嵇晓辉,姜丽娜,王娜,刘薇,杨金花#
郑州人民医院1病理科,2乳腺外科,郑州 450003
乳腺癌属于多基因异质性恶性肿瘤,在女性中 其发病率仅次于宫颈癌,且近年来其发病呈逐渐年轻化的趋势,对女性身心健康的影响极大,发病后患者多会出现胸痛、乳头内陷、乳头破碎等症状,早期多采用根治性手术治疗[1]。但由于乳腺癌早期临床症状无特异性,多数患者确诊时病情已进展至中晚期,错过了最佳的手术时机,只能依靠化疗稳定病情[2]。紫杉醇(paclitaxel,PTX)是常用的乳腺癌化疗药物,该药物具有促进微管蛋白聚合、抑制解聚的作用,可确保微管蛋白处于稳定状态,避免细胞有丝分裂,与靶向药物联合应用还能在减轻不良反应的同时提高治疗效果,长期治疗虽然能在一定程度上增加肿瘤细胞的敏感性,但也有可能产生较大的毒性[3]。因此,尽早明确乳腺癌的耐药机制,研发新型靶向治疗药物,在提高药物敏感性的同时减轻不良反应,才能保障整体治疗效果[4]。微小RNA(microRNA,miRNA)作为保守的内源性非编码小RNA,其组织特异性较高,目前已有研究认为miRNA-455-3p能够调控肿瘤细胞对化疗药物的耐药性[5]。此外,自噬相关蛋白12(autophagy related 12,ATG12)在多种恶性肿瘤中异常表达,与恶性肿瘤靶向治疗耐药存在一定关联,但在乳腺癌中的研究较少。基于此,本研究探讨乳腺癌组织中miRNA-455-3p的表达及与PTX耐药的关系,现报道如下。
选取2018年7月至2021年7月郑州人民医院收治的乳腺癌患者。纳入标准:①符合《中国抗癌协会乳腺癌诊治指南与规范(2015版)》[6]中乳腺癌的诊断标准;②经病理检查确诊为乳腺癌,TNM分期为Ⅲ~Ⅳ期;③临床资料完整。排除标准:①对PTX过敏;②存在化疗禁忌证;③合并其他器官感染或肿瘤;④认知功能障碍,无法完全配合治疗;⑤接受过化疗或放疗。依据纳入和排除标准,本研究共纳入80例乳腺癌患者,年龄30~78岁,平均(54.41±5.62)岁;病程1~6年,平均(3.21±0.46)年;PTX敏感者40例,PTX耐药者40例;TNM分期:Ⅲ期60例,Ⅳ期20例。本研究经医院伦理委员会批准通过,所有患者均知情同意。
取80例乳腺癌患者的乳腺癌组织和相应癌旁组织,PTX耐药和PTX敏感乳腺癌患者的乳腺癌组织,液氮中冷冻,随后迅速置于-80℃冰箱中保存待检。采用Trizol法提取组织样品中的总RNA,然后采用miRNA反转录试剂盒合成互补DNA(complementary DNA,cDNA),并以cDNA作为模板,利用Primer 5设计引物,配制PCR反应体系,最后于荧光定量PCR仪上对miRNA-455a-3p表达水平进行检测,重复测量3次取平均值,以U6为内参,采用 2-△△Ct法计算 miRNA-455-3p 的相对表达量。miRNA-455-3p正向引物:5'-CGTCGAAGAAGGGCAAGTAG-3',反向引物:5'-CACCATTCCAAGCACAACAC-3';U6正 向 引 物 :5'-CTCGCTTCGGCAGCACA-3',反向引物:5'-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3'。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)为内参,采用 2-△△Ct法计算 PTX 耐药和PTX敏感乳腺癌患者乳腺癌组织中ATG12mRNA的相对表达量。ATG12正向引物:5'-CTGCTGCGGCGGGCGAGAG-3',反向引物:5'-GGGCGAAACTGCAACCGAAGACG-3';GAPDH正向引物:5'-TGAACGGGAAGCTCACTGG-3',反向引物:5'-TCCACCACCCTGTTGCTGGA-3'。
