冯俊杰 戴阳丽 王秀敏
·综述·
MIN6细胞系的细胞学特性及其应用
冯俊杰 戴阳丽 王秀敏
MIN6细胞系是从表达类人猿病毒40大T抗原(受胰岛毒启动子控制)的转基因非肥胖糖尿病小鼠胰岛瘤中建立的,其内分泌功能与胰腺组织非常接近,是研究胰岛细胞功能的理想模型。MIN6细胞系可用于胰腺分泌的研究,β细胞的适宜刺激信号的探索;1型糖尿病发病机制的研究;氧化应激、自噬、游离脂肪酸对2型糖尿病发病的影响;在胰腺移植后发生排斥的机制研究。
MIN6;糖尿病;细胞学特性;自噬
由于人原代胰岛细胞获取困难,且不能连续传代,所以多选用体外培养胰岛β细胞的细胞株作为替代,常用的有大鼠胰岛β细胞瘤细胞株(RINm5F)及仓鼠胰岛β细胞(HIT-T15)。其在胰岛素基因的研究中广泛应用,缺点是胰岛素分泌远低于正常胰岛细胞,且葡萄糖刺激的胰岛素分泌(GSIS)也与β细胞有所不同,故不能完全替代正常β细胞。小鼠胰岛素瘤细胞(MIN6细胞系)是从小鼠胰岛β细胞瘤或胰岛细胞瘤中分离得到的永久细胞系,它保留了胰岛细胞的GSIS,对脑型葡萄糖转运蛋白(GLUT)不敏感,而特异地对肝型GLUT敏感,可以反映胰岛β细胞的功能变化,是研究胰岛细胞功能的理想模型。以下就MIN6细胞系的细胞学特性及其在研究中的作用作一综述。
MIN6细胞系是从胰岛素启动子控制下的表达类人猿病毒40大T抗原的转基因非肥胖糖尿病小鼠胰岛瘤中建立的[1]。将这些小鼠喂养至13周处死,切除肿瘤后获得肿瘤细胞,经过单独洗涤,加入DMEM培养基后在培养箱内传代培养。2周后,得到紧密排列、密集生长的细胞克隆,用胰蛋白酶常规消化后进行细胞传代。最终得到两个细胞系:从IT6模型小鼠的肿瘤细胞中得到单一细胞克隆即是MIN6细胞系,而从IT7模型中获得的是MIN7细胞系。MIN6细胞系经孵育12 h后,取上清液,离心去除细胞碎片,储存于-20℃。MIN6细胞系的GSIS与胰岛细胞基本相似,是一种被广泛使用的β细胞系。Nakashima等[2]发现,MIN6细胞还可分泌胰高血糖素、生长抑素和ghrelin,提示其是体外代替胰岛组织培养的较好的细胞系。
MIN6和MIN7细胞系都是由类人猿病毒40大T抗原启动子所激发而得到的,两者都呈均匀形态、集落生长,有一定的神经内分泌功能,包含较高水平的胰岛素mRNA和类人猿病毒40T抗原mRNA。免疫组化分析也提示它们是由同一种胰岛β细胞分化演变而来。但两者的GSIS不同,MIN6细胞系分泌胰岛素的量随血糖升高而显著升高,这与体外培养的正常胰岛细胞基本相似。它们都能产生较高水平的肝型GLUT mRNA,MIN6细胞系只能产生少量的脑型GLUT mRNA。故MIN6细胞系在功能上更接近于胰岛β细胞。
MIN6细胞系保留了β细胞特性,可以在血糖和其他促分泌因素刺激下分泌胰岛素。但是MIN6细胞在多次传代后会发生基因改变,从而失去分泌胰岛素的能力,这些基因的改变包括下调某些基因如磷脂酶D1和胆囊收缩素。多次传代的细胞对某些蛋白也会出现低表达,包括参与内质网应激和活性氧簇生成的抗氧化酶。GLUT是葡萄糖通过细胞膜的重要受体,其中GLUT9和GLUT2也参与了GSIS[3]。既往研究发现,传代次数不多的MIN6细胞系GLUT2的表达几乎没有差异,与多次传代的MIN6细胞系相比较,在基因和蛋白水平的表达均有改变,但是不影响代谢结果[4]。近年来Yamato等[5]发现,MIN6亚群C4更好的保留了GSIS能力,更适用于体外胰岛β细胞系研究。
MIN6细胞系不仅可以分泌胰高血糖素样肽-1,其信号可以通过一种自分泌方式被放大,从而维持其胰岛素分泌的功能[6]。这是MIN6细胞系生存和分泌胰岛素的基础。
