复方磺胺甲噁唑在鲫鱼体内的药代动力学研究

2015-02-24 08:43杨洪波卢彤岩
关键词:药动学磺胺鲫鱼

韩 冰,杨洪波,王 荻,卢彤岩

(1 中国水产科学研究院 黑龙江水产研究所,黑龙江 哈尔滨 150070;2 上海海洋大学 水产与生命学院,上海 浦东 201306)

复方磺胺甲噁唑在鲫鱼体内的药代动力学研究

韩 冰1,2,杨洪波1,2,王 荻1,卢彤岩1

(1 中国水产科学研究院 黑龙江水产研究所,黑龙江 哈尔滨 150070;2 上海海洋大学 水产与生命学院,上海 浦东 201306)

【目的】 研究复方磺胺甲噁唑在鲫鱼体内的药物代谢动力学(以下简称药动学)特征,为制定其合理的用药方案提供理论依据。【方法】 对体质量为(68.18±14.68) g/尾的鲫鱼以500 mg/kg的剂量单次口灌复方磺胺甲噁唑粉(100 g含磺胺甲噁唑(SMZ) 8.33 g、甲氧苄啶(TMP) 1.67 g)混悬液,并分别于给药后0.25,0.5,0.75,1,1.5,2,4,6,8,12,24,36,48,72 h采集鲫鱼血浆、肌肉、肝和肾4种组织,采用高效液相色谱-紫外检测法(HPLC-UV)对样品进行检测,通过3p97软件分析药动学参数。【结果】 甲氧苄啶在鲫鱼血浆、肌肉和肾中的药动学特征符合一级吸收二室开放模型,在肝中的药动学特征符合一级吸收一室开放模型;磺胺甲噁唑在鲫鱼血浆、肌肉、肝和肾中的药动学特征符合一级吸收二室开放模型。【结论】 药物的2种主要成分在健康鲫鱼体内吸收较完全,分布广泛,甲氧苄啶较磺胺甲噁唑吸收快、消除慢。

高效液相色谱-紫外检测法;复方磺胺甲噁唑;鲫鱼;药物代谢动力学

复方磺胺甲噁唑(Compound sulfamethoxazole)又名复方新诺明,是磺胺类药物磺胺甲噁唑(Sulfamethoxazole,SMZ)和磺胺增效剂甲氧苄啶(Trimethoprim,TMP)按5∶1的质量比混合后组成的复方制剂。由于其具有抗菌谱广、抑菌能力强、种类繁多、性质稳定、使用简便等优点[1],并对疖疮病、细菌性烂鳃病、竖鳞病、打印病、细菌性败血症等具有良好的治疗效果,因此在水产养殖中得到了广泛的应用。

药物的药代动力学(以下简称药动学)研究是临床设计合理给药方案、发挥药物最佳疗效和减少毒副作用的理论基础。目前,国内外仅有少数学者对TMP及SMZ在水产动物体内的药动学相关参数进行了报道[2-10],而且作为一种复方药物,同时研究复方SMZ 2种主要成分在水产动物体内的药动学仅出现在草鱼[7]、鲈鱼[8]和罗氏沼虾[10]中。鲫作为我国主要淡水养殖品种之一,目前尚未见复方SMZ在其体内的药动学研究报道,因而无法指导该药在鲫鱼养殖过程中的科学合理应用。为此,本试验对复方SMZ在鲫鱼体内的药动学特征进行了研究,旨在为制定其在鲫养殖病害防治中的科学给药方案提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材 料

1.1.1 试验动物 鲫鱼由黑龙江水产研究所呼兰试验基地提供,体质量(68.18±14.68) g/尾。试验鱼在自动循环水族缸中适应性饲养7 d,期间投喂全价基础饲料,之后进行正式试验。正式试验期间不投喂,持续给氧,保持水温在(20±0.5) ℃。

1.1.2 药品与试剂 TMP标准品(TMP含量 99.5%,批号:10121)、SMZ标准品(SMZ含量 99.5%,批号:10405),德国Dr. Ehrenstorfer公司;复方SMZ粉(100 g含SMZ 8.33 g、TMP 1.67 g,批号:20120506),北京鑫洋水产高新技术有限公司;二氯甲烷(A.R),天津永大化学试剂有限公司;乙腈(HPLC)、冰乙酸(HPLC)、正己烷(HPLC),德国Merk公司。

