蔡芳芳 庄 强 朱融和 梁 彬 俞 康 江松福
消化道是急性移植物抗宿主病(acute graft-versus-host disease,aGVHD)的重要靶器官,也是重要的aGVHD放大系统[1]。如何早期评估肠道功能屏障,早期阻断这一始动环节,减少aGVHD的发生显得至关重要。目前临床上仍缺乏安全有效的检测手段。本研究采用小鼠异基因骨髓移植模型,研究aGVHD肠道通透性及其严重程度的关系,旨在为早期肠道aGVHD提供较敏感的检测指标。
1.aGVHD小鼠实验模型[2]:SPF级雌性 BALB/C(H-2d)小鼠,6~8周龄,体重18~22g。实验动物均购自温州医学院,许可证号:SYXK(浙)2005-0061。随机分为单纯照射组(对照组)和aGVHD移植后第7、11和15天组,每组8只。TBI组接受直线加速器全身照射(总剂量:8.0Gy,照射距离:50cm,照射时间:8min,剂量率:1.0Gy/min)。对照组只接受TBI照射,与实验组同步喂养。
2.仪器:直线加速器(VARIAN CL2300C/D,美国);美国Agilent 1100高效液相色谱系统;美国 Agilent INTERFACE 35900E信号转换器;法国SEDERE SEDEX75蒸发光散色检测器;NH2色谱柱(Agilent,美国);7500 Real Time PCR System(ABI公司,美国);台式高速离心机 (BECKMAN公司,美国)。
3.试剂:乳果糖标准品和甘露醇标准品(色谱纯,Sigma公司);乙腈(色谱纯,Fisher Scientific公司);异丙醇(色谱纯,天津四友试剂公司);甲醇(分析纯,天津四友试剂公司);超纯水(Millipore公司,法国)。
4.给药方法及尿样采集:受试前所有小鼠禁食8~12h,取0.5ml乳果糖/甘露醇混合液(含乳果糖60mg/ml,甘露醇40mg/ml),用灌胃器插小鼠食管上端缓慢灌注。收集6h尿液,记总量,将尿样置于-20℃保存,待尿样收齐后检测。分别采集对照组小鼠和aGVHD后第7、11和15天小鼠的6h尿液。
5.尿样预处理:取冰冻贮存的尿液样品解冻、摇匀,将尿样离心(12000r/min)30min,以去除尿中的沉淀物。再经0.22μm滤膜去蛋白颗粒。用超声波脱气20min后上机分析待检。
6.色谱条件参考文献[3]的方法:色谱柱:Agilent NH2色谱柱(4.6mm×250mm×5um),柱温为30℃,流动相为乙腈:水(83∶17),流速为 1.0ml/min,进样量为 20μl,ELSD 检测器漂移管温度:40℃;载气压力:3.0bar;电信号放大系数:4。
7.肠组织病理改变及评分标准:光镜下观察组织学变化,评价小肠aGVHD程度,并进行相关性分析。小肠aGVHD严重程度按Thomas GVHD病理组织学分级标准判定[4]。0度(0分):肠黏膜绒毛正常。Ⅰ度(1分):肠黏膜隐窝腺体扩张,个别上皮细胞坏死。Ⅱ度(2分):同Ⅰ度,肠腺坏死脱落。Ⅲ度(3分):同Ⅱ度,灶性黏膜裸露。Ⅳ度(4分):弥漫性黏膜裸露。每个时间点选取清晰的切片8张,每张切片于光镜下(×400)随机取5个视野,由有经验的病理科医师进行盲法评分。
1.肠道通透性比较:肠道通透性以乳果糖和甘露醇排出率的比值(L/M)表示。肠道aGVHD后7、11和15天组尿中乳果糖和甘露醇排出率的比值(L/M)均明显高于对照组,分别为0.509±0.353,0.717±0.012,0.762 ±0.014,0.291 ±0.053,差异有统计学意义(P<0.05),并随着时间的延长,L/M比值逐渐增高。
2.移植后肠道组织病理变化及aGVHD严重程度评分:异基因移植组根据存活期、外周血白细胞计数、临床表现及病理检查等均可在相对集中的时间内(8~15天)观察到典型的aGVHD改变。第7、11天可见肠道病理GVHDⅠ~Ⅱ度改变,肠黏膜上皮细胞轻中度坏死脱落,黏膜下有少量淋巴细胞浸润。第11~15天可见肠道病理GVHDⅡ~Ⅲ度改变,黏膜上皮坏死脱落,黏膜下层充血水肿,黏膜下层与固有层有较多淋巴细胞浸润,隐窝细胞有变性坏死,腺体有淋巴细胞浸润;皮肤可见散在的炎细胞;肺泡壁可见充血、渗出、淋巴细胞浸润。未见明显的Ⅳ度改变。移植后第7天,即发现肠道黏膜上皮细胞有轻度坏死脱落,黏膜下有少量淋巴细胞浸润,移植后第11天肠道黏膜损伤程度进一步加重,肠道aGVHD呈上升趋势,第15天时损伤达到最重,肠道aGVHD严重程度评分大幅度上升。aGVHD后7、11和15天组aGVHD严重程度评分较对照组显著增加(P<0.05),分别为0.810±0.259,1.940 ±0.176,2.750 ±0.267,0.000±0.000。
