六味地黄汤对5/6肾切除大鼠NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ表达的影响

2016-10-24 00:48李岩岩何泽云周艳利
湖南中医药大学学报 2016年5期
关键词:六味地黄依那普利肾小管

李岩岩,何泽云*,吴 凡,周艳利

(1.郑州市第三人民医院,河南郑州450000;2.湖南中医药大学第一附属医院,湖南长沙410007;3.广州市中医医院,广东广州510130)

六味地黄汤对5/6肾切除大鼠NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ表达的影响

李岩岩1,何泽云2*,吴凡1,周艳利3

(1.郑州市第三人民医院,河南郑州450000;2.湖南中医药大学第一附属医院,湖南长沙410007;3.广州市中医医院,广东广州510130)

目的观察六味地黄汤对5/6肾切除大鼠残肾转录因子-核因子κB(NF-κB)、单核细胞趋化因子(MCP-1)及Ⅲ型胶原(Col-Ⅲ)表达的影响,探讨六味地黄汤抑制肾间质纤维化进展的作用机制。方法按照随机数字表法将60只SD雄性大鼠分为5组:空白组、假手术组、模型组、依那普利组、六味地黄汤组,每组12只,后三组行5/6肾切除术诱导大鼠肾衰模型,假手术组同期手术,但不损及肾脏。造模术后3 d进行灌胃干预。灌胃8周后处死各组大鼠,观察各组大鼠残肾组织形态学变化并用免疫组化法检测大鼠残肾NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ的表达。结果(1)观察5/6肾切除大鼠残肾组织细胞形态学,与模型组相比六味地黄汤、依那普利组可减轻大鼠肾间质损害及纤维化程度;(2)免疫组化半定量分析显示六味地黄汤组肾皮质的NF-κB、MCP-1及Col-Ⅲ表达均明显低于模型组(P<0.05),与依那普利组差异无统计学意义(P>0.05)。结论六味地黄汤可能通过下调NF-κB、MCP-1及Col-Ⅲ的表达,减少细胞外基质的积聚,减轻炎症反应和纤维化程度,抑制5/6肾切除大鼠肾间质纤维化进展,可作为慢性肾衰竭的辅助用药。

六味地黄汤;5/6肾切除;转录因子-核因子κB;单核细胞趋化因子;Ⅲ型胶原

〔Abstract〕Objective To observe the effects of Liuwei Dihuang decoction on the expression of nuclear factor kappa B(NF-κB),monocyte chemoattractant protein-1(MCP-1)and collagen type III(Col-Ⅲ)in remnant kidney of 5/6 nephrectmized rats,and to investigate the mechanism of action for Liuwei Dihuang decoction on renal tubulointerstitial fibrosis.M ethods The sixty male Sprapue-Dewley rats were randomly divided into five groups:blank group,sham-operation group,model group,enalapril group and Liuwei Dihuang decoction group,12 rats in each group.The model group,enalapril group and Liuwei Dihuang decoction group adopted 5/6 nephrectomized induced into renal failure model.After 3 days of modeling,the rats were treated by gavage.After 8 weeks,rats were sacrificed,remnant kidney tissue morphological changes were observed and the expression of NF-kB,MCP-1,Col-Ⅲlevels were tested by immunohistochemistry.Results(1)The cell morphology in remnant kidney of 5/6 nephrectmized rats was observed.Compared with model group,renal tubulointerstitial damage and fibrosis was reduced in Liuwei Dihuang decoction and enalapril group;(2)Compared with model group,NF-κB,MCP-1 and Col-III expression level were reduced markedly in Liuwei Dihuang decoction group(P<0.05),there is no obvious diffrencebetween Liuwei Dihaung group and enalapril group(P>0.05).Conclusion Liuwei Dihuang decoction may inhibit the expression of NF-κB,reduce the expression of MCP-1,decrease the accumulation of extracellular matrix,reduce the inflammation and fibrosis and delay the progress of renal interstitial fibrosis,which can be the adjuvant drug of chronic renal failure.