3.1 测定胰腺分泌的激素 胰腺组织有5种内分泌细胞:分泌胰高血糖素的α细胞,分泌胰岛素的β细胞,分泌生长抑素的δ细胞,分泌胰多肽的γ细胞,分泌ghrelin的ε细胞。它们共同维持血糖的稳定。MIN6细胞系可分泌以上5种激素[2]。Nakashima等[2]发现MIN6细胞系可以表达Pdx1,NeuroD,Nkx6.1,Nkx2.2,Pax6,Ngn3,Pax4,Bran4和CckBr等基因,而这些基因同样也在胰岛中表达。
3.2 在氨基酸研究中的应用 某些氨基酸,如L-谷氨酸和L-精氨酸,是胰岛β细胞的适宜刺激信号。研究发现,在接受L-谷氨酸和L-精氨酸刺激后,MIN6细胞内三磷酸肌醇和Ca2+浓度均显著上升,这有助于了解Tas1R家族的表达情况[7]。所以,可以利用MIN6细胞系表达氨基酸受体作相关研究。
AMP活化蛋白激酶(AMPK)是反映细胞状态的传感器,其活化影响了胰岛β细胞的GSIS。哺乳动物的AMPK是丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,其功能是灭活葡萄糖。MIN6细胞系中,蛋白激酶A使AMPKα1 Ser173、Ser485和Ser497位点磷酸化,通过上游激酶活化而阻碍了Thr172磷酸化[8]。蛋白激酶B则使AMPKαS485位点活化,并抑制肝激酶B1(LKB1)的Thr172磷酸化,从而减少AMPK的活化。但使用INS-1β细胞系在研究过程中得到不同结果,蛋白激酶B引起AMPKαSer485位点发生磷酸化,阻止了LKB1Thr172的磷酸化,由于AMPK-LKB1间的级联反应而降低了AMPK的活性。出现这种矛盾的结果可能与使用不同的细胞系有关[9]。王威等[10]发现,MIN6细胞系对血糖的调节能力优于INS-1细胞系。
3.3 在糖尿病发病机制研究中的应用
3.3.1 1型糖尿病 1型糖尿病是一种具有严重炎性反应的慢性自身免疫性疾病,由于胰岛β细胞大量破坏引起胰岛素分泌不足,导致机体糖代谢紊乱[11]。通过对MIN6细胞系的进一步研究发现,miR-146、miR-21、miR-34a在白细胞介素-1β、肿瘤坏死因子-α等诱导的β细胞功能衰竭中有重要作用,而miR-34、miR-146a能保护MIN6细胞免受细胞因子诱发的死亡,提示微小RNA异常可能引起自身免疫反应,从而导致1型糖尿病[12]。曹朝晖等[13]的研究认为,caspase-3激活与MIN6细胞凋亡有关,炎性反应因子可能通过激活凋亡相关蛋白诱导细胞的凋亡,这其中可能涉及细胞凋亡的线粒体途径和死亡受体途径的信号转导。以MIN6细胞系为例,对1型糖尿病的发生有一定的意义。
3.3.2 2型糖尿病 代谢综合征是2型糖尿病的高危因素之一,Ding等[14]通过对MIN6细胞系的研究发现,木犀草素可以通过核因子-κB-诱导型一氧化氮合酶-一氧化氮途径调节转录因子MafA的表达,而该途径是高尿酸作用于胰岛β细胞的关键,由此降低高尿酸相关性代谢综合征的发生几率,进而降低高尿酸相关性糖尿病的风险。硫化壳寡糖可以对抗过氧化氢对MIN6细胞系的损害,其机制可能是增强了抗氧化酶的活性,并抑制胞内活性氧簇产生[15]。生理条件下,自噬主要受外源性营养物质的调节,当机体处于饥饿状态时,自噬活性增加。同时,自噬也是机体消除错误折叠的大分子、衰老及失能的细胞器的一种途径。自噬与2型糖尿病有潜在的关系,作为机体防御机制可清除失能细胞器导致的氧化应激和内质网应激[16]。胰岛素能抑制自噬,通过激活mTOR依赖性信号通路,与靶细胞表面胰岛素受体结合诱导自身磷酸化,最终使ULK1-Atg13-FIP200复合体失去活性,从而抑制自噬[17-18]。而2型糖尿病患者由于胰岛素抵抗,相关作用减弱,最终导致细胞自噬增强。杜世春等[19]发现,晚期糖基化终末产物可以抑制MIN6细胞活力,并使细胞内活性氧簇的生成增加,诱导MIN6细胞氧化应激,从而影响胰岛素分泌。
