猪繁殖与呼吸综合征的临床症状与防治对策

2011-08-15 00:47河北省昌黎县畜牧发展局066600
山东畜牧兽医 2011年11期
关键词:死胎公猪猪群

项 方 (河北省昌黎县畜牧发展局 066600)

猪繁殖与呼吸综合征(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome,PRRS),曾被称为“神秘病”、“猪不育和呼吸道综合征’和“蓝耳病”,是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRsV)引起的一种接触性传染病。主要以母猪发热、厌食、流产、死产、木乃伊胎、弱仔等繁殖障碍及仔猪的呼吸道症状和高死亡率为特征。该病已给养猪国家造成巨大的经济损失,世界动物卫生组织(OIE)将该病列为B类传染病。

我国自1995年北京首例发病,研究人员掌握了越来越多的关于PRRSV的信息,兽医部门控制PRRS的能力也在增强。然而,在PRRSV免疫学领域及如何预防扩散和改善诊断技术方面,还需要进一步探索。

1 病原学特征

PRRSV属于新成立的尼多病毒目,动脉炎病毒科,动脉炎病毒属,不分节段,有囊膜的单股正链RNA病毒。病毒在低温下能保持其稳定的感染性,但不耐热,56℃处理15~20min、37℃处理10~24h、20℃放置6d或4℃放置1个月,病毒滴度将下降10倍。当pH小于5或大于7时病毒的感染性降低95%;在血浆中存活不超过5d。自然分离的PRRSV无凝血活性,不凝集鸡、鸭、山羊、绵羊、小白鼠、豚鼠及人的红细胞。

2 流行病学特点

目前研究表明,PRRS是一种高度接触性传染病。猪是PRRSV的自然宿主,各种年龄和种类的猪均可感染,但以妊娠猪和1月龄内的仔猪最易感,表现出综合征典型的临床症状。病猪为本病的传染源,PRRSV存在于病猪的内脏器官、分泌物、排泄物、胎水、胎儿、血液和精液中。在外界环境中,常存在于圈舍、污泥、饲料、饲草、用具、饮水及污水中,尤其在饮水、污水中存活期长,这也是造成传播的主要来源。空气传播和病猪接触是本病的主要传播方式。猪群规模越大、饲养密度越高接触传播的危险性越高。一般通过鼻与鼻接触或与污染饮水及污染粪尿接触而引起感染。近距离空气传播更容易。

3 临床症状

PRRS病毒主要在巨噬细胞内复制,并随巨噬细胞分布到全身各处。所以往往出现全身系统性感染的症状:发烧、食欲下降、嗜睡等。感染肺后出现呼吸道症状(仔猪和育肥猪),主要表现呼吸频率加快和深度呼吸。感染到母猪的胚胎和胎儿时,出现一系列繁殖障碍:流产和发情延迟,返情率高等。

3.1 怀孕母猪和后备母猪 成年猪经常表现为发烧、嗜睡和食欲下降。另外也会偶然出现皮下和后肢水肿,皮肤病变如耳朵和阴部发紫。由于PRRS在猪群中传播比较缓慢,所以往往会出现周期性或滚动性的食欲下降等症状。怀孕期感染,由于感染阶段不同,往往会出现不同症状:返情率高、发情延迟、NIP猪(假怀孕的一种),流产,死胎,木乃伊和出生弱仔猪等。

3.2 公猪 PRRSV对精子的质量影响的研究结果不一,但是能够导致精子畸形。精子也可以传播病毒,包括弱毒疫苗和野毒,最长可以达92d。曾有实验表明,大白公猪比长白公猪对精子散播PRRSV更有抵抗力。所以,公猪可以通过精子传播给母猪,从而导致母猪发病和再传播给其它猪。

