HPLC法检测脱氢环氧甲基醌霉素中间体N-(2-乙酰氧基苯甲酰基)-2,5-二甲氧基苯胺及其杂质Δ

2016-03-11 01:42:42胡克余汪岩峰余卫麟邓双炳深圳万和制药有限公司广东深圳518057
中国药房 2016年36期
关键词:冰乙酸耐用性中间体

胡克余,汪岩峰,余卫麟,马 俊,邓双炳(深圳万和制药有限公司,广东深圳 518057)

HPLC法检测脱氢环氧甲基醌霉素中间体N-(2-乙酰氧基苯甲酰基)-2,5-二甲氧基苯胺及其杂质Δ

胡克余*,汪岩峰,余卫麟,马 俊,邓双炳#(深圳万和制药有限公司,广东深圳 518057)

目的:建立检测脱氢环氧甲基醌霉素(DHMEQ)中间体N-(2-乙酰氧基苯甲酰基)-2,5-二甲氧基苯胺(MA)及其杂质的方法。方法:采用高效液相色谱法。色谱柱为Utimate AQ-C18,流动相为乙腈-0.05%磷酸(梯度洗脱),流速为1 ml/min,检测波长为230 nm,柱温为30Ⅱ,进样量为10 μl。结果:MA与各杂质间以及各杂质之间的分离度均>1.5,理论板数以MA峰计≥5 000,保留时间约为41 min;MA、乙酰水杨酸甲酯、SM2、SM1、MA-6、水杨酸、MA-2的定量限(相当于MA样品的百分比)分别为0.04%、0.03%、0.01%、0.05%、0.05%、0.05%、0.05%,检测限(相当于MA样品的百分比)分别为0.01%、0.01%、0.004%、0.02%、0.02%、0.02%、0.02%;溶液稳定性及方法耐用性良好。结论:该方法专属性、检测限、耐用性均符合要求,可用于检测DHMEQ中间体MA及其杂质。

脱氢环氧甲基醌霉素;中间体;N-(2-乙酰氧基苯甲酰基)-2,5-二甲氧基苯胺;杂质;高效液相色谱法

脱氢环氧甲基醌霉素(Dehydroxy methyl epoxy quinomicin,DHMEQ)是由抗生素经结构改造合成的一种新型小分子核因子-κB(NF-κB)抑制剂,具有抗癌和抗炎活性[1]。DHMEQ可特异性抑制NF-κB移位入核,以1∶1的化学计量比共价修饰p65和其他Rel同源蛋白中的特定半胱氨酸残基[2]。DHMEQ作为NF-κB抑制剂,通过在各种疾病的动物模型中进行广泛测试,证明其对治疗实体瘤、血液恶性肿瘤、关节炎、肠缺血和动脉粥样硬化在内的疾病具有广谱效力[3],因此DHMEQ有望在临床上用于癌症和炎症疾病的治疗。

N-(2-乙酰氧基苯甲酰基)-2,5-二甲氧基苯胺(简称MA)是DHMEQ合成过程中一个重要的中间体,它的纯度对终产品DHMEQ有显著影响,故很有必要对其纯度进行控制。结合合成工艺路线进行分析,MA中潜在的有机杂质分别是水杨酸、阿司匹林(简称SM1)、2,5-二甲氧基苯胺(简称SM2)、乙酰水杨酰氯[高效液相色谱法(HPLC)检测时溶剂含有甲醇,乙酰水杨酰氯以乙酰水杨酸甲酯形式存在]以及MA-2、MA-6两个工艺杂质。因此,本课题组采用HPLC法检测DHMEQ中间体MA及其杂质,旨在为该中间体的纯度控制提供参考。

1 材料

1.1 仪器

e2695型HPLC仪,包括2998 PDA二极管阵列检测器、Empower 3色谱工作站(美国Waters公司);MS105型十万之一电子分析天平(瑞士Mettler-Toledo公司)。

