王泽翻,韩倩,杨恒,李亚齐,曾凡景,孙健,赵惠恩
摘要:以报春刺玫(Rosa primula)和单瓣黄刺玫(R. xanthina)储存花粉为材料,设计单因素试验和正交试验,考察了蔗糖、硼酸及Ca(NO3)2·4H2O浓度对两种刺玫花粉萌发率的影响。结果表明,适宜浓度的蔗糖和硼酸能促进花粉萌发,而较高浓度的Ca(NO3)2·4H2O会抑制花粉萌发。正交试验结果表明适合报春刺玫花粉萌发的最佳培养基为20%蔗糖(质量分数,下同)+100 mg/L硼酸;适合单瓣黄刺玫花粉萌发的最佳培养基为10%蔗糖+50 mg/L硼酸。
关键词:报春刺玫(Rosa primula);单瓣黄刺玫(R. xanthina);花粉萌发;液体培养基
中图分类号:S685.12;Q945.6文献标识码:A文章编号:0439-8114(2012)05-1030-03
Optimization of Culture Medium Formula for in Vitro Pollen Germination of
Rosa primula and R. xanthina
WANG Ze-fan,HAN Qian,YANG Heng,LI Ya-qi,ZENG Fan-jing,SUN Jian,ZHAO Hui-en
(College of Landscape Architecture, Beijing Forestry University, Beijing 100083,China)
Abstract: Using stored pollen of Rosa primula and R. xanthina as experimental material, simple factor tests and orthogonal design were applied to evaluate the effects of sucrose, H3BO3 and Ca(NO3)2·4H2O on in vitro pollen germination of two rejuvenation rose. Results showed that sucrose and H3BO3 at proper dose could promote germination of rose pollen; While high concentration of Ca(NO3)2·4H2O could inhibit pollen germination. The optimum culture medium formula for germination of R. primula pollen was 20%+sucrose 100 mg/L H3BO3, and for R. xanthina pollen was 10% sucrose +50 mg/L H3BO3。
Key words: Rosa primula; R. xanthina; germination of pollen; in vitro germination
报春刺玫(Rosa primula)、单瓣黄刺玫(R. xanthina)为蔷薇科蔷薇属灌木,是原产我国的早花、耐旱、耐寒、耐病、抗性强种质[1]。马燕等[2]自1986年起利用报春刺玫、单瓣黄刺玫与现代月季进行远缘杂交,在众多杂交后代中选出了多个观赏性和抗逆性都表现优良的品种,可见以两种刺玫作为父本进行杂交育种,培育抗性强的月季品种具有巨大的潜力。但这两个种花期较早,在北京于4月底至5月初开花,而现代月季品种一般集中在6月开花,父母本花期不相遇,需采集父本花粉进行储藏。
