李强 赵明 郝珉
病毒性脑炎是儿童发病率较高的疾病之一, 严重的病例可留有神经系统后遗症, 甚至死亡。致残率、死亡率高, 危害极大。循证医学证实, 亚低温治疗可以有效降低重症病毒性脑炎患儿的致残率和死亡率。而基质金属蛋白酶(MMPs)可能在重症病毒性脑炎发病过程中通过破坏血脑屏障参与脑损伤[1-3]。作者通过观察亚低温治疗重症病毒性脑炎过程中患儿血清和脑脊液MMP-2、MMP-9的浓度, 探寻其可能的治疗机理, 报告如下。
1.1 一般资料 选取2008年1月~2013年11月在本市3所医院住院治疗的120例重症病毒性脑炎患儿作为研究对象, 均符合《诸福棠实用儿科学》第7版中的相关诊断标准。其中手足口病脑炎58例, 单纯疱疹病毒脑炎17例, 流行性腮腺炎病毒脑炎13例, 其他病毒脑炎32例。所有患儿随机分为对照组和实验组, 每组60例。两组患儿的年龄、性别、病因构成及疾病严重程度比较差异无统计学意义(P>0.05), 具有可比性。所有患儿入组前均征得患儿家长同意。
1.2 方法 所有患儿均给予抗感染、退热、降颅压等对症支持治疗, 必要时给予呼吸机辅助呼吸等生命支持。实验组的患儿在常规治疗的基础上, 应用YZK-1076型医用智能低温治疗仪对头部进行亚低温治疗。并用MC-510型欧姆龙红外线耳式温度计监测鼓膜温度, 使之保持在33~35.5℃之间。
选择性头部亚低温治疗5 d后, 撤掉治疗仪, 使头部自然升温。速度控制在每4小时1℃以内, 24 h升至正常温度为宜。所有患儿分别于治疗前、治疗第3天和治疗第7天穿刺取静脉血和脑脊液。标本取出后置室温2 h, 以1000×g离心20 min, 取上清液, 使用0.1 M的PBS稀释(pH值在7.0~7.2之间)100倍。采用酶联免疫吸附(ELISA)法测定血清和脑脊液中MMP-2、MMP-9的含量。试剂盒购自厦门慧嘉生物科技有限公司, 严格按照说明书要求进行检测。
1.3 统计学方法 应用SPSS10.0软件分析数据。计量资料以均数±标准差(±s)表示, 采用t检验;计数资料采用χ2检验。P<0.05为差异具有统计学意义。
2.1 两组患儿血清和脑脊液中MMP-2浓度的比较 所有患儿血清和脑脊液中MMP-2的浓度在治疗前较高, 第3天达到高峰, 第7天明显下降。实验组和对照组患儿血清和脑脊液中MMP-2的浓度在治疗前差异无统计学意义(P>0.05)。经过亚低温疗法干预后, 实验组患儿血清和脑脊液中MMP-2的浓度在第3天和第7天均明显低于对照组患儿(P<0.01)。见表1, 2。
2.2 两组患儿血清和脑脊液中MMP-9浓度的比较 同MMP-2相似, 所有患儿血清和脑脊液中MMP-9的浓度也有在治疗前较高、3天达到高峰、7天明显下降的趋势。实验组和对照组患儿血清和脑脊液中MMP-9的浓度在治疗前差异无统计学意义(P>0.05)。经过亚低温疗法的治疗, 实验组患儿血清和脑脊液中MMP-9的浓度在第3天和第7天均明显低于对照组患儿(P<0.01)。见表3, 4。
表1 两组患儿血清中MMP-2浓度的比较( ±s, ng/ml)
表1 两组患儿血清中MMP-2浓度的比较( ±s, ng/ml)
注:与对照组比较, aP<0.01
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表2 两组患儿脑脊液中MMP-2浓度的比较( ±s, ng/ml)
表2 两组患儿脑脊液中MMP-2浓度的比较( ±s, ng/ml)
注:与对照组比较, aP<0.01
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表3 两组患儿血清MMP-9浓度的比较( ±s, pg/ml)
表3 两组患儿血清MMP-9浓度的比较( ±s, pg/ml)
注:与对照组比较, aP<0.01
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表4 两组患儿脑脊液MMP-9浓度的比较( ±s, pg/ml)