1.1.3 仪 器 戴安U-3000高效液相色谱仪,Thermo公司;3K15离心机,Sigma公司;FJ200-S调速混匀器,上海标准模型厂;T-214电子天平,赛多利斯仪器系统有限公司;MD200-2氮吹仪,杭州奥盛仪器有限公司。

1.2 方 法

1.2.1 给药方法及样品采集 以500 mg/kg的剂量,按8 mL/kg体质量对鲫鱼单次口灌质量浓度为62.5 g/L的复方SMZ粉混悬液,分别于给药后 0.25,0.5,0.75,1,1.5,2,4,6,8,12,24,36,48和72 h采集6尾试验鱼的血(0.3%肝素钠抗凝后离心吸取血浆)、肝、肾、肌肉组织样品,编号后保存于-20 ℃冰箱中备用。

1.2.2 标准曲线的绘制 准确称取TMP和SMZ各0.004 g,溶于20 mL流动相(V(乙腈)∶V(1%乙酸溶液)∶V(0.4%乙酸铵溶液)=20∶40∶40)中,配制成200 μg/mL的标准储备液,于4 ℃冰箱中避光保存。使用时用流动相稀释成所需质量浓度的标准溶液。

准确移取TMP和SMZ标准储备液,依次稀释成100,50,10,5,1,0.5,0.1,0.05 μg/mL的标准工作液,过0.22 μm有机相滤膜后,进行HPLC-UV分析。以HPLC-UV峰面积为纵坐标(y)、以药物质量浓度为横坐标(x)绘制标准曲线,求回归方程和相关系数。HPLC-UV条件:色谱柱为Waters Spherisorb ODS2-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),柱温30 ℃,流动相V(乙腈)∶V(1%乙酸溶液)∶V(0.4%乙酸铵溶液)=20∶40∶40,流速1.0 mL/min,进样量20 μL,紫外检测波长270 nm。

1.2.3 回收率和精密度测定 取鲫鱼空白组织(血浆取0.2 mL,肌肉、肝、肾各取1 g),分别添加1,2,10 μg/mL的TMP和5,10,50 μg/mL的SMZ标准液,各组添加标准液的总体积为1 mL,每种组织的每个标准液添加质量浓度设置3个平行组,静置10 min,按样品前处理方法处理后,进行HPLC-UV分析。按照下式计算回收率:

回收率=实测药物质量浓度/实际药物质量浓度×100%。

将各样品在同一天内分别测定3次,每次测定间隔4 h;在1周内分别测定3次,每次间隔1 d,计算不同质量浓度梯度下样品的相对标准偏差,计算日内和日间精密度。

1.2.4 样品的HPLC-UV分析 (1)肝、肾、肌肉组织样品的处理。准确称取1 g组织于50 mL离心管中,加入4 mL二氯甲烷,15 000 r/min匀浆30 s,再用3 mL二氯甲烷清洗刀头30 s,合并提取液于上述50 mL离心管中,振荡2 min,8 000 r/min离心5 min,吸取全部上清液于15 mL离心管中。剩余残渣加入4 mL二氯甲烷重复提取,振荡2 min,8 000 r/min离心5 min,合并上清液于上述15 mL离心管中,重复此步骤1次。将含有3次提取液的15 mL离心管于40 ℃下氮气吹干,残渣用1 mL流动相溶解,加入1 mL正己烷除脂,振荡2 min,5 000 r/min离心3 min,下层液过0.22 μm有机相滤膜后,进行HPLC-UV分析,计算SMZ和TMP在鲫鱼肝、肾、肌肉组织中的含量,制作药时曲线,进行药动学分析。

