应用Sysmex XE-2100仪妊娠期外周血白细胞参数

李忠新，柏 芹，占葆娥

(1、深圳市中医院检验科，广东 深圳 518033；2、中南大学湘雅医学院检验系2005级)

妊娠是正常的生理过程，妊娠期间体内各系统会发生一系列的变化以满足胎儿的生长发育需要，外周血血象也会发生生理性变化，如外周血白细胞可生理性增多，中性粒细胞增多等[1]。Sysmex-XE2100全自动血液分析仪除采用传统的电阻抗法和射频法外，还采用半导体激光流式细胞原理结合细胞化学荧光染色技术对血细胞进行检测，能够进行完整的血细胞计数和5分类白细胞计数，另外还可提示和分析幼稚粒细胞，本研究应用Sysmex-XE2100血液分析仪这些功能，对妊娠妇女外周血白细胞各参数 (包括幼稚粒细胞)进行分析。

1 材料与方法

1.1 对象 2010年1月～2010年4月在我院进行产前检查的妊娠妇女96例，年龄20～36岁，孕期9～38周。对照组30例，来自本院健康体检非妊娠妇女，年龄21～36岁，妊娠组和对照组均身体健康，无肝、肾、血液等方面疾病，无输血史。静脉抽取血液2ml标本置EDTA-K2真空抗凝管中。

1.2 仪器与试剂 XE-2100血细胞分析仪及原装配套试剂和配套质控物。

1.3 方法

1.3.1 血液分析仪检测 仪器在严格质量控制条件下按照仪器使用说明书操作，按要求进行高、中、低 3个水平的室内质控，血液标本在采集后4h内用全自动模式进行检测。

1.3.2 统计学分析 所有统计分析采用SPSS 12.0统计软件处理，P＜0.05视为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 妊娠组与对照组各白细胞参数比较

与对照组比较，妊娠组白细胞总数明显高于对照组 (P＜0.05)，各类白细胞(中性粒细胞、淋巴细胞、单核细胞、嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞)比例之间的均有显著性差异 (P＜0.05)，但是绝对值只有中性粒细胞和单核细胞有显著性差异(P＜0.05)，具体见表1和图 1及图 2。

表1 妊娠组与对照组各白细胞参数比较

图1 妊娠组与对照组各类细胞百分比比较

图2 妊娠组与对照组各类细胞绝对值比较

2.2 不同妊娠期白细胞总数和中性粒细胞情况 见表2。

2.3 不同妊娠期出现幼稚细胞的情况

在96份样本中，幼稚粒细胞报警(IG)可信值＞200的样本占26.4%。绝大多数在妊娠晚期，占76.9%，少数在妊娠中期占23.1%，妊娠早期为0，见表3。

3 讨论

妊娠是胚胎和胎儿在母体内发育成长的过程。妊娠期约为266d(38周)，分为三个时期：妊娠12周末以前称为早期妊娠，第13～27周末称中期妊娠，第28周及其后称晚期妊娠[3]。妊娠是正常的生理过程，为了满足胎儿生长发育的需要，孕妇体内各系统发生一系列适应性的解剖、生理和生化变化。其中血液成分表现在妊娠期骨髓不断产生红细胞，网织红细胞轻度增多；白细胞从妊娠7~8周开始轻度增加，至妊娠30周达高峰，主要为中性粒细胞增多。

表2 不同妊娠期白细胞总数与分类情况

表3 不同妊娠期出现IG的情况

本次研究中，采用XE-2100血细胞分析仪分析963例妊娠期血液样本和30例相同年龄段的非妊娠期血液样本，结果显示妊娠组外周血白细胞数显著增加，并且随着妊娠的进程而增加，在妊娠晚期达到最高水平，白细胞总数的增加主要是由于中性粒细胞的增加，与Kuhnert[1]等报道基本一致，另外我们研究显示中性粒细胞和单核细胞绝对值均增加，这与Mahmoud[4]学者报道一致，但各类细胞比例变化与其他的学者报道不尽相同，如Kuhner[1]没有发现在妊娠时单核细胞比例不同。

Fernandes B[5]报道XE-2100定量分析外周血幼稚粒细胞性能良好，特别是幼稚粒细胞报警的可信度>200时。Fujimoto等[6]用CD16，CD11b，CD45分子标记幼稚粒细胞，采用流式细胞仪分析，发现与XE-2100结果也具有很好的相关性。我们对96份妊娠样本进行分析，IG报警可信度值＞200的样本为26例，绝大多数在妊娠晚期 (76.9%)，少数在妊娠中期(23.1%)，妊娠早期(0%)。这表明在妊娠中晚期，外周血可出现幼稚粒细胞，幼稚粒细胞的出现可能是受妊娠期间血清中各种生长因子的调节和影响。

Umesaki[7]报道妊娠妇女中粒细胞集落刺激因子的浓度在怀孕期间比非妊娠妇女显著增高。Saito[8]报道在妊娠第三期即晚期，粒细胞集落刺激因子水平与中性粒细胞呈正相关，妊娠妇女血清中巨噬细胞群体刺激因子改变与外周血单核细胞和中性粒细胞数的变化有联系。

综上所诉，本研究采用Symex XE-2100血液分析仪对妊娠期外周血白细胞各参数进行了初步分析，特别是对幼稚粒细胞也进行了初步分析，结果显示妊娠妇女白细胞总数增加，各类白细胞比例均有变化，以中性粒细胞增多为主，中晚期伴有幼稚粒细胞出现。

[1]Kuhnert M,Strohmeier R,Stegmuller M,et al.Changes in lymphocyte during normal pregnancy.European Journal of Obstetrics [J].Gynecology and Reproductive Biology,1998,76:147–151.

[2]Herklotz R,Huber A.Precision and accuracy of the leukocyte differential on the Sysmex XE-2100[J].Sysmex J Int,2001,11:8-21.

[3]丰有吉,沈 铿.妇产科学[M].第1版,北京:人民卫生出版社,2008.

[4]Mahmoud F,Abul H,Omu A.Pregnancy-associated changes in peripheral blood lymphocyte subpopulations in normal Kuwaiti women[J].Gynecol Obstet Invest,2001,52(4):232-236.

[5]Fernandes B,Hamaguchi Y.Automated Enumeration of Immature Granulocytes[J].Am J Clin Pathol,2007,128(3):454-463.

[6]Fujimoto H,Sakata T,Hamaguchi Y,et al.Flow cytometric method for enumeration and classification of reactive immature granulocyte populations[J].Cytometry,2000,42(6):371-378.

[7]Umesaki N,Fukumasu H,Miyama M,et al.Plasma granulocyte colony stimulating factor concentrations in pregnant women[J].Gynecologic and Obstetric Investigation,1995,40(1):5–7.

[8] Saito S, Motoyoshi K, Ichijo M, et al. High serum human macrophage colony-stimulating factor level during pregnancy[J].Int J Hematol,1992,55(3):219-225.