保证储存的离体花粉有较高的萌发率是进行杂交育种的必要条件,花粉离体萌发需要合适的条件,其主要因素为温度和培养基[3]。已有的报道中对月季花粉萌发培养基的研究多集中在蔗糖和硼酸上,如Richer等[4]研究了3个品种的花粉萌发最适蔗糖浓度,Voyiatzi[5]研究了5个月季品种花粉萌发所需的蔗糖和硼酸浓度,孙宪芝[6]初步研究了蔗糖和硼酸对一些野生种和现代月季花粉萌发的影响,但未进行系统的培养基组分的优化设计研究。钙是花粉萌发的启动者和花粉管生长的调节者[7,8],适当浓度的外源Ca2+能够促进花粉萌发和花粉管生长[9]。王岚岚等[10]研究了蔗糖、B、Ca、Mg、K对月季花粉萌发的影响,结果发现蔗糖、Ca(NO3)2·4H2O和硼酸的交互作用对“Sorbet fruite”花粉萌发有极显著影响。本研究探讨了蔗糖、Ca(NO3)2·4H2O和硼酸对两种刺玫花粉萌发的影响,在此基础上采用正交设计选出最佳培养液配方,为杂交育种工作提供参考。
1材料与方法
1.1材料
花粉采自北京林业大学生长多年的单瓣黄刺玫和报春刺玫的成熟植株上的花朵,花粉散出及收集方法参考孙宪芝[6]的方法,而后置于-20 ℃储存。
1.2试验方法
储存40 d后于杂交前取出花粉,先用TTC法测定花粉生命力,丢弃无生命力的花粉,取有生命力的花粉进行花粉萌发试验。采用液体培养基悬滴培养法,将花粉置于23 ℃条件下培养,24 h后置于电子显微镜下观察。每种培养液观察3个玻片,每个玻片观察3个视野,每个视野不少于100粒花粉,花粉管长度超过花粉粒半径的花粉视为萌发。花粉萌发率=视野内萌发花粉数/该视野花粉总数×100%。
1.2.1单因素试验分别考察培养液中蔗糖、硼酸和Ca(NO3)2·4H2O浓度对两种刺玫花粉萌发率的影响。①蔗糖。培养液中蔗糖的质量分数分别为0、5%、10%、15%、20%。②硼酸。培养液中分别添加0、10、50、100、200 mg/L的硼酸。③Ca(NO3)2·4H2O。培养液中Ca(NO3)2·4H2O的浓度分别为0、10、50、100、200 mg/L。
1.2.2正交试验在单因素试验的基础上,设计L9(34)正交试验,考察蔗糖、硼酸和Ca(NO3)2·4H2O浓度3个因素对两种刺玫花粉萌发率的影响。因素与水平见表1。
2结果与分析
2.1单因素试验结果
2.1.1蔗糖对两种刺玫花粉萌发率的影响以不同浓度蔗糖溶液培养花粉,两种刺玫花粉萌发率的变化趋势相同(表2)。蔗糖质量分数为10%~20%时较适合两种刺玫花粉的萌发。蔗糖质量分数为15%时两种花粉萌发率最高,报春刺玫为39.2%,单瓣黄刺玫为29.9%。蔗糖质量分数为20%时,花粉萌发率略有下降,表明蔗糖浓度过高会抑制花粉的萌发。
2.1.2硼酸对两种刺玫花粉萌发率的影响报春刺玫花粉萌发率在硼酸浓度为50 mg/L时最高,为12.6%;单瓣黄刺玫花粉萌发率在硼酸浓度为100 mg/L时最高,为8.7%(表3)。硼酸的浓度过高或过低均不利于花粉的生长。
2.1.3Ca(NO3)2·4H2O对两种刺玫花粉萌发率的影响Ca(NO3)2·4H2O浓度为10 mg/L时,两种刺玫花粉萌发率均最高,报春刺玫为12.8%,单瓣黄刺玫为10.0%(表4)。之后随着Ca(NO3)2·4H2O浓度上升,两种花粉萌发率均下降,可见过高的Ca2+浓度会抑制两种刺玫花粉的萌发。
2.2正交试验结果
正交试验结果见表5,影响报春刺玫花粉萌发率的3个因素中,硼酸浓度的影响最大,蔗糖浓度的影响最小。报春刺玫最佳培养液配方为A3B3C1,即蔗糖质量分数为20%,硼酸浓度为100 mg/L,不添加Ca(NO3)2·4H2O。影响单瓣黄刺玫花粉萌发率的因素中,硼酸浓度的影响最大,其次为蔗糖浓度,Ca(NO3)2·4H2O的影响最小。单瓣黄刺玫花粉萌发的最佳培养液配方为A1B2C1,即蔗糖质量分数为10%,硼酸浓度为50 mg/L,不加Ca(NO3)2·4H2O。
3结论与讨论
