隐孔菌的发酵培养及活性成分研究进展

杜大庆

（杭州拜善晟生物科技有限公司，浙江杭州310024）

隐孔菌的发酵培养及活性成分研究进展

杜大庆

（杭州拜善晟生物科技有限公司，浙江杭州310024）

综述近年隐孔菌的发酵培养和活性成分国内外研究进展，为开发利用隐孔菌资源提供参考。总结隐孔菌发酵培养及活性成分研究方面的进展。近年来我国研究人员用发酵培养法制备隐孔菌发酵菌丝体，作为隐孔菌新药源，并发现隐孔菌含有多糖、隐孔酸等多种生物活性成分。

隐孔菌；发酵培养；活性成分

隐孔菌Cryptoporus volvatus Peck Hubbard属于多孔菌科生物，又称松橄榄、树疙瘩、木鱼菌、荷色菌、香木兰等，属于真菌门、担子菌亚门（Basidiomycotina）、层菌纲（Hymenomycetes）、非褶目（Aphyllophorales）、多孔菌科（Polyporaceae）、隐孔属（Cryptoporus）［1］。隐孔菌收载于《滇南本草》《中国药用孢子植物》《新华本草纲要》《秦岭巴山天然药物志》等，味微苦，性平，有平喘、止咳、解毒［2-5］以及抗肿瘤等功效，民间用于治疗哮喘和气管炎，疗效十分显著［3］。真菌资源调查显示，其在我国广西、广东、海南、四川、云南、福建、浙江、河北和吉林等地广为分布［6-11］，朝鲜、日本、欧洲、北美洲国家和地区也有分布。其为腐生真菌，野外生长的菌丝能形成子实体，担子果扁球形或球形，子实体外观如一空囊，是一种非常有药用前景的传统中药材。隐孔菌自然资源较少，难以满足规模应用，目前已可通过液体发酵法获得隐孔菌发酵菌丝体。人工培养不能生成子实体，生长的菌丝几乎都是生殖菌丝，细胞壁薄，细胞内有丰富的原生质和菌丝分隔，有较多分枝及锁状联合［12］。

1　隐孔菌的发酵培养及活性成分

华启洪等［13］进行了隐孔菌子实体的化学成分分析，用高效液相色谱（HPLC）法测出样品含有葡萄糖、果糖、D-甘露糖、乳糖及蔗糖等。单糖组成（以质量计）：果糖0.40%，葡萄糖0.134%；用比色法测得总糖含量12.75%，还原糖含量0.56%。共有15种氨基酸存在于隐孔菌子实体，包括人体必需氨基酸6种，即苏氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、缬氨酸、苯丙氨酸和赖氨酸，总氨基酸中必需氨基酸占39.55%。这表明隐孔菌是一种富含必需氨基酸的真菌，营养价值很高。另外，隐孔菌还含有组氨酸和精氨酸等婴儿必需氨基酸。隐孔菌含有丰富的Fe，Mn，Si，Mg，Ca，P等13种无机元素，包括5种人体必需微量元素（Fe，Cu，Mn，Ni，Si）和3种常量元素（Mg，Ca，P）。

华启洪等［14］还对隐孔菌进行了固态培养，葡萄糖、果糖、蜂蜜为碳源，酵母粉、蛋白胨为氮源（最佳C/N为20∶1～25∶1）。作为构成细胞的主要成分，作为酶的组成部分并维持酶的活性，矿物质在隐孔菌生长过程中是不可缺少的元素，起着调节细胞渗透压及氢离子浓度等作用。培养基中可不必再加矿物质，因为酵母粉、蛋白胨等有机氮源本身富含嘌呤、嘧啶、维生素和矿物质，培养基pH为6.0～6.5。菌丝最佳生长pH为5.5～6.5，这与大多数真菌生长最佳pH值，最佳温度25～30℃，属适温真菌。