3.aGVHD各组L/M与肠道aGVHD严重程度相关性分析:经 Spearman分析,尿 L/M比值与肠道aGVHD严重程度呈显著正相关(r=0.903,P<0.01)。随着肠道通透性的增加,肠道aGVHD严重程度越重。
减少严重GVHD发生和降低移植相关死亡的关键在于预防GVHD的发生。消化道是aGVHD重要的靶器官之一,肠道屏障功能障碍、肠内细菌及内毒素移位是导致肠道aGVHD的一个重要因素,严重影响了HSCT的预后[5,6]。由于肠黏膜通透性变化可准确反映肠屏障功能状态,对预示疾病过程中转归具有主要意义[7,8]。所以,临床上对 aGVHD 患者如能进行肠道通透性监测,将对减少肠源性感染的发生并及早采取防治对策,降低病死率有十分重要的作用。
肠黏膜屏障主要由肠黏膜上皮细胞和细胞间紧密连接构成。以乳果糖和甘露醇作为探针能够检测肠通透性的改变。通常情况下,甘露醇分子质量小,可经跨膜途径以简单扩散的方式被动吸收,而乳果糖分子质量大,不能穿过泡膜和细胞间紧密连接,只有极少量被吸收,当肠黏膜受损时,高分子乳果糖则可通过细胞膜旁径路被大量吸收,使L/M比值增加,故测定尿中L/M比值可间接准确地反映肠通透性改变,广泛用于肠黏膜通透性的评估,而通透性改变则可反映肠黏膜的损害程度[9]。庄强等[3]采用 HPLC-ELSD检测小鼠尿液中乳果糖和甘露醇含量,具有简便、专一灵敏、重复性好、准确可靠等特点,可用于aGVHD小鼠肠道通透性的测定和监测。本研究通过建立 aGVHD小鼠模型,采用 HPLC-ELSD检测aGVHD组尿乳果糖和甘露醇的排出量,结果发现aGVHD后各组L/M值较对照组增加,且随着时间的延长而不断增加,与文献[10]报道一致。
研究结果表明,肠道aGVHD后肠黏膜结构遭到严重破坏,导致肠黏膜屏障功能减弱,使细菌的降解产物如 LPS进入血液,引发“细胞因子风暴”,是aGVHD致靶器官各种病理损害的重要原因之一[5,6]。本研究通过对肠道通透性与肠道aGVHD严重程度相关性分析结果表明,aGVHD后肠黏膜通透性与肠道aGVHD严重程度呈显著相关性,即肠道通透性增加,肠道aGVHD严重程度越重。这一结果提示,肠道通透性与肠道损伤程度有着密切的关系。aGVHD引起肠道黏膜细胞损伤、黏膜通透性增加。
检测尿中L/M比值变化方法简单易行,为无创伤指标,克服了常规通过胃肠镜活检判断aGVHD肠道病变严重程度的缺陷,能动态反映肠黏膜屏障功能状况,在肠道aGVHD的评估中具有临床应用价值。它及时在早期发现并判断肠屏障的受损程度,为降低aGVHD的发生率和病死率提供了有力的无创指标。
1 Johansson JE,Ekman T.Gut toxicity during hemopoietic stem cell transplantation may predict acute graft-versus-host disease severity in patients[J].Dig Dis Sci,2007,52(9):2340-2345
2 蔡芳芳,俞康,江松福.小鼠异基因骨髓移植急性移植物抗宿主病模型的建立[J].温州医学院报,2009,39(4):320-324
3 庄强,俞康,江松福.全身照射小鼠模型肠道通透性HPLC-ELSD检测方法的建立[J].温州医学院报,2010,40(3):224-228
4 何长民,石炳毅.器官移植免疫学[M].北京:人民军医出版社,1995:351-368
5 Ferrara JL,Reddy P.Pathophysiology of graft-versus-host disease[J].Semin Hematol,2006,43(1):3-10
6 Copelan EA.Hematopoietic stem-cell transplantation[J].N Engl J Med,2006,354(17):1813-1826
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8 Lunn PG,Northrop-Clewes CA,Downes RM.Intestinal permeability,mucosal,and growth fatering in Gambian infants[J].Lancet,1991,338(8772):907-910
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10 Melichar B,Hyspler R,Dragounová E,et al.Gastrointestinal permeability in ovarian cancer and breast cancer patients treated with paclitaxel and platinum[J].BMC Cancer,2007,7:155