RIP140是代谢性核受体辅助因子家族中的一员,主要作为抑制因子调控肝脏、肌肉及脂肪中的糖、脂代谢。2型糖尿病患者外周血单核细胞中RIP140的表达较正常明显升高。敲除小鼠RIP140基因能改善高脂饮食条件下的胰岛素抵抗、增加胰岛素刺激时的糖摄取,同时还可以抑制年龄和饮食诱导的糖耐量异常的发生。下调RIP140表达能够通过上调能量消耗相关基因来改善细胞内氧化应激水平。薛君力等[20]通过利用H2O2建立了MIN6细胞的氧化应激损伤模型,并利用RNA干扰下调MIN6细胞中的RIP140表达,观察到以RIP140为靶点可以调控β细胞损伤。
3.3.2.1 β细胞胰岛素分泌 β细胞分泌胰岛素是一个双相的过程。第一时相发生较快,在血糖变化后10 min之内,分泌高峰在1~2 min。第二时相出现较晚,但持续时间较长,峰值在25~30 min。2型糖尿病患者最初第一时相受损,但保留了第二时相的功能。故是否存在第一时相的损害是预测1型和2型糖尿病风险的因素之一。通过对MIN6细胞的观察,多次传代的MIN6细胞形态不均匀,失去了第一时相功能,GSIS完全受损,胞内ATP明显减少,葡萄糖吸收、氧化和脂质氧化也减少,糖酵解基因和脂质处理基因包括Srebp1c表达降低,导致Sirt3和Nampt基因表达降低,乳酸含量减少,一些脂类合成基因也出现了低表达,包括重要的转录因子Srebp1c。这也使得GLUT1明显下降,GLUT2也有下降的趋势。已知ATP/ADP比值上调是β细胞释放胰岛素所必须的,其可能会通过提高吸收葡萄糖并氧化来提高ATP[4]。
3.3.2.2 游离脂肪酸(FFA)的毒性作用 FFA对β细胞有细胞毒性作用。高水平FFA可以导致内质网的钙离子耗尽,而β细胞需要钙离子的储备。故β细胞对内质网应激非常敏感,钙离子缺乏会诱导其凋亡。棕榈酸诱导的MIN6细胞凋亡与尿酸相关性代谢综合征内质网应激有关。脂肪酸可以激活G蛋白耦联受体40(GPR40),提高胞内游离钙离子,并可以促进GSIS。持续高水平的FFA使β细胞受到破坏,并可能通过GPR40导致胞内钙离子功能紊乱。GPR40基因敲除小鼠在高脂饮食条件下对肝脂肪变性、高甘油三酯血症和其他一些糖尿病相关性疾病有抵抗,GPR40过度表达可以导致小鼠出现糖尿病表型。实验证明饱和脂肪酸如棕榈酸可导致β细胞凋亡,而GPR40拮抗剂DC260126在48 h内可以呈剂量依赖方式保护MIN6细胞避免被诱导凋亡。提示GPR40参与了棕榈酸诱导的MIN6细胞凋亡[21]。人类白血病相关基因16可以调节MIN6细胞系的胰岛素分泌和GSIS,其过表达还可以加强MIN6细胞系对脂毒性的抗凋亡作用,而ghrelin则可以通过磷脂酰肌醇3激酶/蛋白激酶B途径对MIN6细胞系起到相同的作用[22-23]。
3.4 胰腺移植后排斥 雷帕霉素(西罗莫司)是一种胰腺移植术后常用的免疫抑制剂,但是长期使用这种药物的患者胰岛细胞功能和活力会受损。对胰腺移植失败的患者进行尸检,没有发现移植的胰腺发生了自身免疫或同种免疫性损害,提示移植失败是由非免疫性因素所导致的,如药物毒性。对MIN6细胞的实验结果表明,雷帕霉素的药理作用是通过抑制哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)完成的,mTOR存在两个配体,mTORC1和mTORC2。mTORC1对雷帕霉素高度敏感,而mTORC2则不敏感。研究发现,雷帕霉素对MIN6细胞系的功能及寿命均有有害影响。链唑霉素可以诱导β细胞出现细胞凋亡,蛋白激酶B通过介导胰岛素的抗凋亡因子如胰岛素样生长因子-1和胰高血糖素样肽-1,保护了β细胞。蛋白激酶Bα基因敲除的小鼠出现β细胞数量下降,而蛋白激酶Bβ基因敲除小鼠出现β细胞质量下降,两者都可导致凋亡增加[24]。提示雷帕霉素引起的损害是由mTOR2抑制介导的。
