湖北省猪场圆环病毒病和蓝耳病的血清学和流行病学调查

汪招雄，杨玉莹 (长江大学动物科学学院，湖北 荆州 434025)

湖北省猪场圆环病毒病和蓝耳病的血清学和流行病学调查

汪招雄，杨玉莹
(长江大学动物科学学院，湖北 荆州 434025)

为了了解湖北省猪场猪圆环病毒病和蓝耳病发病情况，采用ELISA法对湖北省12个集约化养猪场398份猪血清进行了猪圆环病毒2型(PCV2)和蓝耳病毒(PRRSV)抗体检测。结果显示，共检测出PCV2阳性血清185份，阳性率为38.69%；不同阶段的猪群PCV2阳性率在27.91%～48.25%之间，其中母猪群高于其他猪群，断奶仔猪阳性率最低，也达到27.91%。共检测出PRRSV阳性血清105份，阳性率为26.38%；不同阶段的猪群PRRSV抗体阳性率在15.50%～34.27%之间，其中母猪群高于育肥猪群，断奶仔猪阳性率最低。对不同时间采集的血清检测显示， 6月～9月份，PCV2和PRRSV抗体阳性率都高于其他时间，分别为54.46%和31.25%。10月～ 次年2月份最低，PCV2和PRRSV抗体阳性率分别为30.25%和20.24%。3月～5月份PCV2和PRRSV阳性率介于两者之间，分别为33.17%和23.27%。此结果可为这2种病的综合性防治提供参考。

猪圆环病毒2型；猪蓝耳病；酶联免疫吸附试验；流行病学调查

猪圆环病毒(porcine circovirus，PCV)为单股负链环状DNA病毒，属于圆环病毒科的圆环病毒属。PCV分为2种基因型，即1型猪圆环病毒(PCV1)和2型猪圆环病毒(PCV2)，PCV1无致病性，而PCV2与猪的多种疾病综合症有关，包括仔猪断奶后多系统衰竭综合征、猪皮炎/肾病综合征、猪增生性/坏死性肺炎以及仔猪先天性震颤等。猪繁殖与呼吸综合征(又称蓝耳病)(PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)引起的猪的一种高度接触性传染病，不同年龄、品种和性别的猪均能感染,但以妊娠母猪和1月龄以内的仔猪最易感，该病以母猪流产、死胎、弱胎、木乃伊胎以及仔猪呼吸困难、败血症、高死亡率等为主要特征[1,2]。 这2种病毒在世界各地普遍流行，在我国也广泛存在，疫情的流行在不同养殖场和不同地区均呈现动态变化，并且呈现不断扩大的蔓延趋势，成为近几年对养殖业危害比较严重的病毒性疾病。特别是这2种病原的感染都可以侵害猪群的免疫系统，导致猪群出现免疫抑制，显著地改变了猪病模式，使得其他病原的继发性感染变得更加容易，给养猪业造成了巨大的经济损失[3，4]。为了解这2种病在湖北省猪群中的流行情况，及时控制其传播和流行，本研究从湖北省12个集约化猪场抽样采集猪血清398份，进行了血清学调查，现将结果报告如下。

1 材料与方法

1.1 血清样本

检测血清采自湖北省12个集约化猪场，共采集血清398份，其中母猪血清143份，初生和断奶仔猪血清129份，育肥猪血清126份。样本采集按照随机抽样的方式进行。

1.2 调查方法

调查采用血清学检验和流行病学特点结合的方式进行。PRRSV和PCV2 ELISA检测试剂盒均购自武汉科前生物制品有限公司。

1.3 血清学检测

(1)血清的制备 采集不同集约化猪场的血液4 000 r/mim离心5 min，除去沉淀，保留上清。

(2)PRRSV和PCV2抗体ELISA检测 检测方法均按照试剂盒说明书进行，检测结果以空白孔调零，在酶标仪上测定各孔630 nm波长下的光密度值，试验成立的条件是阳性对照孔630 nm波长下的光密度平均值大于或等于1.0，阴性对照孔630 nm波长下的光密度平均值必须小于0.3。样品630 nm波长下的光密度值大于0.42，判为阳性；数值在0.38到0.42之间，判为可疑；数值小于0.38，判为阴性。微量反应板均设立阳性对照、阴性对照和空白对照。