3.3 产房母猪和仔猪 (1)仔猪:急性发病:两周龄内仔猪出现非常严重的呼吸道症状,呼吸频率显著加快,甚至张口呼吸;呼吸明显加深,可以见到胸腹式呼吸。此外就是神经症状,昏睡和食欲下降。新生仔猪还常见到的是眼睑水肿,结膜炎,被毛粗乱,耳朵发紫等。如果继发感染大肠杆菌还会出现拉稀现象。 同时或者随后几天弱仔猪和死胎增多:弱胎往往几小时后死亡,死胎可达75%。随后木乃伊增多,死胎减少。最后是由于怀孕早期感染胚胎死亡而导致出生胎儿数量减少。(2)母猪:采食量下降,发烧,出现无乳综合症。这样仔猪吃不到奶水,尤其是得不到母源抗体,非常容易继发感染发病,造成断奶前死亡率升高,甚至超过80%。

3.4 保育猪和育肥猪 PRRS对断奶后不同阶段的猪的影响也不相同,一般日龄越小影响越大。有的专家通过试验室人工感染得出结论,8周龄为严重程度分界点。而且保育舍一旦发病,往往会一直存在下去,因为如果存在母源抗体不足的的猪,感染就会持续。单独的PRRS感染会严重影响猪的生长,如果再有继发感染死亡率也会上升。在临床上经常发现生长缓慢的病例,导致体重过轻和淘汰率升高。大量实践表明,仔猪感染PRRSV越早,临床症状越严重。控制保育舍期间PRRS,对于整个育肥期生长性能非常重要,所以控制PRRS关键在于早期的保育舍期间。

4 病理变化

4.1 常见病变 不伴发继发感染的病例除有淋巴结轻度或中度水肿外,肉眼变化不明显。呼吸道的病理变化为温和到严重的间质型肺炎,有时有卡他性肺炎。若有继发感染,则可出现相应的病理变化,如心包炎、胸膜炎、腹膜炎及脑膜炎等。

4.2 病理组织学 PRRSV感染引起的繁殖障碍所致的死产仔猪和胎儿很少有特征性病变,PRRSV致死的胎儿病变是子宫内无菌性自溶的结果,没有特异性;流产的胎儿血管周围出现以巨噬细胞和淋巴细胞浸润为特征的动脉炎、心肌炎和脑炎。脐带发生出血性扩张和坏死性动脉炎。

生长猪较成年猪更常见特征性组织性病理变化,肺的组织学病变具有普遍性,有诊断意义。单纯的猪繁殖与呼吸综合征病毒感染引起的肺炎以间质性肺炎伴随正常的呼吸道上皮为特征。其特点为肺泡间隔增厚,单核细胞浸润及肺Ⅱ型上皮细胞增生,肺泡腔内有坏死细胞碎片。

5 诊断要点

5.1 临床诊断 根据母猪妊娠后期发生流产、新生仔猪死亡率高以及临诊症状和间质性肺炎等可初步作出诊断。但由于PRRS不仅与其他许多引起猪繁殖障碍的疾病(猪细小病毒病、猪伪狂犬病、圆环病毒相关疾病、日本乙型脑炎、猪瘟等)的临床症状非常相似,而且极易发生混合感染,同时不同猪场感染PRRS后临诊症状又有很大差异,因此确诊有赖于实验室诊断。

5.2 实验室检验 (1)抗原检测:①荧光标记单株抗体法:可检查患猪肺、脾组织切片,检测病毒抗原所在位置。②反转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)法:这种方法是根据PRRSV的ORF7基因序列设计引物,扩增目的基因片段,可直接检出巨噬细胞、血清、血浆、精液和细胞培养的PRRSV,且灵敏度高,还能鉴别诊断其他易混的病毒性传染病。(2)血清学抗体检测:①免疫过氧化酶单层细胞试验(IPMA):可用本试验检测病猪和康复后猪的双份血清中的LV抗体。该方法特异性强,可测出感染后1~2周至12个月的抗体。②间接荧光抗体试验(IFA):可检测出感染后2~28d的IgM抗体,血清抗体效价低于1∶20者为阴性。③酶联免疫吸附试验(ELISA):可测定感染后2周病毒抗体,法国目前已把ELISA法作为监测和诊断本病的常规手段。ELISA方法敏感、特异,比IPMA能更早的检测出抗体。④血清中和试验(SN):本法主要用于检测PRRS抗体,使用MARC-145细胞在96孔微量板上进行。