华启洪等［15］发明了一种制备隐孔菌菌丝体粉的方法。菌种经活化扩增，接入种子罐进行48 h菌种培养，种子液接入带发酵罐养4 d，发酵物干燥、粉碎、过筛得到菌丝体粉。郭新军等［16］发明了一种生产隐孔菌发酵物的方法，先进行隐孔菌的菌种培养，然后发酵罐培养，制得发酵物。该发酵物是发酵液和菌丝体的混合物，干重5～50 g/L。经成分分析，含多糖3%～10%，含总生物碱0.03%～0.25%，含醚浸出挥发性物质0.05%～0.15%。

吴锦忠等［17］进行了隐孔菌的液体培养，化学成分分析表明，隐孔菌含有多糖、氨基酸、倍半萜类化合物、麦角甾醇与芳香物质等，并和野生隐孔菌成分进行对比。氨基酸组成：扫描图形比较表明两者相似；脂类成分：经薄层色谱（TLC）图谱比较，TLC层析斑点数和Rf值两者相同，色斑也相同；次生产物：两者含相似的成分类型，都有生物碱、脂类、香豆素、甾体、挥发油检出。总氨基酸、多糖、脂类含量从高到低依次为：马铃薯培养基发酵的菌丝、玉米粉培养的菌丝、野生隐孔菌。成分对比研究结果表明，发酵隐孔菌与野生菌含类似的化学成分，发酵菌丝作为野生隐孔菌替代的新药源，有很高的研究价值。

2　隐孔菌的其他活性成分研究

2.1挥发油

华启洪等［18］提取并分析了隐孔菌子实体中的挥发油成分，根据气相色谱-质谱（GC-MS）图谱，鉴定了19个化合物，其中4个成分相对含量较高，棕榈酸51.536%，四羟基硬脂酸甲酯31.132%，十八烯酸2.318%，十八烷酸3.018%。

吴锦忠等［19］采用气相色谱-质谱-数据系统（GC-MS-DS）法测定隐孔菌菌丝的挥发油成分，结果表明，与野生隐孔菌相比总共有13种成分相同，占检出总成分的65%，检出的20种成分包括4种倍半萜类化合物、6种脂肪族化合物、10种芳香族化合物。挥发油含量、芳香族和脂肪族含量均高于野生隐孔菌，萜类含量基本相近。比较二者GC色谱图发现，芳香族化合物保留时间有差别，脂肪族化合物和萜类化合物保留时间相似。

2.2隐孔酸

国内外学者们对隐孔菌含有的隐孔酸成分进行了比较深入的研究和报道。1998年，吴锦忠等［20］报道，隐孔菌中的隐孔酸含4种倍半萜类、7种双环单萜。用水蒸气蒸馏法提取了野生隐孔菌挥发油成分，GC-MSDS法分离鉴定。检出成分29种：萜类化合物11种，倍半萜4种，双环单萜7种，另外，芳香族化合物6种、脂肪族化合物12种，以双环单萜为主，这些萜类化合物均为首次从隐孔菌中分离出来的。

Wu等［21］从隐孔菌子实体的甲醇提取物中分离并鉴定了4种已知的隐孔菌酸：隐孔菌酸B、隐孔菌酸B甲酯、隐孔菌酸G、1′，1″-二羧基隐孔菌酸D。随后的研究［22］中，又分离鉴定了8种新结构隐孔酸，细胞实验均显示了其有抗肿瘤活性。

日本研究者从隐孔菌（Cryptoporus volvatus）子实体中分离出7种有强烈苦味的倍半萜类化合物，被命名为隐孔菌酸A～G［23-24］，该类化合物通过醚键由drimane型倍半萜与异柠檬酸衍生物连接。药理试验表明，隐孔酸C，E，F，G对小鼠腹腔巨噬细胞释放超氧自由基有较强的抑制作用，其中隐孔菌酸D，E具有抗肿瘤活性［24-27］。

2002年，美国研究者Gabriela等［28］报道了隐孔酸H和隐孔酸I的提取，并采用薄层色谱（TLC）、核磁共振氢谱（1HNMR）鉴定，采用乙酸乙酯萃取隐孔菌培养物的滤液，得到了提取物，抗生素试验表明其可作为抗菌药物。