2 结果与分析

2.1 流行病学调查结果

自2007年以来，这些猪场均不同程度地存在着母猪流产、死胎、弱胎、木乃伊胎等特征。初生仔猪和断奶仔猪体质下降、进行性消瘦、腹泻、呼吸困难；皮肤黄染、苍白、淋巴结肿大、肾脏灰白水肿，淘汰率和死亡率比较高，猪群后期生长缓慢，个体大小呈现参差不齐的现象。这些猪场均多次进行过猪细小病毒病、猪瘟、伪狂犬和乙型脑炎的免疫。

2.2 血清学ELISA检测结果

表1 不同猪群PCV2和PRRSV抗体检测结果Table 1 The antibody testing results of PCV2 and PRRSV serum from different swine groups

表2 不同时间采集血清PCV2和PRRSV抗体检测结果Table 2 The antibody testing results of PCV2 and PRRSV serum collected at different times

对398份猪血清进行检测，共检测出PCV2 抗体阳性血清185份，阳性率为38.69%；不同阶段的猪群PCV2 抗体阳性率在27.91%～48.25%之间，其中母猪群高于其他猪群，断奶仔猪阳性率最低，为27.91%。共检测出PRRSV阳性血清105份，阳性率为26.38%；不同阶段的猪群PRRSV抗体阳性率在15.50%～34.27%之间，其中母猪群高于育肥猪群，断奶仔猪阳性率最低，为15.50%。检测结果见表1。

对不同时间采集的血清检测结果分析显示， 6月～9月份，PCV2和PRRSV阳性率都高于其他时间，分别为54.46%和31.25%。10月～次年2月份最低，PCV2和PRRSV阳性率分别为30.95%和20．24%。3月～5月份PCV2和PRRSV抗体阳性率介于两者之间，分别为33.17%和23.27%(表2)。

3 讨论

(1)对398份猪血清PCV2和PRRSV血清学检测结果显示，PCV2阳性血清154份，阳性率为38.69%；不同阶段的猪群PCV2 抗体阳性率在27.91%～48.25%之间，其中母猪群高于其他猪群，断奶仔猪阳性率最低，也达到了27.91%。PRRSV阳性血清105份，阳性率为26.38%；不同阶段的猪群PRRSV抗体阳性率在15.50%～34.27%之间，其中母猪群高于育肥猪群，断奶仔猪阳性率最低。对不同时间采集的血清检测显示， 6月～9月份，PCV2和PRRSV抗体阳性率都高于其他时间，分别为54.46%和31.25%。10月～次年 2月份最低，PCV2和PRRSV抗体阳性率分别为30.95%和20．24%。3月～5月份PCV2和PRRSV抗体阳性率介于两者之间，分别为33.17%和23.27%。

检测结果显示，不论是PCV2还是PRRSV，抗体阳性率随年龄的增长而升高，这可能与饲养日龄的增长、感染的机率增大有关。对猪场跟踪检测结果表明，这2种病毒感染率随气候变暖而呈明显相关性上升的趋势，与猪场临床发病情况呈现一致性。感染这2种病毒的猪群存在不同程度的病毒血症，感染猪病毒滴度高时往往抗体滴度非常低，甚至出现临床症状非常明显不能检测到抗体的现象[2～4,6]。由此推测，湖北省猪群中的感染PCV2和PRRSV比例可能更高。

(2)感染PCV2病后，猪群特别是断奶和转群猪群病症会快速严重化，即从无临床病症型向典型病症型，从低死亡率向较高死亡率转化[2]。为此应采取综合性防范措施，及时在母猪群和仔猪群使用疫苗，严防疾病的传入和传出，加大流行病学的研究力度，及时淘汰抗原阳性猪，对该病的有效防控有着十分重要的意义。PCV2主要是使机体的免疫功能受到损害，特别是感染早期对免疫功能的抑制作用十分明显，可导致淋巴器官中的T、B淋巴细胞数目减少，造成免疫功能下降，引起继发性免疫缺陷，发病或感染猪存在短暂的不能激发有效的免疫应答现象，使猪群对其他病原体的抵抗力大为降低，从而引起其他病原的并发或继发感染。PCV2常同猪繁殖与呼吸综合征、猪瘟等疾病混合感染，加大了疾病防制的难度[2,5～7]。本研究结果也显示圆环病毒的阳性率同猪繁殖与呼吸综合征的阳性率有正协同效应，究竟二者如何相互作用，还有待今后作进一步探讨。