(2)血浆样品的处理。在-20 ℃冰箱中取出血浆,于室温下自然解冻后摇匀,精确吸取200 μL于2 mL离心管中,然后加入1 mL甲醇,振荡2 min,10 000 r/min离心5 min,吸取上清于10 mL离心管中。剩余残渣再加入1 mL甲醇重复提取,振荡2 min,10 000 r/min离心5 min,合并上清液于上述10 mL离心管中,重复此步骤1次。将含有3次提取液的10 mL离心管于40 ℃下氮气吹干,残渣用1 mL流动相溶解,加入1 mL正己烷除脂,振荡2 min,8 000 r/min离心3 min,下层液过0.22 μm有机相滤膜后,进行HPLC-UV分析,计算SMZ和TMP在鲫鱼血浆中的含量,制作药时曲线,进行药动学分析。

1.3 数据处理

组织与血浆的药时数据通过3p97药物代谢动力学软件进行数据处理与模型拟合,计算药动学参数,确认复方SMZ在鲫鱼体内各组织中的药动学模型。

2 结果与分析

2.1 TMP和SMZ标准曲线的建立

应用本试验建立的检测方法,以3倍信噪比(S/N=3)作为检测限,TMP和SMZ的最低检测限均为0.01 μg/mL。以标准溶液质量浓度为横坐标(x)、以峰面积为纵坐标(y)绘制标准曲线,如图1、图2所示。由图1、图2可知,TMP和SMZ在 0.05~100 μg/mL质量浓度范围内线性关系良好,相关系数r均为 0.999 9,线性回归方程分别为:y=0.421 8x-0.006 9和y=1.051 2x-0.081 1。

2.2 TMP和SMZ的回收率与精密度

如表1所示,本试验条件下,TMP和SMZ在血浆、肌肉、肝、肾中3个质量浓度添加水平的回收率分别为71.32%~80.78%、84.39%~93.49%。TMP、SMZ的HPLC-UV检测方法的日内精密度分别为(0.28±0.063)%和(0.10±0.040)%,日间精密度分别为(0.31±0.049)%和(0.11±0.037)%。

2.3 复方SMZ在鲫鱼体内的药时曲线与主要药动学参数

图3、图4分别为TMP和SMZ在鲫鱼体内的药时曲线。由图3可以看出,血浆和肾脏中TMP含量在给药后最初的4 h内均大于肌肉和肝脏中;而在给药后6 h,肝脏中TMP含量迅速升高并达到峰值3.688 μg/g,远高于其他组织,在给药后8 h又迅速降低至0.103 μg/g,此后则一直维持在较低水平;血浆、肌肉和肾脏中TMP含量分别在给药后4,6,4 h达到峰值,峰值分别为1.215 μg/mL和 1.021,1.554 μg/g,而后TMP在3种组织中的含量逐渐降低;在给药后72 h,血浆、肌肉、肝脏和肾脏中TMP含量分别为0.281 μg/mL和0.085,0.048,0.103 μg/g。

图3 TMP在鲫鱼4种组织中的含量
Fig.3 Concentrations of TMP in four tissues of crucian carp

由图4可以看出,在给药后0.25 h,4种组织中SMZ的含量较为接近,此后便逐渐升高;4种组织中SMZ的含量在72 h内均出现2个峰值,第1峰在血浆、肌肉、肝脏和肾脏中的出现时间分别为给药后4,4,1.5和6 h,峰值分别为3.888 μg/mL和 2.336,2.546,2.391 μg/g;第2峰的出现时间则均在给药后24 h,峰值分别为1.927 μg/mL和2.124,2.237,2.585 μg/g;在给药后72 h,SMZ在血浆、肌肉、肝脏和肾脏中的含量分别降至0.098 μg/mL和0.047,0.029,0.088 μg/g。

