多酶激活剂对小白菜生长、品质及抗氧化酶活性的影响

庞强强等

摘 要：研究了不同浓度的多酶激活剂对小白菜生长、品质及抗氧化酶活性的影响。研究结果表明，多酶激活剂处理均可提高小白菜的地上部鲜、干质量、VC和可溶性蛋白含量，降低小白菜硝酸盐含量，增强超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化物酶（POD）、过氧化氢酶（CAT）和谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性，以T2处理（800倍液）效果最佳。

关键词：小白菜；多酶激活剂；生长；品质；抗氧化酶活性

我国农业生产已进入高产、优质、高效、生态、安全阶段[1]。目前，提高作物产量的主要途径是利用优良品种、增加化肥的投入、配合优化栽培措施以及用农药防治病虫害等[2，3]。随科学技术的发展，人们根据酶学理论，研制出适用于植物的酶激活剂，可以调控植物体内的某些生理生化反应，进而达到提高作物产量及改善品质的目的。本试验所采用的植物多酶激活剂具有增产、抗病、解毒和富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4种酶的受体等特点，试验旨在为多酶激活剂在蔬菜生产上的应用提供依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

试验于2014年3月20日至5月15日在华南农业大学园艺学院试验基地进行。供试小白菜为市售四季矮脚黑叶甜白菜。 试验所用多酶激活剂为华南农业大学资环学院提供，主要成分为蛋白质（≥6%），微量、中量元素（≥2%），pH值≥3.5。

2014年3月20日播种，以珍珠岩为基质进行穴盘育苗。当幼苗3叶1心时选生长一致的健壮幼苗移至栽培袋（直径28 cm，高24 cm）中，盆中基质为泥炭∶椰糠按2∶1（体积比）的比例配制。试验共设4个多酶激活剂浓度处理，分别为0（CK）、400（T1）、800（T2）、1 200（T3）倍液，移植5 d以后进行喷施处理，对照喷施清水，其余各处理分别喷施等量相应稀释倍数的多酶激活剂液，以后每隔10 d喷1次，共喷3次，喷雾时以叶片正反两面均匀布满小液滴为准。于最后一次喷施后3 d采收取样，测定相关生长和生理指标。

1.2 测定项目及方法

地上部鲜质量用天平称量。将地上部放入烘箱中，105℃杀青 15 min，然后在80℃烘干至恒重，用万分之一分析天平称取干质量；采用李合生[4]的方法测定硝酸盐含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量，POD、CAT和SOD活性，采用黄爱缨等[5]和邓修惠等[6]的方法测定谷胱甘肽过氧化物酶活性。采用李合生[4]和李军[7]的方法测定VC含量。

1.3 数据处理

试验所得数据结果采用SPSS 17.0软件进行统计分析，单因素分析采用Duncan's新复极差法，作图采用Microsoft Excel 2003软件。

2 结果与分析

2.1 多酶激活剂对小白菜生长的影响

由表1看出，与对照相比，小白菜地上部鲜质量随处理稀释倍数的加大呈先升高后降低的趋势。在T2处理时地上部鲜质量最高，比对照显著增加了33.63%；T1和T3处理小白菜地上部鲜质量分别比对照增加了17.17%和7.83%，但差异不显著。小白菜干质量与鲜质量变化趋势相同，地上部干质量在T2处理时最高，T3处理时最低，但各处理间差异均不显著。

2.2 多酶激活剂对小白菜营养品质的影响

由表2可知，与对照相比，各浓度处理均可降低小白菜硝酸盐含量，除T2处理显著降低40.21%外，T1和T3处理分别比对照降低了13.71%和9.71%，但差异均不显著。VC含量在T2处理时最高，比对照显著增加了76.19%，T1和T3处理也均高于对照，分别比对照增加52.38%和19.05%，但差异不显著。多酶激活剂处理的可溶性糖含量除T3处理显著低于对照外，其他处理与对照相比差异均不显著。多酶激活剂处理的小白菜可溶性蛋白含量均显著高于对照，其中T2处理含量最高，比对照增加了36.57%，T1和T3处理分别比对照增加了10.70%和11.94%。

