韦 博,宫贤惠,尹艳春,隋 源,郝继龙,刘婉瑶,王 乐*
(1.吉林大学中日联谊医院神经外科,吉林长春130033;2.温州医科大学附属眼视光医院白内障科,浙江温州325000;3.吉林大学生命科学学院,吉林长春130012;4.吉林大学第一医院眼科,吉林长春130021)
Espin WH结构域抑制whirlin全长与espin M结构域在体外细胞相互作用
韦 博1▲,宫贤惠2▲,尹艳春3,隋 源3,郝继龙4,刘婉瑶3,王 乐4*
(1.吉林大学中日联谊医院神经外科,吉林长春130033;2.温州医科大学附属眼视光医院白内障科,浙江温州325000;3.吉林大学生命科学学院,吉林长春130012;4.吉林大学第一医院眼科,吉林长春130021)
目的 具体研究Espin的结构域与whirlin全长在体外细胞的相互作用。方法 通过免疫共沉淀方法进一步研究Espin的多个结构域与whirlin全长在体外细胞的相互作用。结果 在HEK293细胞中,Espin-A结构域、espin-P结构域与whirlin全长相互作用,espin M、espin WH结构域没有和whirlin全长存在相互作用。结论 Espin WH结构域抑制whirlin全长与espin M结构域在体外细胞相互作用。
Usher综合征II型;espin
(Chin J Lab Diagn,2015,19:0886)
Usher综合征(USH)是一种常染色体隐性遗传病,在全世界范围内发生率为1/23000[1-3]。占失明和耳聋疾病的50%,先天性耳聋的5%和视网膜色素变性的18%。在欧洲,USH1,USH2和USH3通常占所有USH患者比例分别为25%-44%,56%-75%,2%[1],以耳聋和眼盲这两方面为特征。在临床上根据听力和前庭症状的严重程度,USH可分为三种类型[4,5],I型(USH1)患者严重的先天性耳聋以及严重前庭功能障碍;USH2患者表现为先天性中等度的听力受损和正常前庭功能;USH3患者表现为循序渐进的听力损害和偶尔的前庭功能障碍。以上三种类型的视力障碍主要表现为视网膜色素变性[1,6-8],早期表现为夜盲,外周视力下降和最终中心视力下降。USH是导致失明和耳聋为特征的最普遍的基因疾病。Usher综合征II型的特点是从出生开始循序渐进的听力损失,视力丧失通常在青春期或成人期。听力损失也从轻微到严重,主要影响高音调。
以往研究Usher综合征II型证明espin_A结构域、espin_P结构域、espin_M结构域和whirlin全长共定位,下面我们具体研究下在HEK293细胞中,Espin A结构域、espin P结构域、espin M结构域、espin WH结构域与whirlin全长相互作用,进一步探索USH综合征的发病机制。
1.1 仪器
细胞培养箱、恒温水箱、低温离心机、超声振荡器、PVDF膜、倒置显微镜、荧光显微镜、共聚焦显微镜。
1.2 实验方法及步骤
1.2.1 细胞培养和瞬时转染
DMEM培养液中加入8%胎牛血清,于37℃恒温箱培养HEK293细胞,待细胞覆盖率达到90%后,用LipofectamineTM2000(Invitrogen公司)将目的质粒瞬间转染入HEK293细胞,即:将0.5μg的两种目的质粒加入30μl的DMEM培养液中,再加入LipofectamineTM2000 2μl,室温放置10min,均匀加入细胞培养液中,37℃恒温箱孵育10h,观察荧光蛋白表达。
1.2.2 体外细胞免疫共沉淀和western blotting
收集荧光蛋白表达成功的HEK293细胞,加入裂解液并进行裂解。离心后于上清液中加入蛋白G继续缓慢摇晃1h。离心弃沉淀、上清液中加入whirlin抗体摇晃孵育3.5h,离心20 000g 8min。得到的上清液中加入蛋白G sepharose,缓慢摇晃1 h。慢速离心2 000g 10s后,用裂解液洗沉淀物三次,收集洗涤液用Laemmli buffer煮沸10min。所有的操作过程均在0℃条件下进行。
取适量细胞裂解液和洗涤液用SDS-PAGE胶分离提纯并转移到PVDF膜。含有10%脱脂牛奶里孵育1h,来源于兔GFP抗体4℃孵育4h,二抗室温孵育1h,显色剂显色观察最终蛋白条带。
2.1 Espin的四个结构域
Espin的四个结构域如图1所示。橙色代表EspinA,有八个并列相连重复氨基酸序列组成;深蓝色代表espinP,主要含有脯氨酸;绿色代表espin-WH,主要是和威斯科特奥尔德里奇综合征同源蛋白结构域,红色代表espinM,主要是促进actin肌束形成。
图1 espin结构域示意图
2.2 Espin WH结构域抑制whirlin全长与espin M结构域在体外细胞相互作用
从以往实验结果来看,espin_A片段、espin_P片段、espin_M片段和whirlin全长共定位,而espinWH片段则没有和whirlin全长共定位。从免疫共沉淀的western结果来看,在whirlin的沉淀物中有espin A和espin P条带,而没有espin M和espinWH条带,说明espin A和espin P和whirlin存在相互作用,而espin M和espinWH和whirlin没有相互作用。值得注意的是:在espin M和whirlin双转染的细胞里,也可见espin M和whirlin共定位。这个结果提示我们espin M可能受上游调控和whirlin相互作用。由于espin WH片段不与whirlin共定位也不存在相互作用,所以espin WH可能是抑制espin M和whirlin的相互作用。
EspinA可以结合myosinIIIa,并进行物质交换,从内耳毛细胞静纤毛的基底部转运espin到静纤毛的尖端。因此,whirlin和espinA在静纤毛基底部之间的相互作用可以调控espin转运。Espin P除了结合whirlin外,espin P还结合IRSp53和profilin[9],共同参与espin与whirlin的相互作用。值得一提的是,Eps8既与whirlin相互作用[10],又与IRSp53相结合[11]。最终在小鼠体内whirlin,espinP,Eps8和IRSp53形成一个蛋白复合体,在espin基因敲除的小鼠内,内耳毛细胞的myosin Xva蛋白位置会发生变化[12]。
视网膜感光细胞分为外节、内节和连接纤毛三部分,感光细胞外节主要负责光信号传导,视网膜感光细胞外节和内节之间通过一个狭长的连接纤毛相连。连接纤毛的旁边有一对中心体,EspinWH结构域就是调控神经元的中心体产生形成肌动蛋白束[13]。从实验结果来看,espinWH是抑制whirlin和espinM之间作用,阻止espinM结合肌动蛋白单体形成肌动蛋白束。