图4 SMZ在鲫鱼4种组织中的含量
Fig.4 Concentrations of SMZ in four tissues of crucian carp

TMP和SMZ在4种组织中的药动学参数如表2所示。TMP在鲫鱼血浆、肌肉和肾中的药动学特征均符合一级吸收二室开放模型,其代谢方程分别为:C=2.880e-0.307t+0.554e-0.025t-3.434e-0.647t,C=1.612e-0.161t+0.069e-0.005t-1.681e-0.342t,C=4.791e-0.194t+0.199e-0.004t-4.990e-0.350t;在肝中的药动学特征符合一级吸收一室开放模型,其代谢方程为:C=0.107(e-0.012t-e-0.876t)。SMZ在鲫鱼血浆、肌肉、肝和肾中的药动学特征均符合一级吸收二室开放模型,其方程分别为:C=5.446e-0.138t+0.622e-0.026t-6.068e-0.286t,C=2.297e-0.142t+1.104e-0.041t-3.401e-0.154t,C=0.696e-0.051t+0.480e-0.046t-1.176e-0.109t,C=1.982e-0.119t+5.760e-0.056t-7.742e-0.114t。

注:A.分布相的零时截距;α.分布速率常数;B.消除相的零时截距;β.消除速率常数;ka.药物吸收速率常数;TL.延滞时间;T1/2α.分布相半衰期;T1/2β.消除相半衰期;T1/2ka.吸收相半衰期;K21.药物自周边室到中央室的一级转运速率;K10.药物自中央室的消除速率;K12.药物自中央室到周边室的一级转运速率;AUC.药时曲线下总面积;CL(s).体积内总消除率;Tmax.达峰时间;Cmax.峰浓度(血浆中Cmax单位为mg/L,肌肉、肝脏和肾脏中Cmax单位为mg/kg);V/F(c).表观分布容积。

Note:A.Zero-time intercept of a distribution phase;α.Distribution rate constant;B.Zero-time intercept of a elimination phase;β.Elimination rate constant;ka.Drug absorption rate constant;TL.Lag time;T1/2α.Distribution half-life;T1/2β.Elimination half-life;T1/2ka.Absorption half-life;K21.Rate constant of drug from peripheral compartment to central compartment transporter;K10.Rate constant of drug elimination from the central compartment;K12.Rate constant of drug from central compartment to the peripheral compartment transporter;AUC.Area under concentration-time curve;CL(s).Total volume rate of elimination;Tmax.Time to peak;Cmax.Peak concentration(unit ofCmaxin plasma was mg/L while in muscle,liver,and kidney was mg/kg);V/F(c).Apparent volume of distribution.

3 讨 论

本试验中,SMZ在鲫鱼4种组织中的药动学均符合一级吸收二室开放模型,而TMP在肝脏中的药动学符合一级吸收一室开放模型,在血浆、肌肉和肾脏中的药动学符合一级吸收二室开放模型,据此结果推测TMP在同种鱼不同组织中的药动学行为有着极大的不同,这可能与TMP的亲脂性等理化性质有关。

研究表明,表观分布容积V/F(c)值大于1.0 L/kg 时,则表明药物在体内分布广泛。本试验中,TMP和SMZ在血浆、肌肉、肝脏、肾脏中的V/F(c)值分别为3.105,9.045,78.984,3.587 L/kg和12.308,42.287,64.536,14.821 L/kg,表明TMP和SMZ在鲫鱼体内均广泛分布。对比TMP与SMZ的T1/2α和T1/2β可以发现,TMP吸收比SMZ快,但是消除极其缓慢。以500 mg/kg(实际有效成分,SMZ为41.65 mg/kg,TMP为 6.35 mg/kg)单剂量口灌复方SMZ混悬液0.25 h后,TMP和SMZ在血浆中的质量浓度分别为0.60和0.13 μg/mL,在肌肉、肝、肾中的含量分别为0.09,0.01,0.49 μg/g和 0.07,0.01,0.12 μg/g。最初给药时,TMP和SMZ的质量比为1∶5,但是在给药0.25 h后,除了肝脏中TMP和SMZ含量接近外,其他组织内TMP含量均高于SMZ,王群等[8]的研究也出现了类似的结果,这可能是因为TMP的吸收比SMZ迅速、高效造成的。随后,TMP和SMZ开始在鲫鱼体内各组织中吸收、分布,血浆、肌肉、肝、肾4种组织中分别于给药后2.603,4.346,4.964,4.043 h和 5.414,10.763,13.391,12.223 h达到峰值,峰值分别为 1.176 μg/mL和0.490,0.100,1.167 μg/g及 1.831 μg/mL和0.557,0.336,1.424 μg/g。2种药物在血浆中的达峰时间均明显早于其他3种组织,综合血液在循环系统中的输送作用可以看出,TMP和SMZ在鲫鱼肌肉、肝、肾中有一个蓄积的过程。SMZ在鲫鱼体内的达峰时间早于草鱼[7]和罗非鱼[9],晚于大菱鲆[6]和鲈鱼[8],说明给药剂量、鱼种类和饲养条件对药物的代谢动力学特征有很大的影响,这种现象得到了大量的药代动力学试验的验证[11-17]。