2.3 多酶激活剂对小白菜体内抗氧化酶活性的影响

由表3可知，多酶激活剂各处理POD、SOD、CAT和GSH-Px活性均高于对照，但不同处理提高程度有所不同，除T1处理的POD活性和T3处理的SOD活性与对照相比差异不显著外，其余处理差异均显著。与对照相比，各处理的CAT活性增幅为47.11%～70.42%，T3处理的CAT活性最高，但与T2处理差异不显著。POD活性呈现先增加后降低趋势，但所有处理均高于对照，增幅为12.76%～25.54%，其中T2处理活性最高。各处理SOD活性与对照相比分别提高了17.00%、31.60%和1.48%，T2处理最高。多酶激活剂各处理均显著提高了小白菜GSH-Px活性，增幅为72.12%～104.33%，T1处理活性最大，但与T2、T3处理差异不显著。

3 讨论与结论

生物体内一切生理生化反应都是在酶的作用下进行的。许多酶在进行催化反应时需要有些物质存在，使其激活或增加其活性，这些物质统称为激活剂（或活化剂）[8]。激活剂包括无机离子、辅酶或辅基以及一些大分子蛋白等。本试验所用的多酶激活剂含有蛋白质和一些中微量元素。本试验结果表明，小白菜施用多酶激活剂后，可增加小白菜的产量并改善小白菜品质，其中T2处理（800倍稀释液）增产和改善品质的效果最佳。

SOD、POD和CAT是植物抗氧化物酶，是防御膜脂过氧化的主要酶[9]，主要作用是清除植株体内的活性氧自由基，当其作用失衡时会导致膜脂过氧化产物的积累。SOD主要作用是将超氧化物催化分解为基态氧和H2O2，产生的H2O2主要由POD和CAT清除。GSH-Px 是生物体内重要的含硒抗氧化酶[10]，它能将脂质过氧化物和过氧化氢还原成相应的醇和水，并与VE协同作用，阻止脂质过氧化的链式反应，具有抗氧化功能，可保护细胞膜免受过氧化物的刺激和损伤。当GSH-Px的活性受抑制后，GSH-Px的底物——脂质过氧化物则在体内堆积，导致细胞损害[11]。本试验所用的多酶激活剂富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4种酶的受体，可激活这4种酶的活性。本试验研究发现，当叶面喷施该激活剂后，小白菜中这4种酶的活性均不同程度增加，其中CAT和GSH-Px活性最大增幅分别高达70.42%和104.33%。

综上所述，多酶激活剂对小白菜产量和品质具有明显的促进作用，并且对小白菜抗氧化酶（SOD、POD、CAT、GSH-Px）活性具有显著影响，本试验中以T2（800倍稀释液）处理效果最佳。

参考文献

[1] 汪家铭.新型肥料开发进展[J].化学工业，2012（9）：26-32.

[2] 梅绍祥，杨映环，何庆元.作物产量的遗传基础和实现产量突破的途径研究[J].安徽农业科学，2012，40（13）：7 665-

7 668.

[3] 王香芝.提高作物产量的途径[J].农技服务，2009，26（6）：12-13.

[4] 李合生.植物生理生化实验原理和技术[M].北京：高等教育出版社，2000.

[5] 黄爱缨，吴珍龄.水稻谷胱甘肽过氧化物酶的测定法[J].西南农业大学学报，1999，21（4）：24-27.

[6] 邓修惠，黄学梅，李伟道，等.改良DTNB比色法测定血清GSH-Px活力[J].重庆医学，2000，29（5）：445.

[7] 李军.钼蓝比色法测定还原型维生素C[J].食品科学，2000，

21（8）：42-45.

[8] 陈贵，谢甫绨，王海英，等.SN-924酶激活剂在大豆上的应用效果分析[J].沈阳农业大学学报，1999，30（2）：122-124.

[9] Apel K， Hirt H. Reactive oxygen species： metabolism， oxidative stress， and singnal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology， 2004（55）： 373-399.

[10] 宋增廷，姜宁，张爱忠，等.谷胱甘肽生物学功能的研究进展[J].饲料研究，2008（9）：25-27.

[11] Arthur J R. The glutathione peroxidases[J]. Celluar and Molecular Life Sciences， 2000（57）： 1 825-1 835.