综上所述,MIN6细胞系是从小鼠胰腺肿瘤细胞得到的一个细胞系,其来源于胰岛β细胞,与胰腺组织功能上较为相近,是研究胰腺功能的较好的一种细胞系,在糖尿病研究等领域有着较为广泛的应用。
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CytologicalcharacteristicsandapplicationofMIN6cellline
FengJunjie,DaiYangli,WangXiumin.
DepartmentofEndocrinology,TheChildren′sHospitalofZhejiangUniversitySchoolofMedicine,Hangzhou310003,CHina
Correspondingauthor:WangXiumin,Email:wangxiumin1019@126.com
MIN6 cell line is established from insulinomas obtained by targeted expression of the simian virus 40 T antigen in transgenic non-obese diabetic mice. The endocrine function of MIN6 cells is similar to pancreatic tissue, which makes it an ideal model in researching the function of islet cells . The MIN6 cell line is used in pancreatic secretion in recent years, and also in finding stimulus signal to β cells. MIN6 cell line is used to study the pathogenesis of type 1 diabetes as well as the effects of oxidative stress, autophagy and free fatty acids on the pathogenesis of type 2 diabetes. At the same time, it can be used to discuss the mechanism in reject reaction after pancreas transplantation.
MIN6;Diabetes mellitus;Cytological characteristics; Autophagy
国家自然科学基金资助项目(30971125,81370930)
10.3760/cma.j.issn.1673-4157.2016.02.014
310003 杭州,浙江大学附属儿童医院内分泌科(冯俊杰,戴阳丽,王秀敏);314001 浙江省嘉兴市第一医院儿科(冯俊杰);200127 上海儿童医学中心(王秀敏)
王秀敏,Email:wangxiumin1019@126.com
FundProgramThe National Natural Science Foundation of China(30971125, 81370930)
2015-05-27)