由本研究药时曲线可以看出,TMP在鲫鱼肝脏中的达峰值明显高于其他组织,由于肝脏中脂肪含量较高,推测这与TMP的亲脂性有关;SMZ在肝脏中的达峰值略高于肌肉,低于血浆和肾脏,这与袁科平等[9]和冯淇辉[18]报道的磺胺类药物的乙酰化(即磺胺类药物与乙酰辅酶A结合生成无活性的代谢产物乙酰化磺胺)使其在肝脏中含量较低的结论一致。而王群等[8]的研究还认为,乙酰化率较高的组织除肝脏外,还包括肾,其研究结果显示肾中SMZ含量同样低于血液、肌肉等组织。本研究SMZ在鲫鱼肾中没有出现这种现象,这可能与试验鱼种不同有关。从药时曲线还可发现,SMZ含量变化在4种组织中均呈明显的双峰曲线,出现双峰乃至多峰现象的机制被认为可能是肠-肝循环(经胆汁或部分经胆汁排入肠道的药物,在肠道中又重新被吸收,经门静脉又返回肝脏的现象)和胃肠道的多部位吸收(胃肠道不同部位有多个吸收位点,由于不同位点的腔道内膜对药物的通透性不同,故口服后不同部位对药物的吸收时间和吸收速率并不一致,被吸收的药物在血液中叠加)[19],而肠-肝循环又被认为是产生双峰或者多峰现象最有可能的一种机制,如果存在肠-肝循环,则第2峰的峰值要低于第1峰[20-21]。本试验中,SMZ在血浆、肌肉、肝3种组织内的第2峰峰值均低于第1峰,符合肠-肝循环的特征;SMZ在肾脏中第2峰峰值略高于第1峰,考虑到肾是药物排泄的主要器官,其第2峰峰值较高的原因可能与药物于某一时间点的集中转运、排泄以及肾小管的重吸收有关。因此推测本试验中SMZ在血浆、肌肉、肝脏和肾脏中出现双峰现象的机制主要为肠-肝循环。

另外,艾晓辉等[7]研究了SMZ在草鱼体内单方给药和复方给药情况下的药动学特征,发现TMP不影响SMZ在鱼体内的分布与消除。而复方给药条件下是否对2种成分在鲫鱼体内的分布及消除有影响,尚有待进一步研究。

[1] 张培旗.复方新诺明对中国明对虾的毒性及残留研究 [D].青岛:中国海洋大学,2005.

Zhang P Q.Studies on toxicity and tissue elimination of su1famethoxazo1e and trimethoprium onFennerpoenaeuschinensis[D].Qingdao:Ocean University of China,2005.(in Chinese)

[2] Samuelsen O B,Lunestad B T,Jelmert A.Pharmacokinetic and efficacy studies on bath-administering potentiated sulphonamides inAtlantichalibut,HippoglossushippoglossusL [J].Journal of Fish Diseases,1997,20(4):287-296.

[3] Ueno R.Pharmacokinetics and bioavailability of sulfamonomethoxine in cultured eel [J].Fish Pathology,1998,33(4):297-301.

[4] Kleinow K M,Beilfuss W L,Jarboe H H,et al.Pharmacokinetics,bioavailability,distribution,and metabolism of sulfadimethoxine in the rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) [J].Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences,1992,49(5):1070-1077.

[5] Kazuaki U,Takaiko A,Ryuji U.Pharmacokinetics and metabolism of sulfamonomethoxine in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) and yellowtail (Sariolaquinqueradiata) following bolus intravascular administration [J].Aquaculture,1997,153:1-8.

