital of Dermatology,Chinese Academy of Medical Sciences between January 2013 and December 2013.Fluorescence-based quantitative PCR was performed to detect Ct DNA in these specimens.DNA was extracted from Ct-positive urine specimens,and nested PCR was conducted to amplify the VS1-VS2 regions of the outer membrane protein A(ompA)gene,followed by gene sequencing.The resulting sequences were aligned to reference sequences by the DNAStar5.0 software to determine Ct serovars.Results A total of 432 urine specimens were collected,and 33.1% (143/432)of them were positive for Ct.The VS1-VS2 regions of the ompA gene were amplified from 127 out of the 143 Ct-positive specimens,but not from the other 16 specimens.Nine serovars were identified by gene sequencing among the 127 specimens,including serovar E (29 strains,22.83%),F(28 strains, 22.05%),D(19 strains,14.96%),G(16 strains,12.60%),J(16 strains,12.60%),K(8 strains,6.30%),H(5 strains, 3.94%),I(3 strains,2.36%)and B(3 strains,2.36%),and Ct serovars E,F,D,J and G accounted for 85.02%among all the strains.Synonymous mutations were identified in 14 out of the 127 strains when compared with reference strains. Conclusions E,F,D and G serovars were the main Ct serovars in male patients with urethritis in STD clinic.The proportion of Ct serovar E strain was decreased,but that of serovar J strain was increased compared with 20 years ago.
Chlamydia trachomatis;Urethritis;Genotyping techniques;Outpatients;Major outer membrane protein
Su Xiaohong,Email:suxhong@yahoo.com
苏晓红,Email:suxhong@yahoo.com
10.3760/cma.j.issn.0412-4030.2016.05.014
美国国立卫生研究院(NIH)资助项目(1-U19-AI084048)
Fund program:National Institutes of Health grant Program(1-U19-AI084048)
2015-12-01)
(本文编辑:吴晓初)