表4 两组患儿脑脊液MMP-9浓度的比较( ±s, pg/ml)
注:与对照组比较, aP<0.01
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在重症病毒性脑炎的发病过程中, 病毒感染引发脑组织和毛细血管的炎症反应, 使血脑屏障受损, 通透性增加, 造成脑水肿, 进而损害脑细胞, 使其毒性水肿甚至死亡。血管基底膜上的Ⅳ型胶原、层粘连蛋白和纤维粘连蛋白等细胞外基质(ECM)是构成血脑屏障的重要结构。MMPs是一组蛋白水解酶家族, 依赖钙、锌离子维持稳定, 可分解ECM。它们在机体内与其内源性抑制剂TIMPs以非共价键形式结合成复合物, 处于失活状态。当脑组织出现炎症反应时, 氧自由基等缺氧代谢产物可以促进复合物分解, 激活MMPs。MMPs通过分解细胞外基质破坏了血脑屏障的完整性, 导致其通透性增加。除了引发脑水肿外, 还便于活化白细胞的趋化运动, 使炎症加重[4,5]。研究发现, 所有重症病毒性脑炎患儿血清和脑脊液中的MMP-2、MMP-9随着病情的变化在第3天达到高峰,然后降低。表明MMPs在重症病毒性脑炎脑损伤中发挥作用。
研究表明, 亚低温治疗可能通过以下几个方面来保护脑细胞、减少脑损伤:①减少脑细胞的耗氧, 减少乳酸、氧自由基等细胞缺氧代谢产物的生成及在脑组织中的堆积;②保护受损的血脑屏障, 降低其通透性, 减轻脑水肿;③抑制炎症因子的释放从而抑制炎症反应。感染后的组织可以通过释放炎症因子来杀灭病原体。但如果炎症因子过多, 也会损伤组织, 加重组织的缺氧、缺血, 并造成再灌注损伤。亚低温治疗可抑制白细胞介素(IL)-1、6、8和肿瘤坏死因子-α(TNF-α)等炎症因子的释放, 减少炎症损伤;④抑制细胞毒素的释放。脑损伤可以促使细胞释放兴奋性神经递质(如谷氨酸等)、乙酰胆碱等细胞毒素, 造成惊厥, 加重脑损伤。亚低温可以抑制这些细胞毒素生成和释放;⑤抑制钙离子的内流。钙离子在脑细胞内的堆积可造成脑细胞坏死。亚低温治疗可以降低钙离子内流速度, 降低其在脑细胞中的浓度;⑥抑制凋亡基因的表达, 减少脑细胞凋亡;⑦调节脑组织内各种酶和蛋白质的表达, 减轻损伤, 促进修复。通过本实验可以看到, 实验组的患儿的MMP-2、MMP-9在治疗第3天、第7天的血清和脑脊液中的浓度均显著低于对照组患儿(P<0.01)。表明亚低温治疗降低了血清和脑脊液中MMPs,减少其损伤血脑屏障, 从而减轻脑水肿。亚低温治疗可能通过抑制氧自由基、钙离子或其他炎症因子来抑制MMPs的活性 , 从而减少脑损伤[6]。
综上所述, 重症病毒性脑炎患儿血清和脑脊液中的MMP-2和MMP-9在脑损伤过程中起重要作用, 而亚低温治疗可以有效抑制其浓度, 从而减轻损害、促进修复。
[1]李红云, 韩迪, 纪晓军.亚低温治疗对单纯疱疹病毒性脑炎早期康复的影响.中华物理医学与康复杂志, 2009, 31(1):51-54.
[2]Barber PA, Rushforth D, Agrawal S, et al.Infrared optical imaging of matrix metalloproteinases (MMPs)up regulation following ischemia reperfusion is ameliorated by hypothermia.BMC Neurosci, 2012(13):76.
[3]李红云, 韩迪, 纪晓军.亚低温治疗单纯疱疹病毒性脑炎.中华急诊医学杂志, 2009, 18(3):306-308.
[4]张传新, 贾国存, 陈国洪, 等.结核性脑膜炎患儿脑脊液中IL-17和MMP-9的水平及意义.中国实用医刊, 2013, 40(18):25-26.
[5]李小鹏, 张伦理, 黄呈辉.金属基质蛋白酶-9在中枢神经系统感染患者脑脊液中的表达水平及意义.中华传染病杂志, 2012,30(3):141-145.
[6]郝珉, 李好兰, 宋文, 等.亚低温治疗对新生儿缺氧缺血性脑病血清MMP-9水平的影响.中国中医药现代远程教育, 2012,10(23):52-53.