5.3 鉴别诊断 在临床上应注意与其他繁殖障碍性疾病的鉴别。(1)猪细小病毒感染。一般猪细小病毒感染对仔猪危害较小,主要引起母猪繁殖障碍。此外,在发生流产、死胎、胎儿等异常情况时,母猪没有明显的临床症状。这与PRRS症状不同。(2)猪伪狂犬病。猪伪狂犬病可通过病料接种家兔,在接种部位出现奇痒这一特征性症状可与PRRS加以区别。(3)猪日本乙型脑炎。本病具有明显的季节性,常发生流产死胎。(4)猪瘟。在开始出现临床病猪1~2周后,疾病迅速传播到各种年龄的未免疫猪,死亡率很高,病猪常有白细胞减少,剖检时可见到猪瘟所特有的病变—脾脏梗死可与PRRS相区别(5)猪布鲁氏菌病。此病无明显季节性,流产多发生于妊娠的第3个月,多为死胎,胎盘布满血点,极少有木乃伊胎。而发生PRRS时木乃伊胎数量增多。公猪睾丸多为两侧肿胀,附睾也肿。而发生PRRS时公猪无此症状。有的病例还发生关节炎,特别是后肢。

6 综合防治

6.1 治疗 PRRS是病毒病,临床上没有特效药物,只能采取对症治疗的办法加以控制。(1)体温升高的病猪,使用30%安乃近注射液20~30ml,地塞米松25mg,青霉素320~480万IU,链霉素2g,一次肌注,2次/d。(2)食欲不振的病猪,使用胃复安1mg/kg体重,维生素B120ml,1次肌注,1次/d;对于食欲废绝但呼吸平稳的病猪,可以使用5%葡萄糖盐水500ml、病毒唑20ml、VB10ml,加入头孢5号25~35mg/kg体重,混合静注,另外肌注VC10ml。(3)产后无乳的母猪,选用洁霉素180万IU、50%葡萄糖50~100ml静脉注射,也可注射催产素3~5支。(4)继发支原体肺炎的仔猪,可使用壮观霉素或利高霉素15mg/kg肌注1~2个疗程,每个疗程5d。(5)继发胸膜肺炎的仔猪,可采用速解灵2mg/kg体重,1次/d,连注3d。另外,对病猪应进行有针对性的支持疗法,以防止并发症的发生,使损失降低到最低限度,可用10%葡萄糖或5%葡萄糖盐水,配合使用阿莫西林、青霉素等抗生素。

6.2 预防 有多种生物安全措施特别适用于防治PRRS。对非疫区猪群一定要预防PRRS。在实际中,防治措施有:(1)做好引种时的检疫工作。引进的猪要严格隔离和观察60d,并检测PRRS抗体。(2)详细了解引入猪猪场中猪的PRRS情况,一定不要从表现急性PRRS症状的猪场中购进种猪,以确保购进的猪在到达及隔离结束时都为阴性。(3)对欲购进的公猪或精液与本场进行比较,对PRRS阴性的猪场,则只能从PRRS阴性的猪场中购进PRRS阴性公猪或精液。(4)严格执行“全进全出”管理程序,对所有猪群尤其是保育和生产肥育猪应采取“全进全出”制。(5)明确免疫目的和制定免疫制度。免疫注射对己感染PRRS病毒的猪只能减轻临床症状,但不能根除PRRS。免疫注射对正在患PRRS的猪群和风险性高的猪群是有效的。免疫注射并不能保证100%不发病,因而不能完全依赖免疫注射。应制定一种切实可行的免疫制度。(6)对那些已确诊发生PRRS并造成巨大生产和经济损失的猪场,应接种PRRS疫苗以预防和控制PRRS病毒感染。适当缩小群体规模或保育群规模,有助于控制正患PRRS病猪场的保育群患PRRS。(7)控制种猪场PRRS病毒的流行,可降低PRRS病毒对猪生产性能的慢性影响。

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