〔Keywords〕Liuwei Dihuang decoction;5/6 nephrectomy;nuclear factor kappa B;monocyte chemoattractant protein-1;collagen type III

肾间质纤维化(renal interstitial fibrosis,RIF)是各种肾病进展到终末期肾病的基础,RIF的发生涉及炎性细胞浸润、肾小管损伤、肾间质成纤维细胞的增殖、细胞外基质过度沉积等过程[1]。单核细胞趋化因子(Monocyte chemotactic protein-1,MCP-1)是特异性单核巨噬细胞趋化因子,它借助转录因子-核因子κB(Nuclear factor-kappa B,NF-κB),通过其同源受体-CCR2调节RIF的发生,在进行性器官纤维化中起重要作用。NF-κB参与了多种炎症因子和促纤维化因子的合成,最终导致细胞外基质(extracellular matrix,ECM)效应细胞被激活,产生大量ECM。Ⅲ型胶原(Collagen TypeⅢ,Col-Ⅲ)是ECM的重要成分,其合成和降解的失衡是引起间质纤维化的直接原因之一。5/6肾切除是可以得到逐步进展至肾小球硬化、间质纤维化,最后出现肾功能衰竭的稳定动物模型。六味地黄汤以其安全有效的特点广泛运用于慢性肾脏病的临床治疗。本文通过探讨六味地黄汤对5/6肾切除大鼠残肾NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ的影响,探讨六味地黄汤抑制肾间质纤维化进展的作用机制。

1 材料与方法

1.1实验材料

1.1.1实验动物健康SD雄性大鼠60只,体质量(200±20)g,购于湖南斯莱克景达实验动物有限公司。许可证号:SCXK(湘)2013-0004。大鼠饲养环境保持通风、恒温,每日更换垫料,定期消毒笼具;每天给予12 h灯光照射。

1.1.2主要试剂与仪器兔抗大鼠NF-κBp65单克隆抗体,兔抗大鼠MCP-1单克隆抗体,兔抗大鼠Col-Ⅲ单克隆抗体,PV-9000二步法免疫组化检测试剂,DAB显色剂试剂盒均购自北京中杉金桥生物工程有限公司。FINESSE325型石蜡切片机(英国珊顿公司);Motic BA410T生物显微镜(德国);BM-Ⅷ生物组织包埋机、CS-Ⅵ型摊片烤片机、TS-12A型生物组织自动脱水机(孝感市宏业医用仪器有限公司)。

1.1.3实验药物六味地黄汤(熟地黄24 g,山茱萸12 g,山药12 g,泽泻9 g,茯苓9 g,牡丹皮9 g)由湖南中医药大学第一附属医院药剂科提供。制备方法:先将药材用相当于药材2倍的自来水浸泡2 h,武火煮沸后再文火煎熬30 min,将两煎液混合,于水浴锅上浓缩为含生药0.1 g/mL的药液;马来酸依那普利片剂(江苏恒瑞医药股份有限公司,批号H10042451)。

1.2实验方法

1.2.1分组与造模按照随机数字表法将大鼠随机等分为A组(空白组)、B组(假手术组)、C组(模型组)、D组(依那普利组)、E组(六味地黄汤组),每组12只。动物适用性喂养一周后,C、D、E组均按照文献[2]在无菌条件下行5/6肾切除手术。B组同期行两次手术,每次仅打开腹腔,暴露肾脏后,关腹。

1.2.2药物干预A、B、C组予等体积蒸馏水灌胃,1次/d;D组依那普利组以10 mg/(kg·d)溶于等容积蒸馏水灌胃,1次/d。E组予六味地黄汤剂灌胃,剂量为6.75 g/kg生药,相当于60 kg体质量成人每天75 g生药的等效剂量,1次/d;共给药8周。