1.2 药品与试剂

MA样品(自制,批号:20160523、20160607、20160706);MA对照品(自制,批号:20160512105,氢谱、碳谱核定结构,HPLC测定纯度为99.6%);乙酰水杨酸甲酯对照品(东京化成工业株式会社,批号:AG02,纯度:98.9%);水杨酸对照品(批号:100106-201104,纯度:99.9%)、SM1对照品(批号:100113-201405,纯度:99.8%)均购自中国食品药品检定研究院;SM2对照品[阿法埃莎(中国)化学有限公司,批号:10183987,纯度:98.6%];MA-2对照品(自制,批号:20160104,氢谱、碳谱核定结构,HPLC法测定纯度为100%);MA-6对照品(自制,批号:20160123,氢谱、碳谱核定结构,HPLC法测定纯度为99.0%);乙腈为色谱纯(德国Fisher公司),磷酸为色谱纯(美国Tedia公司),其余试剂为分析纯,水为去离子水。

2 方法与结果

2.1 色谱条件

色谱柱:Utimate AQ-C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相:乙腈(A)-0.05%磷酸(B),梯度洗脱(0 min,20.0%A;5 min,20.0%A;10 min,25.0%A;15 min,25.0%A;30 min,45.0%A;40 min,45.0%A;45 min,20.0%A;50 min,20.0%A);流速:1 ml/min;检测波长:230 nm;柱温:30Ⅱ;进样量:10 μl。

2.2 溶液的制备

2.2.1 空白溶剂 取冰乙酸10 ml,置于1 000 ml量瓶中,用甲醇定容,混匀,即得空白溶剂(即1%冰乙酸甲醇溶液)。

2.2.2 混合对照品溶液 取乙酰水杨酸甲酯、水杨酸、SM1、SM2、MA-2、MA-6对照品各约10 mg,精密称定,分别置于20 ml量瓶中,用1%冰乙酸甲醇溶液定容,摇匀,制成各单一对照品贮备液;另取MA对照品10 mg,精密称定,置于20 ml量瓶中,加入各单一对照品贮备液0.2 ml,用1%冰乙酸甲醇溶液定容,摇匀,制成含MA 0.5 mg/ml和乙酰水杨酸甲酯、水杨酸、SM1、SM2、MA-2、MA-6均约为1%的混合溶对照品溶液。

2.2.3 供试品溶液 取MA样品约25 mg,精密称定,置于50 ml量瓶中,加1%冰乙酸甲醇溶液适量,振摇使溶解,用1%冰乙酸甲醇溶液定容,摇匀,即得。

2.3 系统适用性与专属性试验

取“2.2”项下混合对照品溶液、供试品溶液和空白溶剂各适量,分别按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录色谱,详见图1。由图1可知,在该色谱条件下,各成分均能达到基线分离,分离度均>1.5;理论板数以MA峰计≥5 000,保留时间约为41 min。

2.4 定量限与检测限考察

取“2.2.2”项下混合对照品溶液适量,等倍逐步稀释,分别按“2.1”项下色谱条件连续进样测定,记录峰面积。当信噪比为10∶1时,得定量限(LOQ);当信噪比为3∶1时,得检测限(LOD),结果见表1。由表1可知,当MA质量浓度为0.5 mg/ml时,MA及各杂质的检测灵敏度均符合ICH Q3A(新原料药中的杂质)指导原则关于报告限度的要求。

2.5 稳定性与耐用性考察

2.5.1 稳定性试验 取“2.2.2”项下混合对照品溶液适量,分别于室温下放置0、2、4、6、10 h时按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积。结果,MA及各杂质峰面积的RSD均<10%(n=5),表明混合对照品溶液室温下放置10 h内稳定性良好。2.5.2 耐用性考察 取“2.2.2”项下混合对照品溶液适量,分别在不同波长、流速、柱温、流动相比例及不同批号色谱柱条件下,按“2.1”项下色谱条件进样测定。结果,在不同波长[(230±1)nm]、不同流速[(1.0±0.1)ml/min]、不同柱温[(30± 5)Ⅱ]、不同流动相比例(±2%)、不同批号色谱柱条件下,MA及各杂质含量的RSD均<10%,表明方法耐用性良好。

2.6 样品纯度测定

取3批样品各适量,分别按“2.2.3”项下方法制备供试品溶液,再按“2.1”项下色谱条件进样测定,记录峰面积并计算MA的纯度。结果,3批(批号:20160523、20160607、20160706)样品的纯度分别为96.5%、97.3%、95.0%(n=3)。