摘 要：研究了不同浓度的多酶激活剂对小白菜生长、品质及抗氧化酶活性的影响。研究结果表明，多酶激活剂处理均可提高小白菜的地上部鲜、干质量、VC和可溶性蛋白含量，降低小白菜硝酸盐含量，增强超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化物酶（POD）、过氧化氢酶（CAT）和谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性，以T2处理（800倍液）效果最佳。

关键词：小白菜；多酶激活剂；生长；品质；抗氧化酶活性

我国农业生产已进入高产、优质、高效、生态、安全阶段[1]。目前，提高作物产量的主要途径是利用优良品种、增加化肥的投入、配合优化栽培措施以及用农药防治病虫害等[2，3]。随科学技术的发展，人们根据酶学理论，研制出适用于植物的酶激活剂，可以调控植物体内的某些生理生化反应，进而达到提高作物产量及改善品质的目的。本试验所采用的植物多酶激活剂具有增产、抗病、解毒和富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4种酶的受体等特点，试验旨在为多酶激活剂在蔬菜生产上的应用提供依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

试验于2014年3月20日至5月15日在华南农业大学园艺学院试验基地进行。供试小白菜为市售四季矮脚黑叶甜白菜。 试验所用多酶激活剂为华南农业大学资环学院提供，主要成分为蛋白质（≥6%），微量、中量元素（≥2%），pH值≥3.5。

2014年3月20日播种，以珍珠岩为基质进行穴盘育苗。当幼苗3叶1心时选生长一致的健壮幼苗移至栽培袋（直径28 cm，高24 cm）中，盆中基质为泥炭∶椰糠按2∶1（体积比）的比例配制。试验共设4个多酶激活剂浓度处理，分别为0（CK）、400（T1）、800（T2）、1 200（T3）倍液，移植5 d以后进行喷施处理，对照喷施清水，其余各处理分别喷施等量相应稀释倍数的多酶激活剂液，以后每隔10 d喷1次，共喷3次，喷雾时以叶片正反两面均匀布满小液滴为准。于最后一次喷施后3 d采收取样，测定相关生长和生理指标。

1.2 测定项目及方法

地上部鲜质量用天平称量。将地上部放入烘箱中，105℃杀青 15 min，然后在80℃烘干至恒重，用万分之一分析天平称取干质量；采用李合生[4]的方法测定硝酸盐含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量，POD、CAT和SOD活性，采用黄爱缨等[5]和邓修惠等[6]的方法测定谷胱甘肽过氧化物酶活性。采用李合生[4]和李军[7]的方法测定VC含量。

1.3 数据处理

试验所得数据结果采用SPSS 17.0软件进行统计分析，单因素分析采用Duncan's新复极差法，作图采用Microsoft Excel 2003软件。

2 结果与分析

2.1 多酶激活剂对小白菜生长的影响

由表1看出，与对照相比，小白菜地上部鲜质量随处理稀释倍数的加大呈先升高后降低的趋势。在T2处理时地上部鲜质量最高，比对照显著增加了33.63%；T1和T3处理小白菜地上部鲜质量分别比对照增加了17.17%和7.83%，但差异不显著。小白菜干质量与鲜质量变化趋势相同，地上部干质量在T2处理时最高，T3处理时最低，但各处理间差异均不显著。

2.2 多酶激活剂对小白菜营养品质的影响

由表2可知，与对照相比，各浓度处理均可降低小白菜硝酸盐含量，除T2处理显著降低40.21%外，T1和T3处理分别比对照降低了13.71%和9.71%，但差异均不显著。VC含量在T2处理时最高，比对照显著增加了76.19%，T1和T3处理也均高于对照，分别比对照增加52.38%和19.05%，但差异不显著。多酶激活剂处理的可溶性糖含量除T3处理显著低于对照外，其他处理与对照相比差异均不显著。多酶激活剂处理的小白菜可溶性蛋白含量均显著高于对照，其中T2处理含量最高，比对照增加了36.57%，T1和T3处理分别比对照增加了10.70%和11.94%。