1.3检测项目和方法

实验结束后处死各组大鼠并取出残肾组织称重,观察残肾大体标本形态,将残肾组织行冠状切面,浸入4%多聚甲醛中固定,石蜡包埋,制成4μm切片,用于光镜及免疫组化染色。

1.3.1肾脏病理检查取石蜡块,4μm切片后分别进行HE、Masson染色,MOTIC光学显微镜下观察。

1.3.2免疫组化染色采用PV-9000二步法检测残肾组织中NF-κB、MCP-1及Col-III的表达,具体操作步骤如下:(1)切片常规脱蜡至水;(2)3%H2O2室温孵化10 min,蒸馏水漂洗后;(3)热修复抗原,冷却后用PBS液漂洗两次;(4)从微波盒中拿出组织,放入保湿盒中,滴加适量的一抗工作液(约50 uL)分别为:兔抗大鼠NF-κBp65单克隆抗体,兔抗大鼠MCP-1单克隆抗体,兔抗大鼠Col-Ⅲ单克隆抗体;(5)滴加试剂1,室温孵育20 min,PBS冲洗,5 min× 3次,滴加试剂2,室温孵育20~30 min,PBS冲洗,5 min×3次;(6)DAB显色,苏木素轻度复染5 min到8 min,脱水,透明,中性树胶封片。采用IPP6.0医学图像分析系统,每张切片随机选取5个不含肾小球和小血管的肾皮质200倍视野,测定累积光密度(IOD)值,对NF-κB、MCP-1及Col-Ⅲ进行图像分析。

1.4统计学分析

2 结果

2.1动物存活情况

在造模过程及造模后两周内,模型组4只大鼠、依那普利组2只大鼠、六味地黄汤组2只大鼠死亡。死亡原因有麻醉意外、术中大出血及术后感染等。予以剔除。模型组剩余大鼠8只,依那普利组剩余大鼠10只、六味地黄汤组剩余大鼠10只。

2.2肾组织光镜检查

2.2.1HE染色5/6肾切除大鼠残肾组织HE染色显示,空白组及假手术组:肾小球结构清晰,肾小管上皮细胞排列整齐。模型组:肾小球明显缩小、纤维化,肾小管上皮细胞萎缩、脱落,部分管腔不规则、扩张;肾间质可见淋巴细胞浸润及大量纤维结缔组织增生;依那普利组:可见被膜纤维增厚,肾小球轻度缩小,肾小管萎缩;六味地黄汤组:肾小球肥大、小管上皮细胞水肿;肾间质少量纤维结缔组织增生及轻度水肿。见图1。

2.2.2Masson染色5/6肾切除大鼠残肾组织Masson染色显示:正常组及假手术组可见肾小球、肾小管结构正常,肾间质未见胶原纤维增生;模型组肾小球内及肾间质均可见大量胶原纤维;依那普利组可见局灶性间质纤维增生,部分小管纤维化;六味地黄汤组可见部分小管纤维化,局灶性间质纤维化,肾间质胶原纤维增加。见图2。

2.3免疫组化检测结果

2.3.1NF-κBp65的表达空白组及假手术组可见肾小球及肾间质少量阳性表达;模型组、六味地黄汤组、依那普利组均为阳性表达,以模型组表达最强,依那普利组次之,六味地黄汤组表达最弱,阳性表达主要在皮质区肾小管上皮细胞,胞浆和胞核均见,以胞核表达较强。肾小球阳性表达较弱。见图3。

2.3.2MCP-1的表达空白组、假手术组可见肾小球及肾间质少量阳性表达;模型组、六味地黄汤组及依那普利组呈阳性表达,活化信号主要见于皮质区肾小管上皮细胞,以胞浆表达较强。见图4。

2.3.3Col-Ⅲ的表达空白组、假手术组Ⅲ型胶原仅于肾间质及肾小管上皮细胞轻度表达。模型组肾小管间质可见大量阳性表达,与假手术比较表达显著增强。六味地黄汤组及依那普利组较模型组表达较弱。见图5。

经IPP(Image-pro Plus)图像半定量分析,计算切片NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ平均光密度值,进行统计学分析,模型组、六味地黄汤组、依那普利组分别与空白组和假手术组比较,差异均有统计学意义(P<0.05),提示造模成功;与模型组比较,六味地黄汤组及依那普利组NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ平均光密度值较模型组明显减低,差异有统计学意义(P<0.05或P<0.01),提示六味地黄汤及依那普利均能降低NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ的表达;依那普利组与六味地黄汤组之间比较,差异无统计学意义(P>0.05),见表1。

表1 各组大鼠残肾组织NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ平均光密度的定量分析(±s)

表1 各组大鼠残肾组织NF-κB、MCP-1、Col-Ⅲ平均光密度的定量分析(±s)