图1 高效液相色谱图A.混合对照品溶液;B.供试品溶液;C.空白溶剂;1.SM2;2.SM1;3. MA-6;4.水杨酸;5.乙酰水杨酸甲酯;6.MA-2;7.MAFig 1 HPLC chromatogramsA.mixed reference substance;B.test sample solution;C.blank control;1. SM2;2.SM1;3.MA-6;4.salicylic acid;5.methyl acetylsalicylate;6.MA-2;7.MA

表1 定量限与检测限测定结果Tab 1 Determination results of quantitation limit and detection limit

3 讨论

MA是DHMEQ合成过程中一个重要的中间体,其纯度对后续中间体和终产品的质量有显著影响,所以有必要进行其纯度控制。作为中间体,MA纯度测定结果是以峰面积归一化方法计算,故不受仪器精密度、准确度影响,因而未进行精密度、准确度等验证,只需按照2015年版《中国药典》[4]限度方法学要求验证专属性、检测限、耐用性足以保证本方法的可靠性。此外,MA生产后很快就投入下一步的反应中,无需长期放置,故其纯度测定方法的专属性验证重点考察分离度、溶剂干扰试验,不进行降解试验。

综上所述,本方法专属性、检测限、耐用性均符合要求,可用于DHMEQ中间体MA及其杂质的检测。

[1] Matsumoto N,Ariga A,To-e S,et al.Synthesis of NF-κB activation inhibitors derived from epoxyquinomicin C [J].Bioorg.Med.Chem.Lett,2000,10(9):865.

[2] Yamamoto M,Horie R,Takeiri M,et al.Inactivation of NF-κB Components by Covalent Binding of(-)-Dehydroxymethylepoxyquinomicin to Specific Cysteine Residues[J].J Med Chem,2008,51(18):5 780.

[3]Horie R,Watanabe T,Umezawa K.Blocking NF-kappa-B as a potential strategy to treat adult T-cell leukemia/lymphoma[J].Drug News Perspect,2006,19(4):201.

[4] 孙婷,杨浩天,刘红莉,等.HPLC法测定洛伐他汀分散片中的有关物质[J].中国药房,2016,27(12):1 683.

Determination of DHMEQ Intermediates MAand Its Impurity by HPLC Method

HU Keyu,WANG Yanfeng,YU Weilin,MA Jun,DENG Shuangbing(Shenzhen WanHe Pharmaceutical Co.Ltd,Guangdong Shenzhen 518057,China)

OBJECTIVE:To establish a HPLC method to determine DHMEQ intermediate N-(2-acetoxybenzoyl)-2,5-dimethoxyaniline(MA).METHODS:The column was Utimate AQ-C18with mobile phase of acetonitrile-0.05%phosphoric acid(gradient elution)at a flow rate of 1 ml/min,detection wavelength was 230 nm,column temperature was 30Ⅱ,and the injection volume was 10 μl.RESULTS:The separation degrees of MA and the impurities were above 1.5,the number of theoretical plates(calculated with MA peaks)was no less than 5 000,retention time was about 41 min;the detection limits(the percentages of MA samples)of MA,methyl acetylsalicylate,SM2,SM1,MA-6,salicylic acid and MA-2 were 0.04%,0.03%,0.01%,0.05%,0.05%,0.05%and 0.05%;detection limits(the percentage of MA samples)were 0.01%,0.01%,0.004%,0.02%,0.02%,0.02%and 0.02%,respectively;the stability of solution and durability of method were good.CONCLUSIONS:The specificity,detection limit,and durability of the method are all in line with the requirements,which can be used for DHMEQ intermediate MA and its impurity.

DHMEQ;Intermediate;N-(2-acetoxybenzoyl)-2,5-dimethoxyaniline;Impurity;HPLC

R927

A

1001-0408(2016)36-5125-03

2016-09-21

2016-11-07)

(编辑:刘 柳)

国家科技重大专项——重大新药创制项目(No.2012ZX09103101-004);广东省战略性新兴产业核心技术攻关项目(No.2012A080800010);深圳市技术研究开发计划(三大产业)项目(No.JSA201105090126A)

*工程师。研究方向:药品质量、项目管理及注册申报。E-mail:hukeyu@wanhe-phar.com

#通信作者:工程师,硕士。研究方向:药品质量、项目管理及注册申报。E-mail:dengshuangbing@wanhe-phar.com

DOI10.6039/j.issn.1001-0408.2016.36.26

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