2.3 多酶激活剂对小白菜体内抗氧化酶活性的影响

由表3可知，多酶激活剂各处理POD、SOD、CAT和GSH-Px活性均高于对照，但不同处理提高程度有所不同，除T1处理的POD活性和T3处理的SOD活性与对照相比差异不显著外，其余处理差异均显著。与对照相比，各处理的CAT活性增幅为47.11%～70.42%，T3处理的CAT活性最高，但与T2处理差异不显著。POD活性呈现先增加后降低趋势，但所有处理均高于对照，增幅为12.76%～25.54%，其中T2处理活性最高。各处理SOD活性与对照相比分别提高了17.00%、31.60%和1.48%，T2处理最高。多酶激活剂各处理均显著提高了小白菜GSH-Px活性，增幅为72.12%～104.33%，T1处理活性最大，但与T2、T3处理差异不显著。

3 讨论与结论

生物体内一切生理生化反应都是在酶的作用下进行的。许多酶在进行催化反应时需要有些物质存在，使其激活或增加其活性，这些物质统称为激活剂（或活化剂）[8]。激活剂包括无机离子、辅酶或辅基以及一些大分子蛋白等。本试验所用的多酶激活剂含有蛋白质和一些中微量元素。本试验结果表明，小白菜施用多酶激活剂后，可增加小白菜的产量并改善小白菜品质，其中T2处理（800倍稀释液）增产和改善品质的效果最佳。

SOD、POD和CAT是植物抗氧化物酶，是防御膜脂过氧化的主要酶[9]，主要作用是清除植株体内的活性氧自由基，当其作用失衡时会导致膜脂过氧化产物的积累。SOD主要作用是将超氧化物催化分解为基态氧和H2O2，产生的H2O2主要由POD和CAT清除。GSH-Px 是生物体内重要的含硒抗氧化酶[10]，它能将脂质过氧化物和过氧化氢还原成相应的醇和水，并与VE协同作用，阻止脂质过氧化的链式反应，具有抗氧化功能，可保护细胞膜免受过氧化物的刺激和损伤。当GSH-Px的活性受抑制后，GSH-Px的底物——脂质过氧化物则在体内堆积，导致细胞损害[11]。本试验所用的多酶激活剂富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4种酶的受体，可激活这4种酶的活性。本试验研究发现，当叶面喷施该激活剂后，小白菜中这4种酶的活性均不同程度增加，其中CAT和GSH-Px活性最大增幅分别高达70.42%和104.33%。

综上所述，多酶激活剂对小白菜产量和品质具有明显的促进作用，并且对小白菜抗氧化酶（SOD、POD、CAT、GSH-Px）活性具有显著影响，本试验中以T2（800倍稀释液）处理效果最佳。

参考文献

[1] 汪家铭.新型肥料开发进展[J].化学工业，2012（9）：26-32.

[2] 梅绍祥，杨映环，何庆元.作物产量的遗传基础和实现产量突破的途径研究[J].安徽农业科学，2012，40（13）：7 665-

7 668.

[3] 王香芝.提高作物产量的途径[J].农技服务，2009，26（6）：12-13.

[4] 李合生.植物生理生化实验原理和技术[M].北京：高等教育出版社，2000.

[5] 黄爱缨，吴珍龄.水稻谷胱甘肽过氧化物酶的测定法[J].西南农业大学学报，1999，21（4）：24-27.

[6] 邓修惠，黄学梅，李伟道，等.改良DTNB比色法测定血清GSH-Px活力[J].重庆医学，2000，29（5）：445.

[7] 李军.钼蓝比色法测定还原型维生素C[J].食品科学，2000，

21（8）：42-45.

[8] 陈贵，谢甫绨，王海英，等.SN-924酶激活剂在大豆上的应用效果分析[J].沈阳农业大学学报，1999，30（2）：122-124.

[9] Apel K， Hirt H. Reactive oxygen species： metabolism， oxidative stress， and singnal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology， 2004（55）： 373-399.

[10] 宋增廷，姜宁，张爱忠，等.谷胱甘肽生物学功能的研究进展[J].饲料研究，2008（9）：25-27.

[11] Arthur J R. The glutathione peroxidases[J]. Celluar and Molecular Life Sciences， 2000（57）： 1 825-1 835.