2.3多糖

日本学者从人工培养的菌丝体中提取分离出多糖，动物试验表明有抑制肿瘤细胞生长的活性［29］。提示从隐孔菌中提取的多糖，将来有可能成为新的抗癌药。王政等［30］通过比色法测定隐孔菌发酵培养菌丝及野生隐孔菌的糖类成分，马铃薯或玉米粉培养基培养的菌丝多糖含量分别为21.58%，21.48%，均高于野生隐孔菌的17.45%（P＜0.05）。柯传奎等［31］采用水提取法，通过沉淀、离心、除蛋白质、膜分离等步骤得到相对分子质量范围2 000～200 000的隐孔菌多糖。经检验，该隐孔菌多糖单糖组成4种：甘露糖、半乳糖、木糖、岩藻糖，主链由1-6连接的甘露糖，1-6连接的半乳糖，1-3连接的木糖、1-4连接的木糖和1-3连接的岩藻糖构成。

2.4麦角甾醇

多孔菌科多含有麦角甾醇、麦角甾醇过氧化物（ergosterol peroxide，EP）。1981年，韩国早有研究报道，隐孔菌用氯仿-甲醇提取可以得到麦角甾醇类化合物。马伟光等人从隐孔菌子实体中分离得到了4种麦角甾醇类物质（其中3种为过氧化物），这些物质的氢谱和碳谱信号通过二维谱技术与文献报道的数据进行比较而得到了指定［32］。

EP广泛存在于包括隐孔菌、蘑菇、灵芝在内的大型真菌中［33-35］，具有抗肿瘤、抗炎等多种生物活性［36］。Gao等［37］发现隐孔菌子实体提取物含有对于PRRSV体内和体外感染均有较强抑制作用的活性成份。进而从隐孔菌中分离出了多种EP，采用EP预处理Marc-145细胞能显著抑制PRRSV病毒在细胞中的复制，EP并不是直接抗病毒，主要是通过对细胞产生作用而抑制病毒感染［38］。

2.5其他活性成分

Ma等［39］联合色谱纯化和免疫荧光技术从隐孔菌中分离出1个新化合物CM-H-L-5，这种新化合物是一种具酰胺基团与羧酸基团的小分子多元醇，具有呈剂量依赖性地抑制病毒体外复制的活性。研究表明，隐孔菌还含有其他活性成分，如多种维生素、生物碱、苷类和核苷类等。

3　隐孔菌的抗炎活性

3.1隐孔菌发酵物对大鼠变应性鼻炎的影响

变应性鼻炎治疗药物的研究试验，通常以喷嚏和抓鼻次数的减少来表明其疗效。Xie等［40］以组胺诱导豚鼠产生鼻炎症状，用卵白蛋白致敏豚鼠和大鼠，以抗原滴鼻攻击诱导大鼠和豚鼠产生鼻炎症状和体征，评价隐孔菌发酵物（CFS）的抗变态反应活性。结果CFS能显著呈剂量依赖地减少喷嚏和抓鼻次数，表明CFS能有效得缓解组胺诱导的豚鼠鼻炎症状、抗原攻击引起的豚鼠和大鼠变应性鼻炎症状。另外，CFS高剂量组动物鼻黏膜上皮基本正常，仅存在少量嗜酸性粒细胞（EOS）浸润；而模型组动物鼻黏膜上皮被破坏，上皮部分脱落坏死，大量EOS在黏膜上皮及扩张的血管腔内可见，肺组织也存在大量EOS浸润。结果表明，CFS可以抑制局部组织EOS的积聚。CFS给药2.7 g/kg能有效地抑制气道高反应性，能有效缓解变应性鼻炎的体征，提示可能对于变应性鼻炎向支气管哮喘转化也有一定的预防作用。