1.3.1 细胞培养和分组采用含有300 μg/ml PTX的RPMI-1640培养液培养人乳腺癌MCF-7细胞,24 h后更换为不含PTX的RPMI-1640培养液,一旦细胞融合度高达70%,则反复使用PTX诱导,并反复换液、传代,24周后建立PTX耐药细胞MCF-7/PTX。将MCF-7/PTX接种于96孔板中,1×105/孔,待细胞融合度达到50%,采用Lipofectamine 3000将miRNA-NC、miRNA-455-3p mimics分别转染至乳腺癌耐药MCF-7/PTX细胞,分别作为miRNANC组、miRNA-455-3p组。
1.3.2 蛋白质印迹法(Western blot)检测相关蛋白的相对表达量将细胞裂解液加入待裂解细胞中后,离心取上清液,并采用二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)蛋白对试剂盒中的蛋白质浓度进行测定,吸取50 μg蛋白样品进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecylsulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE),随后于100 V恒压条件下将蛋白印迹转移到纤维素膜中,于4℃条件下采用5%脱脂牛奶封闭纤维素膜,并孵育过夜,随后加入P糖蛋白(P-glycoprotein,P-gp)、谷胱甘肽 S-转移酶-π(glutathione S-transferase-π,GST-π)一抗,室温下孵育2 h,采用TBST洗涤;加入辣根过氧化物酶标记的二抗孵育1.5 h,随后采用电化学发光(electrochemiluminescence,ECL)法对蛋白进行检测,同时利用Image Scanner软件分析P-gp、GST-π蛋白的相对表达量。
1.3.3 流式细胞术检测细胞凋亡能力将细胞接种于6孔培养板中孵育24 h,1×105/孔,PTX处理后继续培养48 h。胰蛋白酶消化细胞后用磷酸盐缓冲液(phosphate buffered solution,PBS)洗涤重悬,随后取 100 μl细胞悬液加入 5 μl膜联蛋白 V(Annexin V)-异硫氰酸荧光素(fluorescein isothiocyanate,FITC)孵育 10 min,然后加入 5 μl碘化丙啶(propidium iodide,PI)孵育15 min,采用流式细胞仪和Flowjo软件计算细胞凋亡率。
①比较乳腺癌组织和癌旁组织中miRNA-455-3p的相对表达量。②比较PTX耐药和PTX敏感乳腺癌患者乳腺癌组织中miRNA-455-3p、ATG12mRNA的相对表达量。③比较miRNA-NC组、miRNA-455-3p组MCF-7/PTX细胞的凋亡率以及P-gp、GST-π蛋白的相对表达量。④分析乳腺癌组织miRNA-455-3p的表达与ATG12表达的相关性。
采用SPSS 20.0软件对所有数据进行统计分析,正态分布计量资料以均数±标准差(±s)表示,组间比较采用两独立样本t检验,组内比较采用配对t检验;计数资料以例数和率(%)表示,组间比较采用χ2检验;相关性分析采用Spearman相关分析;以P<0.05为差异有统计学意义。
乳腺癌组织中miRNA-455-3p的相对表达量为(1.01±0.03),明显高于癌旁组织的(0.73±0.03),差异有统计学意义(t=59.029,P<0.01)。
PTX敏感乳腺癌患者乳腺癌组织中miRNA-455-3p的相对表达量明显高于PTX耐药患者,ATG12mRNA相对表达量明显低于PTX耐药患者,差异均有统计学意义(P<0.01)。(表1)
表1 PTX敏感和PTX耐药乳腺癌患者乳腺癌组织中miRNA-455- 3 p、ATG12 mRNA相对表达量的比较(±s)
表1 PTX敏感和PTX耐药乳腺癌患者乳腺癌组织中miRNA-455- 3 p、ATG12 mRNA相对表达量的比较(±s)
PTX耐药情况PTX敏感(n=40)PTX耐药(n=40)t值P值1.02±0.02 0.68±0.04 48.083 0.000 0.63±0.08 1.29±0.12 28.943 0.000 miRNA-455-3p ATG12 mRNA
