赵 琳 贾鲲鹏 史 娟 苗乃周* 王 璐
(1延安大学医学院人体解剖学教研室;2延安大学附属医院,陕西 716000;3第四军医大学人体解剖与组织胚胎学教研室,西安 710032)
增食欲素(orexin)是由下丘脑外侧区(later hypothalamus area,LHA)合成和分泌的具有神经兴奋作用的多肽,是1998年Sakurai等[1]在大鼠脑内发现的,它包括两个单体orexin-A和orexin-B,orexin-B为一线性多肽,而orexin-A具有二硫键环化多肽,具有更稳定的生化结构,在生物学重要性方面比orexin-B更重要。近年的研究表明orexin系统,尤其是orexin-A,具有广泛的生理作用,参与摄食、能量代谢、睡眠-觉醒等生理活动的调节[2]。实验结果显示脑室内注射orexin-A能明显增加实验大鼠的摄食行为,表明orexin-A与摄食密切相关。研究者常采用禁食来研究orexin的激活和变化规律,但禁食多长时间效果最好并无报道。因此本实验采用免疫组织化学染色和灰度测量方法,观察禁食不同时段大鼠下丘脑穹窿周区orexin-A的表达。
实验采用Sprague Dawley大鼠(由延安大学医学院实验动物中心提供)24只(雄性,体重150-180g),随即分为4组,每组6只。一组为正常对照组,开始禁食时即灌注固定。另外三组分别禁食24h,48h和72h,动物自由饮水,存活相应的时间段后灌注固定。
包括毛色、皮肤颜色、活动情况和反应灵敏度等,禁食组大鼠分别于禁食开始及禁食结束时各称体重一次。
各组大鼠戊巴比妥钠(80mg/kg)腹腔注射麻醉,迅速开胸暴露心脏,经升主动脉灌注100ml生理盐水,继以400ml含4%多聚甲醛的0.1mol/L磷酸盐缓冲液(pH 7.4)灌注固定,持续1h左右后,取脑,置入含30%蔗糖的PB中4℃过夜。待脑组织沉底后取下丘脑部分行冰冻切片,片厚30μm。
切片经0.01mol/L PBS(pH 7.4)常规漂洗后,入0.3%H2O2以消除内源性过氧化物酶,正常山羊血清封闭液(博士德公司)室温封闭1h,再依次进行以下处理:小鼠抗orexin-A IgG(1∶1000,Abcam),室温过夜;生物素化驴抗小鼠血清(1∶200,Chemicon),室温孵育4-6h;AB复合物(1∶200,Vector),室温孵育1-2h。以上各步之间均用PBS充分漂洗切片。以上抗体除AB复合物用含0.3%Triton X-100的PBS稀释外,其余均用含0.25%角叉菜胶,0.3%Triton X-100,0.05%NaN3和3%山羊血清的PBS稀释。最后切片常规DAB呈色、裱片、乙醇梯度脱水、二甲苯透明、封片后,明视野显微镜下观察、计数和拍照。
各只动物orexin-A阳性神经元计数和灰度值测量均选取3张典型切片进行,免疫组织化学染色结果用图像分析系统(Image-Pro Plus)进行处理。用photoshop分析工具对神经元内orexin-A免疫阳性产物的灰度进行测量。所有数据均用±s表示,采用SPSS13.0软件,行t检验,P<0.05表示差异有统计学意义。
动物在禁食期间未出现明显异常,禁食24h和禁食48h大鼠毛色正常,无脱毛,反应能力、活动情况等比较正常。禁食72h组大鼠在禁食末期懒于活动,对刺激反应迟钝,毛色灰暗,无光泽,但无脱毛。大鼠体重随禁食时间的延长而逐渐降低,各组大鼠禁食前后体重变化有统计学差异(P<0.01)(表1)。
表1 各组大鼠禁食前后体重变化(±s)Table1 The changes of the body weight of rats before and after fasting in each group(±s)
表1 各组大鼠禁食前后体重变化(±s)Table1 The changes of the body weight of rats before and after fasting in each group(±s)
*P<0.01vs before fasting
组别Groups 禁食前体重(g) The body weight before fasting 禁食后体重(g) The body weight after fasting 24h 173.35±9.24 165.42±8.96*48h 175.25±8.54 160.88±8.62*72h 172.54±10.04 144.25±9.84*
对照组和禁食组的orexin-A的免疫阳性产物分布相似,主要分布于穹隆周区、下丘脑腹外侧、背侧、后侧区,以穹窿周区最为密集(图1)。细胞呈卵圆形和三角形,胞体及突起轮廓清楚。各只动物orexin-A阳性神经元计数,均选取穹隆周区阳性产物最为密集的3张进行,计算出阳性细胞均数。禁食24h、48h和72h组orexin-A神经元计数明显多于对照组(P<0.05),但不同禁食组间orexin-A神经元计数比较没有统计学差异(P>0.05)(图1)。
图1 Orexin-A在下丘脑穹窿周区的表达,A.对照组;B.禁食24h;C.禁食48h;D.禁食72h;3v第三脑室;f穹窿.标尺=200μm.Fig.1 Immunohistochemical staining of orexin-A in perifornical hypothalamus,Bar=200μm.A.control group;B.fasting for 24h;C.fasting for 48h;D.fasting for 72h.3V:the third ventricle;f:fornix.