3.2隐孔菌对哮喘EOS功能的影响

EOS作为效应细胞，在哮喘迟发相起着非常重要的作用。气道上皮细胞的损伤、气道高反应性的发生均与EOS在肺部的聚集及其主要产物嗜酸性粒细胞过氧化物酶（EPO）、人嗜酸性粒细胞阳离子蛋白（ECP）、髓过氧化物酶（MPO）有着非常密切的关系。Zhao等［41］研究发现，隐孔菌发酵物（CFS）灌胃给药能够明显地抑制抗原致敏的豚鼠支气管肺灌洗液中EPO含量的增加。EPO可以氧化各种物质，从而造成气道上皮细胞损伤和重构，CFS呈剂量依赖地抑制抗原致敏豚鼠哮喘迟发相中支气管-肺泡灌洗液（BALF）内EPO的含量。

血小板活化因子（PAF）、白细胞三烯B4（LTB4）有着强大的募集效应，是EOS最重要的趋化因子。有研究采用48孔趋化反应盒和5 μm多聚酯滤膜，模拟肺血管中的EOS通过内皮细胞、基底膜、肺上皮细胞进入肺泡的过程，成功再现了PAF的趋化作用。PAF对EOS有明显呈剂量依赖的趋化作用，CFS可显著呈剂量依赖性的抑制PAF对EOS的趋化作用。CFS多糖可能是通过吸附EOS或与细胞表面的受体结合，而阻断PAF的趋化作用。

3.3隐孔菌多糖对气道高反应性和炎症细胞的影响

汤慧芳等［42］采用卵白蛋白雾化吸入致敏攻击来制备大鼠哮喘模型，采用隐孔菌多糖A和B、酮替芬（剂量分别5 mg/kg，20 mg/kg，5 mg/kg）及对照溶剂（等量生理盐水）灌胃10 d。甲酞胆碱激发气道高反应性过后，进行支气管肺泡灌洗和腹腔灌洗，BALF中细胞和腹腔灌洗液中脱颗粒肥大细胞及白细胞计数并分类，发现隐孔菌多糖A、多糖B均能显著抑制致敏大鼠抗原攻击后肺顺应性的下降和气道阻力的增加、降低BALF中白细胞总数和EOS的数目，并能显著抑制腹腔EOS的渗出及腹腔肥大细胞脱颗粒。

3.4隐孔菌多糖对脂多糖（LPS）诱导人肺上皮细胞生成单核细胞趋化蛋白-1的影响

朱剑萍等［43］的研究表明，采用1 000 μg/L LPS诱导A549细胞24 h，能明显增加单核细胞趋化蛋白-1（MCP-1）的合成；100 μg/L隐孔菌多糖或1 μmol/L地塞米松均能显著地抑制LPS诱导的A549细胞MCP-1蛋白的生成和mRNA的表达。这可能是隐孔菌多糖抗肺部炎症的作用机制。

3.5隐孔菌多糖对肺组织释放白三烯的影响

白三烯作为花生四烯酸5-脂氧酶（5-lipoxygenase，5-LO）代谢途径的终产物是炎症及变态反应的重要介质。LTB4有较强的刺激白细胞及化学趋化作用，而如肽白三烯、半胱氨酸白三烯（LTC4，LTD4，LTE4）是过敏性慢反应物质（SRS-A）的重要成员。LTC4，LTD4，LTE4是引起支气管哮喘的主要化学介质，可增加气道黏膜分泌，引起气道平滑肌收缩。周建仓等［44］采用反相高效液相色谱（RP-HPLC）法和生物检定法测定了正常豚鼠肺组织calcium ionophore A23187攻击释放LTD4和致敏豚鼠肺组织抗原攻击释放过敏性慢反应物质（SRS-A），并采用致敏豚鼠气管Schult-Male法检验隐孔菌多糖的抗变态反应作用。发现隐孔菌多糖显著降低calcium ionophore A23187攻击正常豚鼠肺组织LTD4释放量和抗原攻击致敏豚鼠肺组织SRS-A释放量，并能抑制致敏豚鼠气管Schult-Male反应（IC50=0.49 g/L），隐孔菌多糖具有抑制肺组织释放白三烯和抗变态反应活性。金赛红等［45］采用大鼠腹腔注射糖原的方法诱导中性粒细胞聚集，16 h过后收集腹腔灌洗液，分离中性粒细胞，用calcium ionophore A23187刺激使其释放白三烯，采用HPLC法测定LTB4，LTC4和LTD4的含量，发现隐孔菌多糖呈浓度依赖地抑制中性粒细胞释放LTB4，LTC4和LTD4，这可能是其抗炎、平喘作用机制之一。