miRNA-455-3p组细胞凋亡率明显高于miRNANC组,P-gp、GST-π蛋白相对表达量均明显低于miRNA-NC组,差异均有统计学意义(P<0.01)。(表2)
表2 miRNA-455- 3 p组和miRNA-NC组MCF- 7/PTX细胞凋亡情况及P-gp、GST-π蛋白相对表达量的比较(±s)
表2 miRNA-455- 3 p组和miRNA-NC组MCF- 7/PTX细胞凋亡情况及P-gp、GST-π蛋白相对表达量的比较(±s)
组别miRNA-NC组miRNA-455-3p组t值P值8.41±0.42 16.84±0.52 56.401 0.000 1.06±0.11 0.46±0.06 21.415 0.000 1.02±0.08 0.47±0.05 26.073 0.000凋亡(%)P-gp蛋白GST-π蛋白
Spearman相关分析结果显示,乳腺癌组织中miRNA-455-3p的表达与ATG12的表达呈负相关(r=-0.697,P<0.01)。
乳腺癌的发病机制较为复杂,目前临床尚未完全明确,可能与遗传、外源性雌激素刺激、不良生活习惯等因素有关[7]。化疗作为乳腺癌常见的辅助治疗方法之一,以PTX最为常见,该药可有效抑制病情进展,治疗效果显著,但若患者对PTX产生耐药性,极有可能增加化疗失败、肿瘤转移的风险,甚至还有可能缩短患者的生存期,严重影响患者的预后[8]。因此,临床只有尽早明确乳腺癌组织产生PTX耐药的原因,才能及时采取有效的措施进行干预,进而降低乳腺癌组织对PTX的耐药性,达到提高患者临床治疗效果的目的[9]。
miRNA含有20~24个核苷酸,可通过与靶基因3'-非翻译区(3'-untranslated region,3'-UTR)完全或不完全结合的方式对靶基因和蛋白翻译功能进行降解和抑制,使miRNA调控信号通路出现异常[10]。目前已有研究证实,肿瘤内的miRNA与化疗药物的耐药性存在一定关联[11]。miRNA-455-3p是功能性miRNA的一种,可在多种恶性肿瘤耐药性的产生过程中发挥调控作用,但miRNA-455-3p对乳腺癌PTX耐药的影响及其调控机制仍有待进一步研究[12]。目前也有研究认为自噬与肿瘤细胞耐药性存在一定关联,ATG12作为自噬小体形成的主要参与因子之一,可诱导自噬小体的形成促进自噬的发生,自噬的发生能够诱导肿瘤细胞对治疗的抵抗[13-14]。相关研究认为,miRNA可在调控ATG12的表达后,直接参与肿瘤耐药性的产生过程[15-16]。本研究也认为miRNA-455-3p与ATG12的表达存在关联,与癌旁组织相比,乳腺癌组织中miRNA-455-3p的相对表达量明显更高,且PTX敏感组织中miRNA-455-3p的相对表达量明显高于PTX耐药组织,而ATG12mRNA的相对表达量明显低于PTX耐药组织。提示ATG12可能是miRNA-455-3p的潜在靶基因之一,且ATG12还可能在PTX的作用下对耐药细胞的自噬和凋亡产生影响,从而干扰miRNA-455-3p的表达,增强乳腺癌的耐药性。
P-gp蛋白作为多药耐药基因编码的产物,可将PTX泵出细胞外,同时还能对肿瘤细胞的生长、凋亡产生调节作用[17-18]。GST-π蛋白可使细胞毒性药物参与到化疗中,使化疗耐药,而下调P-gp和GST-π蛋白的表达可逆转乳腺癌细胞的耐药性,抑制P-gp和GST-π蛋白的表达还能有效逆转miRNA-455-3p对MCF-7/PTX细胞凋亡的影响[19-20]。本研究结果显示,miRNA-455-3p组细胞凋亡率明显高于miRNA-NC组,P-gp、GST-π蛋白的相对表达量均明显低于miRNA-NC组,提示miRNA-455-3p高表达可能抑制了乳腺癌PTX的耐药过程,干扰miRNA-455-3p的表达可能增强乳腺癌组织的耐药性。但本研究仅为单中心研究,且样本量较少,后续还需要加大样本量,并进行多中心分析,才能进一步提高研究结果的真实性和可靠性。
综上所述,乳腺癌组织中miRNA-455-3p表达与PTX耐药存在一定关联,miRNA-455-3p能够靶向抑制ATG12的表达,降低耐药乳腺癌细胞的自噬活性,促进细胞迅速凋亡,最终改善乳腺癌细胞对PTX的敏感性。