[1]Hartong DT,Berson EL,Dryja TP.Retinitis pigmentosa[J].Lancet,2006,368(9549):1795
[2]Boughman JA,Vernon M,Shaver KA.Usher syndrome:definition and estimate of prevalence from two high-risk populations[J].Chronic Dis,1983,36(8):595
[3]Keats BJ,Corey DP.The usher syndromes.[J]Am J Med Genet,1999,89(3):158.
[4]Smith RJ,Berlin CI,Hejtmancik JF,et al.Clinical diagnosis of the Usher syndromes.Usher Syndrome Consortium[J].Am J Med Genet,1994,50(1):32.
[5]Petit C.Usher syndrome:from genetics to pathogenesis[J].Annu Rev Genomics Hum Genet,2001,2(1):271.
[6]Malm E,Ponjavic V,Moller C,et al.Andreasson:Alteration of rod and cone functionin children with Usher syndrome[J].Eur J Ophthalmol,2011,21(1):30.
[7]Sandberg MA,Rosner B,Weigel-DiFranco C,et al.Disease course in patients with autosomal recessive retinitis pigmentosa due to the USH2Agene[J].Invest Ophthalmol Vis Sci,2008,49(12):5532.
[8]Fishman GA,Bozbeyoglu S,Massof RW,et al.Natural course of visual field loss in patients with Type 2Usher syndrome[J].Reti-na,2007,27(5):601.
[9]Sekerkova G,Zheng L,Loomis PA,et al.Espins are multifunctional actin cytoskeletal regulatory proteins in the microvilli of chemosensory and mechanosensory cells[J].Neurosci,2004,24(23):5445.
[10]Manor U,Disanza A,Grati M,et al.Regulation of stereocilia length by myosin XVa and whirlin depends on the actin-regulatory protein Eps8[J].Curr Biol,2011,21(2):167.
[11]Disanza A,Mantoani S,Hertzog M,et al.Regulation of cell shape by Cdc42is mediated by the synergic actin-bundling activ-ity of the Eps8-IRSp53complex[J].Nat Cell Biol,2006,8(12):1337.
[12]Rzadzinska A,Schneider M,Noben-Trauth K,et al.Balanced levels of Espin are critical for stereociliary growth and length maintenance[J].Cell Motil Cytoskeleton,2005,62(3):157.
[13]Loomis PA,Kelly AE,Zheng L,et al.Targeted wildtype and jerker espins reveal a novel,WH2-domain-dependent way to make actin bundles in cells[J].J Cell Sci,2006,119(8):1655.
Espin WH domain inhibit the association between espin ABM domain and whirlin
WEI Bo,GONG Xian-hui,YIN Yanchun,et al.(China-Japan Union Hospital of Jilin University,Changchun130033,China)
Objective Studing the association between Multiple regions of espin and whirlin in vitro.Methods Transfecting espin_A domain,espin_P domain,espin_WH,espin_M domain and whirlin-F in HEK293cell,use whirlin antibody immunoprecipitate target protein.Results Identifying espin_A domain,espin_P domain interact with whirlin-F.But espin_WH domain and espin_M domain did not.Conclusion Espin WH domain inhibit the association between espin ABM domain and whirlin.
USH2;whirlin;espin
R774
A
2014-07-09)
1007-4287(2015)06-0886-03
国家自然青年科学基金项目(81400404);吉林省科技发展计划资助项目(20140520034JH);吉林大学白求恩青年科研基金项目(2013205030)
*通讯作者,▲共同第一作者