摘 要：研究了不同浓度的多酶激活剂对小白菜生长、品质及抗氧化酶活性的影响。研究结果表明，多酶激活剂处理均可提高小白菜的地上部鲜、干质量、VC和可溶性蛋白含量，降低小白菜硝酸盐含量，增强超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化物酶（POD）、过氧化氢酶（CAT）和谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性，以T2处理（800倍液）效果最佳。

关键词：小白菜；多酶激活剂；生长；品质；抗氧化酶活性

我国农业生产已进入高产、优质、高效、生态、安全阶段[1]。目前，提高作物产量的主要途径是利用优良品种、增加化肥的投入、配合优化栽培措施以及用农药防治病虫害等[2，3]。随科学技术的发展，人们根据酶学理论，研制出适用于植物的酶激活剂，可以调控植物体内的某些生理生化反应，进而达到提高作物产量及改善品质的目的。本试验所采用的植物多酶激活剂具有增产、抗病、解毒和富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4种酶的受体等特点，试验旨在为多酶激活剂在蔬菜生产上的应用提供依据。

1 材料与方法

1.1 试验设计

试验于2014年3月20日至5月15日在华南农业大学园艺学院试验基地进行。供试小白菜为市售四季矮脚黑叶甜白菜。 试验所用多酶激活剂为华南农业大学资环学院提供，主要成分为蛋白质（≥6%），微量、中量元素（≥2%），pH值≥3.5。

2014年3月20日播种，以珍珠岩为基质进行穴盘育苗。当幼苗3叶1心时选生长一致的健壮幼苗移至栽培袋（直径28 cm，高24 cm）中，盆中基质为泥炭∶椰糠按2∶1（体积比）的比例配制。试验共设4个多酶激活剂浓度处理，分别为0（CK）、400（T1）、800（T2）、1 200（T3）倍液，移植5 d以后进行喷施处理，对照喷施清水，其余各处理分别喷施等量相应稀释倍数的多酶激活剂液，以后每隔10 d喷1次，共喷3次，喷雾时以叶片正反两面均匀布满小液滴为准。于最后一次喷施后3 d采收取样，测定相关生长和生理指标。

1.2 测定项目及方法

地上部鲜质量用天平称量。将地上部放入烘箱中，105℃杀青 15 min，然后在80℃烘干至恒重，用万分之一分析天平称取干质量；采用李合生[4]的方法测定硝酸盐含量、可溶性糖含量、可溶性蛋白含量，POD、CAT和SOD活性，采用黄爱缨等[5]和邓修惠等[6]的方法测定谷胱甘肽过氧化物酶活性。采用李合生[4]和李军[7]的方法测定VC含量。

1.3 数据处理

试验所得数据结果采用SPSS 17.0软件进行统计分析，单因素分析采用Duncan's新复极差法，作图采用Microsoft Excel 2003软件。

2 结果与分析

2.1 多酶激活剂对小白菜生长的影响

由表1看出，与对照相比，小白菜地上部鲜质量随处理稀释倍数的加大呈先升高后降低的趋势。在T2处理时地上部鲜质量最高，比对照显著增加了33.63%；T1和T3处理小白菜地上部鲜质量分别比对照增加了17.17%和7.83%，但差异不显著。小白菜干质量与鲜质量变化趋势相同，地上部干质量在T2处理时最高，T3处理时最低，但各处理间差异均不显著。

2.2 多酶激活剂对小白菜营养品质的影响

由表2可知，与对照相比，各浓度处理均可降低小白菜硝酸盐含量，除T2处理显著降低40.21%外，T1和T3处理分别比对照降低了13.71%和9.71%，但差异均不显著。VC含量在T2处理时最高，比对照显著增加了76.19%，T1和T3处理也均高于对照，分别比对照增加52.38%和19.05%，但差异不显著。多酶激活剂处理的可溶性糖含量除T3处理显著低于对照外，其他处理与对照相比差异均不显著。多酶激活剂处理的小白菜可溶性蛋白含量均显著高于对照，其中T2处理含量最高，比对照增加了36.57%，T1和T3处理分别比对照增加了10.70%和11.94%。