3.6隐孔菌多糖对致敏小鼠肺组织TNF- mRNA表达的影响

TNF-α是一种主要由EOS、T细胞、巨噬细胞、肥大细胞、内皮细胞、平滑肌细胞等产生的有广泛生物活性的细胞因子。TNF-α mRNA的过度表达可使EOS的表面受体与血管内皮细胞表面上的配体（即内皮细胞表达的粘附分子）相互作用，促进EOS与内皮细胞粘附，进而跨膜进入肺组织和气道腔。试验证明，小鼠哮喘模型组肺组织中的TNF-α mRNA表达明显升高，于抗原攻击4～8 h后出现表达高峰，早于eotaxin mRNA表达高峰的出现时间，表明TNF-α是一个较早启动的哮喘发病细胞因子，对激发其他细胞因子的分泌有着重要作用。隐孔菌多糖呈剂量依赖地抑制TNF-α mRNA的表达，提示隐孔菌多糖可能是通过影响细胞因子TNF-α的转录，减少TNF-α的生成，进而抑制EOS的气道聚集［46］。

4　结语

目前国外多集中在隐孔菌生化学成分的研究，国内对隐孔菌的研究报道多集中于发酵培养、药用成分和药理试验，药理试验仅限于细胞和啮齿动物，绝大部分研究还比较浅。鉴于隐孔菌多种药用价值及我国野生隐孔菌资源紧缺性，我国学者还须加强对隐孔菌的资源开发研究工作。

［1］徐锦堂.中国药用真菌学［M］.北京：北京医科大学，协和医科大学联合出版社，1997：689-692.

［2］吴兴亮，卯晓岚，图力古尔，等.中国药用真菌［M］.北京：科学出版社，2013：1-923.

［3］Zhao LX，Xu LH，Jiang CL.Methods for the study of endophytic microorganisms from traditional Chinese medicine plants［J］. Methods Enzymol，2012，517：3-21.

［4］李世全.秦岭巴山天然药物志［M］.西安：陕西科学技术出版社，1987：810.

［5］丁恒山.中国药用孢子植物［M］.上海：上海科学技术出版社，1982：309.

［6］曾振基，林敏，宋斌，等.广东梅州野生食药用菌资源调查［J］.食药用菌，2014，22（6）：323-325.

［7］邓春英，吴兴亮，李泰辉，等.海南岛的药用真菌［J］.贵州科学，2013，31（6）：7-13.

［8］郑文，喻晓钢，唐礼贵，等.德阳市九顶山野生菌类资源分布及保护利用［C］//第十六届中国科协年会论文集，2014：1-7.

［9］于富强，刘培贵.云南普洱地区野生食药用菌及其持续利用［J］.菌物研究，2013，11（1）：14-23.

［10］何伯伟，顾新伟.浙南山区药用真菌资源调查及主要功效评价［J］.中国现代中药，2014，16（3）：223-228.

［11］图力古尔，康国平，范宇光，等.长白山大型真菌物种多样性调查名录Ⅳ针阔混交林带［J］.菌物研究，2011，9（1）：21-36.

［12］兰茂，滇南本草项目组.滇南本草（第三卷）［M］.昆明：云南人民出版社，1975：25-27.

［13］华启洪，金国梁.中药隐孔菌的化学成分［J］.植物资源与环境，1993，2（1）：60-61.

［14］华启洪，孙静，沈礼.药用真菌隐孔菌的生物学特性研究［J］.中国中药杂志，1991，16（12）：719-722.

［15］华启洪，金国梁，孙静.一种隐孔菌菌粉的生产方法：中国，CN1058288C［P］.1996-04-24.