Orexin-A阳性神经元平均灰度值分析结果显示,禁食24h组的灰度值与对照组相比有所下降,禁食48h组的灰度值最低,显示orexin-A免疫染色强度最高;禁食72h组的灰度值有所回升(图2)。禁食48h组与正常对照组、禁食24h和禁食72h组灰度值比较有明显变化(P<0.05)(图2)。
图2 各组间orexin-A阳性神经元灰度值比较Fig.2 Comparison of grey value for orexin-A immunopositive neurons in four different groups.Con,control;24,48,72h,fasting for 24h,48 h,72hgroups respectively.*P<0.05,compared with control,24h,72hgroup respectively.
下丘脑是重要的皮质下中枢,是动物调节摄食活动的关键部位[3]。Orexin神经元胞体对称地,不连续地分布于下丘脑背侧、后侧、外侧及穹隆周区。应用脑区损伤的研究证实:内侧区的弓状核(arcuate hypothalamic nucleus,ARC)、腹内侧核(VMN)、背内侧核(dorsomedial hypothalamic nucleus,DMN)、室旁 核 (paraventricular hypothalamic nucleus,PVN)、视 交 叉 上 核 (suprachiasmatic nucleus,SChN)和下丘脑外侧区(lateral hypothalamic area,LHA)皆可影响摄食行为,是下丘脑食欲调节网络的“网络中心”[4]。摄食调节网络的协调性摄食活动是维持动物生命的基本生理活动。下丘脑外侧区是摄食中枢,这个部位损伤可抑制进食,使体重下降,这表明该区域是调节进食和能量平衡的关键部位。
禁食可上调下丘脑orexin mRNA,也上调orexin免疫反应神经元中cAMP反应元件结合蛋白的磷酸化形式,显示了orexin对摄食状态的功能性应答。用orexin受体拮抗剂能使大鼠摄食量显著减少,也能抑制orexin引起的增食效应[5],表明orexin是一种促进摄食的增食因子。进一步的功能学实验表明,给大鼠侧脑室、DMN、PVN、LHA和穹隆周区注射orexin-A,可显著提高其进食量,并可引发动物与期待摄食相关的行为学表现[6,7]。Mondal等[8]观察到禁食48h后,与对照组比较,大鼠下丘脑外侧orexin-A含量上升。本文选择了分别禁食24h、48h和72h三个时间段来研究下丘脑orexin-A的表达变化,并进行对比分析。
本实验中,所有大鼠禁食结束后全部存活,禁食期间,各组大鼠无特殊异常表现,其中禁食72h组大鼠,在禁食末期懒于活动,对刺激反应迟钝,毛色灰暗,无光泽。可能是动物在饥饿状态下维持基本生命功能的适应性反应。由于没有能量补充,大鼠体重随禁食时间的延长而逐渐降低,平均每24h减少7-10g,说明禁食可以明显降低大鼠体重。Orexin-A的免疫阳性产物主要分布于穹隆周区、下丘脑腹外侧、背侧、后侧区,以穹窿周区最为密集。禁食24h、48h和72h组orexin-A神经元计数明显多于正常对照组(P<0.05),说明禁食刺激促进了orexin-A的表达,但不同禁食组间orexin-A神经元计数比较没有明显改变。禁食时,下丘脑“摄食中枢”及相关核团的活动因饥饿明显增强,相应的促食欲因子的合成、运输和释放也应明显增加。进一步的灰度测量显示,禁食48horexin-A阳性神经元灰度值最低,免疫染色强度最高,与对照组、禁食24h和禁食72h组比较有显著统计学差异。禁食24h、禁食72 h组和对照组灰度值相近,但之间比较并没有统计学意义。说明禁食48h对于orexin-A神经元的活化可能是一个比较适宜的刺激。Orexin-A系统虽然胞体分布局限,但其纤维向全脑广泛投射,orexin-A可能通过这种广泛脑区的协同作用,参与摄食及能量代谢的调节。
[1]Sakurai T,Amemiya A,Ishii M,et al.Orexins and orexin receptors:a family of hypothalamic neuropeptides and G protein-coupled receptors that regulate feeding behavior.Cell,1998,92(4):573-585
[2]Sakurai T.Roles of orexins and orexin receptors in central regulation of feeding behavior and energy homeostasis.CNS Neurol Disord Drug Targets,2006,5(3):313-325
[3]Kotz CM.Integration of feeding and spontaneous physical activity:role of orexin.Physiol Behav,2006,88(3):294-301
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[7]Greco MA,Shiromani PJ.Hypocretin receptor protein and mRNA expression in the dorsolateral pons of rats.Brain Res Mol Brain Res,2001,88(1-2):176-182
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