(3)猪繁殖与呼吸综合征俗称“蓝耳病”，1987年在美国的北卡罗来纳州首次爆发，目前已经成为全球规模化猪场主要疫病[8]。特别是最近几年来，PRRSV变异呈现加快的趋势，猪群感染后临床表现出多样化，感染率高，在此基础上，呈现出持续性感染和隐性感性特性。同时，猪蓝耳病和圆环病毒、伪狂犬病毒、猪细小病毒、猪瘟等疾病混合感染日趋严重，诱发猪群的严重免疫抑制，极大提高了猪群的死亡率，PRRSV已经成为诱发“猪高热病”的基础病原[2，9，10]。

(4)目前对这2种病毒性疾病还没有十分成熟的控制和消灭感染的措施。在我国，使用PCV2疫苗防制该病的工作刚刚开展，疫苗使用效果有待猪场的进一步检验。所以对猪场开展流行病学的调查，对血清阳性猪进行病原定性检测，及时淘汰病原阳性猪显得尤其必要。另外，建立猪场良好的管理制度，改善畜舍环境，加强猪群饲养管理，保证猪群的营养水平，提高猪群机体抵抗力；建立科学的抗体监测和免疫制度，合理使用抗生素和中草药，及时解决继发感染或并发感染，对缓解病情具有一定的现实意义[2，11]。近十几年来众多科学工作者对这2种病毒进行了大量研究，取得不小的进展，但仍有很多问题无法解决。相信随着研究的不断深入，必将促进对该病的预防和控制。

[1]王 涛,王子轼,彭德旺.猪圆环病毒感染与断奶仔猪多系统衰竭综合征[J].中国兽医学报,2002,22 (3)：314～316.

[2]代广军,蔡雪辉,苗连叶,等.规模养猪高热病等流行疫病防控新技术[M].北京：中国农业出版社,2008.0～126.

[3]Calsamiglia M,Segales J,Quintana J,etal.Detection of porcine circovirus type 1 and 2 in serum and tissue samples of pigs with and without postweaning multisystemic wasting syndrome[J].J Clin Microbiol,2002,40：1848～1850.

[4]Chianini F,Majo N,Segales J,etal.Immunohistochemical characterization of PCV2 associate lesions in lymphoid and non-lymphoid tissues of pigs with natural postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS)[J].Vet Immunol Immunopathol,2003,94：63～75.

[5]Fenaux M,Opriessing T,Halbur P G,etal.Immunogenicity and pathogenicity of chimeric infectious DNA clones of pathogenic porcine circovirus type 2 (PCV2)and nonpathogenic PCV1 in weanling pigs[J].J Virol,2003,77：11232～11243.

[6]Kennedy S,Segalés J,Rovira A,etal.Absence of evidence of porcine circovirus infection in piglets with congenital tremors[J].Vet Diagn Invest,2003,15：151～ 156.

[7]Kim J,Chung H K,Chae C.Association of porcine circovirus 2 with porcine respiratory disease complex[J].Vet J,2003,166：251～256.

[8]白文彬,于康震.动物传染病诊断学[M].北京：中国农业出版社,2002.442～448.

[9]Mengeling W L.The porcine reproductive and respiratory syndrome quandary.Part II.Vaccines and vaccination strategy[J].Swine Health Prod,2005,13:152～156.

[10]Ladekjaer-Mikkelsen A S,Nielsen J,Stadejek T,etal.Reproduction of postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS)in immunostimulated and non-immunostimulated 3-week-old piglets experimentally infected with porcine circovirus type 2 (PCV-2)[J].Vet Microbiol,2002,89：97～114.

[11]Pensaert M B,Sanchez R E,Ladekjr-Mikkelsen A,etal.Viremia and effect of fetal infection with porcine viruses with special reference to porcine circovirus 2 infection[J].Vet Microbiol,2004,98：175～183.

2010-09-13

汪招雄(1977-)，男，安徽枞阳人，博士研究生，讲师，主要从事动物传染病及免疫学研究.

10.3969/j.issn.1673-1409(S).2010.04.009

S852.8

A

1673-1409(2010)04-S031-03