[6] 曲志娜,赵思俊,王玉东,等.磺胺甲噁唑在大菱鲆体内药代动力学及残留消除规律的研究 [J].中国兽药杂志,2009,43(2):28-31.

Qu Z N,Zhao S J,Wang Y D,et al.Pharmacokinetics and elimination of sulfamethoxazole in turbot [J].Chinese Journal of Veterinary Drug,2009,43(2):28-31.(in Chinese)

[7] 艾晓辉,刘长征,刘义平.复方新诺明在草鱼体内的药代动力学及消除规律 [J].水产学报,2004,28(B12):53-57.

Ai X H,Liu C Z,Liu Y P.Pharmacokinetics of SMZ-TMP inCtenopharyngodonidellusand its eliminationinvivo[J].Journal of Fisheries of China,2004,28(B12):53-57.(in Chinese)

[8] 王 群,孙修涛,刘德月,等.复方新诺明在鲈鱼体内的药物代谢动力学研究 [J].海洋科学,2001,25(2):35-38.

Wang Q,Sun X T,Liu D Y,et al.Pharmacokinetics study of sulfamthazine in perch [J].Marine Sciences,2001,25(2):35-38.(in Chinese)

[9] 袁科平,艾晓辉.磺胺甲噁唑在罗非鱼体内的药代动力学及组织浓度研究 [J].水利渔业,2008,28(3):25-27.

Yang K P,Ai X H.A study on pharmacokinetics and tissue concentrations of sulfamethoxazole in tilapia [J].Reservoir Fisheries,2008,28(3):25-27.(in Chinese)

[10] 郑宗林,刘鸿艳,黄 辉,等.复方新诺明在罗氏沼虾中的药代动力学和组织分布 [J].广东海洋大学学报,2008,28(4):54-59.

Zheng Z L,Liu H Y,Huang H,et al.Pharmacokinetics,tissue distribution of sulfamethoxazole and trimethoprim inMacrobranchiumrosenbergii[J].Journal of Guangdong Ocean University,2008,28(4):54-59.(in Chinese)

[11] 卢彤岩,杨雨辉,徐连伟,等.达氟沙星在史氏鲟体内药物代谢动力学比较研究 [J].水生生物学报,2006,30(3):349-355.

Lu T Y,Yang Y H,Xu L W,et al.The pharmacokinetic of danofloxacin in healthy and diseased acipenser schrenckii infected byAeromonashydrophila[J].Acta Hydrobiologica Sinica,2006,30(3):349-355.(in Chinese)

[12] 司力娜,陈 琛,李绍戊,等.恩诺沙星在金鳟和哲罗鲑鱼体内的药代动力学比较 [J].江苏农业科学,2011(6):157.

Si L N,Chen C,Li S W,et al.Comparative pharmacokinetics of enrofloxacin in golden trout and taimen [J].Jiangsu Agricultural Sciences,2011(6):157.(in Chinese)

[13] 汪文选,卢彤岩,王 荻,等.两种水温条件下恩诺沙星在鲫鱼体内的药动学比较 [J].黑龙江畜牧兽医,2010(3):63.

Wang W X,Lu T Y,Wang D,et al.Comparative pharmacokinetics of enrofloxacin in grass carp at different temperatures [J].Heilongjiang Animal Science and Veterinary Medicine,2010(3):63.(in Chinese)

[14] 艾晓辉,刘长征,周运涛.不同水温和给药方式下磺胺甲噁唑在草鱼体内的药动学研究 [J].水生生物学报,2005,29(2):210-214.

Ai X H,Liu C Z,Zhou Y T.A study on pharmacokinetic of sulphamethoxazole in grass carp at different temperatures and administration regimes [J].Acta Hydrobiologica Sinica,2005,29(2):210-214.(in Chinese)

[15] Abedini S,Namdari R,Law F C P.Comparative pharmacokinetics and bioavailability of oxytetracycline in rainbow trout and chinook salmon [J].Aquaculture,1998,162(1):23-32.