2.3 多酶激活剂对小白菜体内抗氧化酶活性的影响

由表3可知，多酶激活剂各处理POD、SOD、CAT和GSH-Px活性均高于对照，但不同处理提高程度有所不同，除T1处理的POD活性和T3处理的SOD活性与对照相比差异不显著外，其余处理差异均显著。与对照相比，各处理的CAT活性增幅为47.11%～70.42%，T3处理的CAT活性最高，但与T2处理差异不显著。POD活性呈现先增加后降低趋势，但所有处理均高于对照，增幅为12.76%～25.54%，其中T2处理活性最高。各处理SOD活性与对照相比分别提高了17.00%、31.60%和1.48%，T2处理最高。多酶激活剂各处理均显著提高了小白菜GSH-Px活性，增幅为72.12%～104.33%，T1处理活性最大，但与T2、T3处理差异不显著。

3 讨论与结论

生物体内一切生理生化反应都是在酶的作用下进行的。许多酶在进行催化反应时需要有些物质存在，使其激活或增加其活性，这些物质统称为激活剂（或活化剂）[8]。激活剂包括无机离子、辅酶或辅基以及一些大分子蛋白等。本试验所用的多酶激活剂含有蛋白质和一些中微量元素。本试验结果表明，小白菜施用多酶激活剂后，可增加小白菜的产量并改善小白菜品质，其中T2处理（800倍稀释液）增产和改善品质的效果最佳。

SOD、POD和CAT是植物抗氧化物酶，是防御膜脂过氧化的主要酶[9]，主要作用是清除植株体内的活性氧自由基，当其作用失衡时会导致膜脂过氧化产物的积累。SOD主要作用是将超氧化物催化分解为基态氧和H2O2，产生的H2O2主要由POD和CAT清除。GSH-Px 是生物体内重要的含硒抗氧化酶[10]，它能将脂质过氧化物和过氧化氢还原成相应的醇和水，并与VE协同作用，阻止脂质过氧化的链式反应，具有抗氧化功能，可保护细胞膜免受过氧化物的刺激和损伤。当GSH-Px的活性受抑制后，GSH-Px的底物——脂质过氧化物则在体内堆积，导致细胞损害[11]。本试验所用的多酶激活剂富含SOD、POD、CAT和GSH-Px 4种酶的受体，可激活这4种酶的活性。本试验研究发现，当叶面喷施该激活剂后，小白菜中这4种酶的活性均不同程度增加，其中CAT和GSH-Px活性最大增幅分别高达70.42%和104.33%。

综上所述，多酶激活剂对小白菜产量和品质具有明显的促进作用，并且对小白菜抗氧化酶（SOD、POD、CAT、GSH-Px）活性具有显著影响，本试验中以T2（800倍稀释液）处理效果最佳。

参考文献

[1] 汪家铭.新型肥料开发进展[J].化学工业，2012（9）：26-32.

[2] 梅绍祥，杨映环，何庆元.作物产量的遗传基础和实现产量突破的途径研究[J].安徽农业科学，2012，40（13）：7 665-

7 668.

[3] 王香芝.提高作物产量的途径[J].农技服务，2009，26（6）：12-13.

[4] 李合生.植物生理生化实验原理和技术[M].北京：高等教育出版社，2000.

[5] 黄爱缨，吴珍龄.水稻谷胱甘肽过氧化物酶的测定法[J].西南农业大学学报，1999，21（4）：24-27.

[6] 邓修惠，黄学梅，李伟道，等.改良DTNB比色法测定血清GSH-Px活力[J].重庆医学，2000，29（5）：445.

[7] 李军.钼蓝比色法测定还原型维生素C[J].食品科学，2000，

21（8）：42-45.

[8] 陈贵，谢甫绨，王海英，等.SN-924酶激活剂在大豆上的应用效果分析[J].沈阳农业大学学报，1999，30（2）：122-124.

[9] Apel K， Hirt H. Reactive oxygen species： metabolism， oxidative stress， and singnal transduction[J]. Annual Review of Plant Biology， 2004（55）： 373-399.

[10] 宋增廷，姜宁，张爱忠，等.谷胱甘肽生物学功能的研究进展[J].饲料研究，2008（9）：25-27.

[11] Arthur J R. The glutathione peroxidases[J]. Celluar and Molecular Life Sciences， 2000（57）： 1 825-1 835.