［16］郭新军，柯传奎.隐孔菌发酵产物及其制备方法和应用：中国，CN1539010［P］.2004-10-20.

［17］吴锦忠，陈卫琳，黄年来，等.不同发酵培养隐孔菌及野生隐孔菌成分分析比较［J］.福建中医学院学报，1997，7（2）：21-26.

［18］华启洪，金国梁，沈礼.中药隐孔菌挥发油成分的研究［J］.中国药学杂志，1993，28（2）：75-76.

［19］吴锦忠，郭家铭.隐孔菌的发酵培养及成分分析［J］.福建中医学院学报，1999，9（1）：33-36.

［20］吴锦忠，陈卫琳，郭嘉铭，等.野生隐孔菌挥发油成分分析［J］.福建中医学院学报，1998，8（3）：25-27.

［21］Wu W，Zhao F，Bao L，et al.Chemical constituents and cytotoxic activity on the fruiting bodies of Cryptoporus sinensis［J］.Chinese Journal of Medicinal Chemistry，2011，21（1）：47-52.

［22］韩俊杰，宝丽，刘宏伟.药用真菌活性次级代谢产物研究［J］.菌物学报，2015，34（5）：900-913.

［23］Hashimoto T，Tori M，Mizuno Y，et al.Cryptoporic acids A and B，novel bitter drimane sesquiterpenoid ethers of isocitric acid，from thefungusCryptoporus volvatus［J］.TetrahedronLett，1987，28（50）：6 303-6 304.

［24］Asakawa Y，Hashimoto T，Mizuno Y，et al.Cryptoporic acids A-G，drimane-type sesquiterpenoid ethers of isocitri cacid from the fungus Cryptoporus volvatus［J］.Phytochemistry，1992，31（2）：579-592.

［25］Hashimoto T，Torim，Mizuno Y，et al.The superoxide release inhibitors，cryptoporicacidsC，D，andE，dimericdrimane sesquiterpenoid ethers of isocitric acid from the fungus Cryptoporus volvatus［J］.J Chem Soc Chem Commun，1989，4（4）：258-259.

［26］Matsunaga S，Furuya-Suguri H，Nishiwaki S，et al.Differential effects of cryptoporic acids D and E，inhibitors of superoxide anion radical release，on tumor promotion of okadaic acid in mouse skin［J］.Carcinogenesis，1991，12（6）：1 129-1 131.

［27］Narisawa T，Fukaura Y，Kotanagi H，et al.Inhibitory effect of cryptoporic acid E，a product from fungus Cryptoporus volvatus，oncoloncarcinogensisinducedwithN-methyl-N-nitrosourea in rats and with 1，2-dimethylhydrazine in mice［J］. Jpn J Cancer Res，1992，83（8）：830-834.

［28］Gabriela GM，Robert MJ，Wright JE，et al.Cryptoporic and isocryptoporic acids from the fungal cultures of Polyporus arcularius and P.ciliatus［J］.Phytochemistry，2002，61：189-193.

［29］Kitamura S，Hori T，Kurita K，et al.An antitumor，branched（1-3）-beta-D-glucan from a water extract of fruiting bodies of Cryptoporus volvatus［J］.Carbohydr Res，1994，263（1）：111-121.

［30］王政，吴锦忠，陈丽艳.隐孔菌不同发酵培养菌丝与野生隐孔菌的糖类成分比较分析［J］.海峡药学，1997，9（2）：91-92.

［31］柯传奎，杨勇杰，谢强敏，等.一种隐孔菌多糖及其制备与应用：中国，CN1919875A［P］.2007-02-28.

［32］马伟光，李兴从，王德祖，等.松橄榄中的麦角甾醇醇类过氧化物［J］.云南植物研究，1994，16（2）：196-200.

［33］Deghrigue M，Festa C，Ghribi L，et al.Pharmacological evaluation，of the semi-purified fractions from the soft coral Eunicella singularis and isolation ofpure compounds［J］.Daru，2014，22：64.