注:与空白组相比,△P<0.05;与假手术组相比,▲P<0.05;与模型组相比,★P<0.05,★★P<0.01。

组别空白组假手术组模型组依那普利组六味地黄汤组F值P值n 12 12 8 10 10 NF-κB 0.2103±0.0140 0.2417±0.0307 0.3058±0.0099△▲0.2652±0.0089△▲★0.2643±0.0467△▲★5.321<0.05 MCP-1 0.3003±0.0084 0.3044±0.0067 0.4148±0.0247△▲0.3644±0.0257△▲★★0.3456±0.0201△▲★★4.463<0.05 Col-Ⅲ0.3429±0.0017 0.3437±0.0025 0.4001±0.0013△▲0.3774±0.0007△▲★★0.3762±0.0007△▲★★9.652<0.05

图1 各组肾脏病理学光镜图(HE染色,×400)

图2 各组肾脏病理学光镜图(Masson染色,×400)

图3 各组免疫组化NF-κBp65表达光镜图(×200)

图4 各组免疫组化MCP-1表达光镜图(×200)

图5 各组免疫组化Col-Ⅲ表达光镜图(×200)

肾脏疾病进展至慢性肾衰竭的发病机制,至今尚无定论,其共同的通路包括肾脏萎缩、纤维化[3]。肾脏纤维化包括肾小球硬化和间质纤维化。RIF是指各种致病因子如炎症、损伤等作用下,间质细胞及细胞间质增多,基质蛋白合成增加,基质降解受抑制造成ECM大量堆积。目前认为RIF的主要发生机制为:(1)小管上皮细胞向间充质细胞的转分化作用;(2)主要效应细胞的激活;(3)局部缺血、缺氧[4]。炎症损伤是间质纤维化发生发展的重要因素。

3 讨论

MCP-1是特异性单核巨噬细胞趋化因子,主要由单核细胞产生,亦可由肾小管上皮细胞产生,它本身具有独特的信号通路,即借助NF-κB。可以不依赖酪氨酸激酶或者蛋白激酶的途径,通过其同源受体-CCR2调节RIF的发生,在进行性器官纤维化中起重要作用。单核/巨噬细胞浸润肾间质,肾小管上皮细胞即被活化,MCP-1分泌增多,趋化炎症细胞,参与早期炎症反应。现有的研究表明,MCP-1在多种肾脏疾病中参与了小球和间质的巨噬细胞积聚,而阻断MCP-1可以减少巨噬细胞积聚并伴肾脏损伤的减轻[5]。

NF-κB作为转录因子家族的重要成员之一,参与了多种炎症因子和促纤维化因子的合成,在免疫炎症反应、抗凋亡及肿瘤发生中起着重要的作用[6]。并且可以认为是炎性反应的触发器,活化后会“瀑布式”地诱导机体产生一系列的炎症因子(包括IL-2、IL-8及TNF等)及组织因子、粘附分子等基因的转录,包括MCP-1,发挥着中心环节作用于炎症反应中。其异常激活可能是肾小球肾炎发生的始动机制之一[7]。一些被NF-κB激活的因子又会反过来进一步诱导NF-κB的激活,生物体内产生级联放大的炎症反应。导致ECM效应细胞被激活,产生大量ECM。Ⅲ型胶原是ECM的重要成分,其合成和降解的失衡是引起间质纤维化的直接原因之一。正常情况下Ⅲ型胶原在肾小管上皮细胞及肾间质轻度表达。肾间质积聚的基质蛋白主要为I型胶原、Ⅲ型胶原和纤维连接蛋白[8]。在高滤过、高灌注的状态下或血管内皮细胞发生损失时,促使肾脏产生多种细胞因子,促进肾间质成纤维细胞合成Ⅲ型胶原增加,导致间质纤维化。ECM持续性沉积通过形成纤维瘢痕,破坏正常肾组织,导致肾实质塌陷、肾功能丧失[9]。

中医理论认为肾间质纤维化的病机主要是虚、瘀、痰湿和浊毒。根据中医理论着手对补益药,活血药,化湿药,解毒药亦做过大量实验,并验证诸如黄芪、冬虫夏草、红花、丹参、大黄等单味药,黄芪当归合剂、肾衰保肾汤、归脾汤、肾康注射液等复方制剂均有一定治疗肾间质纤维化的作用[10]。本篇主要从虚着手,选用被后世誉为“补阴方药之祖”的六味地黄汤。其由熟地黄、山茱萸、怀山药、牡丹皮、泽泻、茯苓六味药组成,主治肾阴虚证。既往研究证实:六味地黄丸(汤)是临床上治疗肾阴虚证型慢性肾小球肾炎的有效方剂[11]。