蔗糖在花粉萌发中主要起到提供能源和调节渗透压的作用[11,12]。单因素试验表明,质量分数在10%~20%的蔗糖溶液较适合两种刺玫花粉萌发,其中蔗糖质量分数为15%时两种刺玫花粉萌发率最高,该结果与Richer等[4]的研究结果一致。孙宪芝[6]研究发现质量分数为5%~8%的蔗糖溶液适于大多数蔷薇属植物花粉的萌发,明显低于本试验的最适萌发浓度,可能是由于新鲜花粉与储存花粉在吸收代谢等方面的差异所致。同时,电镜下观察发现,各单因素试验中,只添加蔗糖的培养液中萌发的花粉管长度明显大于只添加了硼酸或Ca(NO3)2·4H2O的培养液中花粉管的长度,表明适宜浓度的蔗糖对花粉的萌发起着重要的促进作用。
硼能促进糖的吸收和代谢,且有利于花粉管壁的形成,可以减少花粉破裂,显著提高花粉萌发率,并促使花粉管生长伸长[13]。单因素试验显示,低浓度的硼酸促进刺玫花粉的萌发,硼酸浓度过高,花粉的萌发率下降,与Voyiatzi[5]报道的结果相符合。
Ca2+影响花粉管内细胞骨架的生理活动,在花粉管顶端形成较厚的管壁,影响花粉管的生长[12]。单因素试验中,Ca(NO3)2·4H2O浓度为10 mg/L时,两种花粉萌发率最高,高于此浓度时,两种花粉萌发率随其浓度的升高而下降。
正交试验中,几种营养元素同时存在,花粉萌发率和花粉管的长度显著高于单因素试验中只添加一种营养元素时花粉的萌发率。这可能是由于硼离子能与蔗糖形成络合物,使糖易于通过质膜在组织中运输,从而促进糖的吸收与代谢,加之硼能参与果胶物质的合成,利于花粉管壁的建造[13]。而Ca2+的加入在一定程度上抑制了两种刺玫花粉的萌发,正交试验结果表明不加Ca(NO3)2·4H2O的组合花粉萌发率反而要高,其原因有待于进一步分析。
参考文献:
[1] 朱秀珍,张佐双. 中国月季[M]. 北京:中国林业出版社,2006.14-16.
[2] 马燕,陈俊愉. 培育刺玫月季新品种的初步研究(I):月季远缘杂交[J]. 北京林业大学学报,1990,12(3):18-25.
[3] 程金水. 园林植物遗传育种学[M]. 北京:中国林业出版社,2000.128.
[4] RICHER C,POULIN M,RIOUX J A. Factors influencing pollen germination in three explorerTM roses[J]. Canadian Journal of Plant Science,2007,87(1):115-119.
[5] VOYIATZI C I. An assessment of the in vitro germination capacity of pollen grains of five tea hybrid rose cultivars[J]. Euphytica, 1995,83(3):199-204.
[6] 孙宪芝. 北林月季杂交育种技术体系初探[D]. 北京:北京林业大学,2004.28.
[7] 龚明,杨中汉,曹宗巽. 钙对花粉萌发的启动产效应和对花粉管生长的调节作用[J]. 北京大学学报(自然科学版),1995,31(2):238-249.
[8] FRANKLIN-TONG V E. Signaling and the modulation of pollen tube growth[J]. The Plant Cell Online,1999,11(4):727-738.
[9] 李颖颖,王蕊,王令霞,等. 硝酸钙对荔枝花粉萌发和花粉管生长的影响[J]. 热带作物学报,2010(6):942-944.
[10] 王岚岚,游捷,俞红强. 月季花粉离体萌发液体培养基组分的优化[J]. 河北农业大学学报,2008,31(3):42-45.
[11] 潘瑞炽. 植物生理学[M]. 北京:中国林业出版社,2001.260.
[12] 陆时万,徐祥生,沈敏健. 植物学[M]. 北京:高等教育出版社,1991.230.
[13] 郭光明,张福锁. 硼对百合花粉萌发过程中细胞内游离钙离子的影响[J]. 中国农业大学学报,2002,7(5):32-37.