［34］Wu QP，Xie YZ，Deng Z，et al.Ergosterol peroxide isolated from Ganoderma lucidum abolishes micro RNA mi R-378-mediated tumorcellsonchemoresistance［J］.PLoSOne，2012，7（8）：e44579.

［35］Ramos-Ligonio A，Lopez-Monteon A，Trigos A.Trypanocidal activity of ergosterol peroxide from Pleurotus ostreatus［J］.Phytother Res，2012，26（6）：938-943.

［36］Ma L，Chen H，Dong P，et al.Anti-inflammatory and anticancer activities of extracts and compounds from the mushroom Inonotus obliquus［J］.Food Chem，2013，139（1-4）：503-508.

［37］Gao L，Zhang W，Sun Y，et al.Cryptoporus volvatus extract inhibitsporcinereproductiveandrespiratorysyndromevirus（PRRSV）in vitro and in vivo［J］.PLo S One，2013，8（5）：e63 767.

［38］高丽，王君篪，斯建勇，等.麦角甾醇过氧化物抑制猪繁殖与呼吸综合征病毒复制试验［J］.中国兽医杂志，2016，52（3）：47-49.

［39］Ma ZQ，Zhang W，Wang L，et al.A novel compound from the mushroom Cryptoporus volvatus inhibits porcine reproductive and respiratory syndrome virus（PRRSV）in vitro［J］.PLoS One，2013，8（11）：e79 333.

［40］Xie QM，Deng JF，Deng YM，et al.Effect of cryptoporus polysaccharide on rat allergic rhinitis associated with inhibiting eotaxin mRNA expression［J］.Journol of Ethnopharmacology，2006，107：424-430.

［41］Zhao XY，Xie QM，Chen JQ，et al.Inhibitory effects of Cryptoporus Polysaccharides on airway constriction，eosinophil release，and chemotaxis inguinea Pigs［J］.Acta Pharmacol Sin，2004，25（4）：503-507.

［42］汤慧芳，陈季强，谢强敏，等.隐孔菌多糖成分对致敏大鼠气道高反应性和炎症细胞的影响［J］.浙江大学学报（医学版），2003，32（4）：287-291.

［43］朱剑萍，张辉，谢强敏.隐孔菌多糖对脂多糖诱导人肺上皮细胞生成单核细胞趋化蛋白-1的作用［J］.浙江大学学报（医学版），2008，37（4）：333-339.

［44］周建仓，谢强敏，季华，等.隐孔菌多糖对肺组织释放白三烯的影响［J］.中国药理学通报，2002，18（2）：169-172.

［45］金赛红，谢强敏，陈季强.隐孔菌发酵物对离体中性粒细胞释放白三烯B4和C4及D4的抑制作用［J］.浙江大学学报（医学版），2003，32（4）：292-295.

［46］陈黎，谢诒诚，柯传奎，等.隐孔菌多糖对致敏小鼠肺组织趋化因子mRNA和 -肿瘤坏死因子mRNA表达的影响［J］.中草药，2007，38（12）：1 832-1 835.

Advances in the Study on Fermentation and Bioactive Constituents of Cryptoporus Volvatus

Du Daqing
（BSAZ＜Hangzhou＞Biotech Co.，Ltd.，Hangzhou，Zhejiang，China310024）

The researches of the fermentation and the bioactive constituents of Cryptoporus volvatus across the world were reviewed to provide reference for the development of this new medicine.The advances in the study on fermentation and bioactive constituents of cryptoporus volvatus were summarized.In recent years，researchers in China have got it′s cultures as a new resource of Cryptoporus volvatus by fermentation and found that it contains cryptoporus polysaccharide，cryptoporic acids etc.

cryptoporus volvatus；fermentation；bioactive constituents

R285；R282.71

A

1006-4931（2016）17-0005-05

杜大庆（1980-），男，硕士研究生，执业药师，工程师，研究方向为天然药物，（电子信箱）dudaqing163@163.com。

（2016-05-01；

2016-06-05）