本实验的阳性对照药物依那普利是血管紧张素转换酶抑制剂类药物,可降压、减少尿蛋白、减少肾小球细胞外基质的蓄积,减轻肾间质纤维化和肾小球硬化,延缓肾损害进展。本实验发现六味地黄汤组、依那普利组均可减轻5/6肾切除大鼠残肾组织的病理改变,减少肾间质中胶原纤维面积,抑制NF-κB、MCP-1及Col-Ⅲ的表达。

综上所述,肾间质NF-κB、MCP-1的高水平可引起ECM效应细胞被激活,Ⅲ型胶原合成和降解的失衡,Ⅲ型胶原增加,导致间质纤维化。六味地黄汤可能通过下调NF-κB、MCP-1及Col-Ⅲ的表达,早期干预炎症损伤,减少细胞外基质的积聚,抑制肾间质纤维化进展。因而,六味地黄汤可作为慢性肾衰竭的早期辅助用药。

[1]Boor P,Ostendorf T,Floege J.Renal fibrosis:novel insights into mechanisms and therapeutic targets[J].Nat Rev Nephrol,2010,6(11):643-656.

[2]SM Shea,J Raskova and A.B.Morrison.A stereologic study of glomerular hypertrophy in the subtotally nephrectmized rat[J].Am J pathol,1978,90:201.

[3]Kim JH,Ha S,Hwang C,et al.Gene expression profiling of anti-GBM glomerulo nephritis mode:the role of NF-κB in immune complex kidney disease[J].Kidney Int,2004(66):826-837.

[4]曾海飞,何泽云,徐琴,等.六味地黄汤对5/6肾切除大鼠MMP-2、TIMP-2表达的影响[J].湖南中医药大学学报,2013,33(7):13-17.

[5]彭亚军,张继波,何泽云,等.六味地黄汤对单侧输尿管结扎大鼠肾间质MCP-1及TGF-B1表达的影响[J].中国中西医结合肾病杂志,2009,10(7):587-590.

[6]Suzuki K,Wang R,Kubota H,et al.Kinetics of biglycan,decorin and thrombospond in linmercuric chlorides-induced renal tubulointer-stitial Fibrosis[J].Exp Mol Patho1,2007,9(1):68-73.

[7]王颖航,潘志,南红梅,等.肾纤维化的分子病理机制探讨[J].中国中西医结合肾病杂志,2006,7(1):34-37.

[8]李国霞,黄文政,朱小棣.肾疏宁对肾小管间质损害大鼠FN、ColⅢ、PAI-1 mRNA的作用[J].中国中西医结合肾病杂志,2007,8(7):388-390.

[9]Chen WC,Lin HH,Tang MJ.Regulation of proximal tubular cell differentiation and proliferation in primary culture by matrix stiffness and ECM components[J].Am J Physiol Renal Physiol,2014,307(6):F695.

[10]田锋,张彤,李淑菊.中药抗肾间质纤维化的研究进展[J]黑龙江中医药,2015,44(2):64-65.

[11]何泽云,徐元美.六味地黄丸治疗肾阴虚型慢性肾小球肾炎的临床研究[J].湖南中医学院学报,2004,24(1):35-37.

(本文编辑 杨瑛)

Effects of Liuwei Dihuang Decoction on NF-κB,MCP-1 and Col-III Expression in 5/6 Nephrectom ied Rats

LI Yanyan1,HE Zeyun2*,WU Fan1,ZHOU Yanli3
(1.The Third Hospital of Zhengzhou,Zhengzhou,Henan 450000,China;2.The First Affiliated Hospital of Hunan University of Chinese Medicine,Changsha,Hunan 410007,China;3.Guangzhou Hospital of TCM,Guangzhou,Guangdong 510130,China)

R285.5

A

doi:10.3969/j.issn.1674-070X.2016.05.005

2015-11-07

湖南省科技厅项目资助(2013SK3099)。

李岩岩,女,硕士,医师,研究方向:慢性肾脏病的防治。

*何泽云,男,博士,教授,E-mail:hzy2005@zju.edu.cn。

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