[16] Gaunt P S,Langston C,Wrzesinski C,et al.Single intravenous and oral dose pharmacokinetics of florfenicol in the channel catfish (Ictaluruspunctatus) [J].Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics,2012,35(5):503-507.

[17] Liang J,Li J,Zhao F,et al.Pharmacokinetics and tissue behavior of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in turbotScophthalmusmaximusat two water temperatures [J].Chinese Journal of Oceanology and Limnology,2012,30:644-653.

[18] 冯淇辉.兽医药物代谢动力学 [M].北京:科学出版社,1987.

Feng Q H.Veterinary pharmacokinetic [M].Beijing:Science Press,1987.(in Chinese)

[19] 魏凤环,王永刚,罗佳波.药动学多峰现象研究概况 [J].中国药学杂志,2005,40(23):1772-1774.

Wei F H,Wang Y G,Luo J B.The phenomenon research of pharmacokinetic multimodal [J].Chinese Pharmaceutical Journal,2005,40(23):1772-1774.(in Chinese)

[20] 刘秀红,王 群,李 健.氯霉素在牙鲆体内的药代动力学及残留消除规律研究 [J].集美大学学报:自然科学版,2003,8(4):305-310.

Liu X H,Wang Q,Li J.Studies on pharmacokinetics and the elimination regularity of chloranphenicol residues inParalichthysolivaceus(T&S)invitro[J].Journal of Jimei University:Natural Science,2003,8(4):305-310.(in Chinese)

[21] 王 慧. 噁喹酸在养殖牙鲆(Paralichthysolivaceus) 体内的残留消除规律研究 [D].青岛:中国海洋大学,2006.

Wang H.Studies on the residue and elimination of oxolinic acid in cultured flounder(Paralichthysoliuaceus) [D].Qingdao:Ocean University of China,2006.(in Chinese)

Pharmacokinetics of compound sulfamethoxazole in crucian carp

HAN Bing1,2,YANG Hong-bo1,2,WANG Di1,LU Tong-yan1

(1HeilongjiangRiverFisheriesResearchInstitute,ChineseAcademyofFisherySciences,Harbin,Heilongjiang150070,China; 2CollegeofFisheriesandLifeScience,ShanghaiOceanUniversity,Pudong,Shanghai201306,China)

【Objective】 This paper studied the pharmacokinetics of compound sulfamethoxazole in crucian carp(Carassiusauratus) to provide theoretical basis for designing reasonable medication scheme.【Method】 After oral administration of compound sulfamethoxazole (100 g containing 8.33 g SMZ and 1.67 g TMP) suspension liquid with a dosage of 500 mg/kg to crucian carps with weight of (68.18±14.68) g,plasma,muscle,liver and kidney samples were collected at 0.25,0.5,0.75,1,1.5,2,4,6,8,12,24,36,48,and 72 h,respectively.The samples were measured by high-performance liquid chromatography-ultraviolet method (HPLC-UV) and the pharmacokinetic parameters were obtained by 3p97 software.【Result】 The pharmacokinetics of trimethoprim(TMP) in plasma,muscle,and kidney were in line with the two-compartment open model with first-order absorption and the pharmacokinetics in liver was best described by one-department open model with first-order absorption.The pharmacokinetics of sulfamethoxazole (SMZ) in plasma,muscle,liver and kidney were best described by the two-compartment open model with first-order absorption.【Conclusion】 The two main components of compound sulfamethoxazole were well absorbed and widely distributed.TMP was absorbed more rapidly and eliminated more slowly than SMZ.

HPLC-UV;compound sulfamethoxazole;crucian carp;pharmacokinetic

2013-10-22

公益性行业(农业)科研专项(201203085);现代农业产业技术体系建设专项(CARS-46)

韩 冰(1989-),男,山东德州人,在读硕士,主要从事渔药药理及残留检测技术研究。E-mail:h_bing1022@163.com

卢彤岩(1967-),女,黑龙江哈尔滨人,研究员,博士,主要从事水产动物病害研究。E-mail:lutongyan@hotmail.com

时间:2015-01-19 09:19

10.13207/j.cnki.jnwafu.2015.03.026

S948

A

1671-9387(2015)03-0013-07

网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20150119.0919.026.html

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