一例新生犊牛病毒性腹泻的诊疗

2022-11-18 04:46张力国
畜牧兽医科技信息 2022年10期
关键词:牛群犊牛母牛

张力国

(辽宁省农业发展服务中心,辽宁 沈阳 110030)

牛病毒性腹泻,又称粘膜病(Bovine viral diarrhoea/Mucosaldisease),属法定二类动物传染病,是由牛病毒性腹泻病毒(BVDV)引起的传染病。该病在临床上以6~18月龄牛高发,虽发病率不高约5%,但病死率高达90%~100%。我国于1980年首次从国外引进牛的流产胎儿脾脏中分离并鉴定出BVDV,截至目前,我国已有20多个省市自治区报道牛群发生牛病毒性腹泻,因本病具有持续感染,免疫耐受等特点,在牛群中污染率很高,个别牛群高达60%以上,近些年呈逐步上升趋势。该病已成为危害牛群健康的主要传染病之一。

1 发病情况及临床症状

2021年下半年,我省某地牛场新生犊牛陆续开始出现腹泻症状,在断奶前后进行补饲过程中尤其明显,该场共饲养120头,成牛100头、犊牛20头,期间约有1/3犊牛出现腹泻,成牛未见明显症状。患病犊牛初期出现急性腹泻、脱水、精神沉郁、厌食等症状,后期粪便中带有胶冻样分泌物或粪便中带有血丝,期间患病犊牛注射庆大霉素、链霉素、磺胺类药物,症状未见有明显改善,并有犊牛开始陆续死亡。

2 流行病学调查及剖检变化

该饲养场周围无其他规模牛饲养场,有个别散户饲养,但未见相关症状出现,据场主介绍,该场近期陆续从其他地区引进牛,且未经隔离直接混群。对病死牛进行剖检发现,病牛皮下干硬,眼窝深陷,机体消瘦,脱水症状较为明显,心包少量积液,肺脏充血,皱胃黏膜出血,肠道黏膜脱落,黏膜下呈现条索状出血,肠系膜淋巴结出血肿大,直肠及肛门出血。

3 实验室诊断

3.1 血清学诊断随机采集场内20头成牛以及全部犊牛(20头)的血液,共计40份,并离心取血清,使用牛病毒性腹泻病毒抗体检测试剂盒(IDEXX)进行抗体检测。

3.1.1 操作步骤(1)洗涤液制备 将10倍浓缩的洗液置于18~26℃,混旋后确定析出的盐类全部溶解。将浓缩洗液用去离子水作1:10稀释,配置100mL。

(2)取出包被板 并在操作记录表上标记样品的位置,每孔中加100μL样品稀释液。1A、1B各加入25μL阳性对照,1C、1D加入25μL阴性对照,其余各孔对应加入25μL样品。用振荡器振荡反应板,将反应板中的溶液混匀,在18~26℃孵育90min,吸出反应孔中的液体物质并弃入废液缸中。

(3)用300μL左右的洗涤液洗涤每个板孔5次。每个反应孔中加入100μL酶标抗体,在18~26℃孵育30min后,用300μL左右的洗涤液洗涤每个板孔5次。

(4)在每个反应孔中加入100μLTMB底物N.12,在18~26℃孵育10min,在每个反应孔中加入100μL的终止液N.3终止反应。

(5)使用酶标仪在450nm波长测定和记录样品以及对照的吸光值。判断方法:阳性对照OD值≤0.250,且阴性对照OD值-阳性对照OD值≥0.150,实验有效。计算S/P值,S/P=(样品OD值-阳性对照OD值)/(阴性对照OD值-阳性对照OD值),当S/P≤0.20,判定为阴性;当0.20≤S/P≤0.30,判定为可疑;当S/P≥0.30,判定为阳性。

3.1.2 结果

表1 牛病毒性腹泻病毒抗体检测样品布局

经计算,阴性平均OD值为0.201,阳性平均OD值为0.54,全部样品S/P≥0.30,均为阳性。

3.2 病原学诊断分别采集6头发病犊牛的粪便样品,放入无菌采样管中,使用牛病毒性腹泻病毒实时荧光RT-PCR检测试剂盒(世纪元亨)进行病原学检测。

3.2.1 操作步骤(1)核酸提取 在操作记录表上标记样品的位置,使用病毒RNA/DNA提取试剂盒(天隆科技-磁珠法),分别吸取无菌采样管各200μL样品,按顺序加入试剂盒配套96孔板的1A~6A列孔内,7A加入200μL阳性对照,8A加入200μL阴性对照,同时各孔分别加入20μL蛋白酶K溶液,放入核酸提取仪,并运行RNA核酸提取程序,进行自动化提取。

(2)实时荧光RT-PCR检测 取27μL无菌无核酸酶水,100μLRT-PCR反应液,4μL酶混合液,19μL荧光探针充分混合后,分装8个反应管中各15μL。

(3)分别取3.2.1.2中提取的样品、阳性对照、阴性对照RNA各5μL,加入相应反应管中,混均并作好相应标记,使用abi7500荧光PCR仪进行以下反应:45℃15min,95℃1min;95℃5s,60℃35s,在每个循环第二步(60℃35s)收集荧光信号,共40个循环。(报告基因“FAM”,淬灭基因“None”)。

表2 牛病毒性腹泻病毒抗体检测样品OD值

3.2.2 结 果

经检测,阳性对照Ct值≤30,阴性对照无Ct值并且无特异性扩增曲线,实验结果成立,全部被检样品Ct值≤30,结果判定为BVDV阳性。

3.3 寄生虫镜检采集患病牛及场内新鲜粪便稀释后,压片在显微镜下检查,未观察到球虫及其他寄生虫虫体和虫卵,排除寄生虫感染可能。

4 诊断

根据临床症状并结合实验室检测结果综合判断,确诊该场犊牛腹泻原因是牛病毒性腹泻病毒感染所致。

5 治疗及预防

图1 牛病毒性腹泻病毒实时荧光RT-PCR检测结果

5.1 目前无特效的治疗方法对症治疗和加强饲养管理可以减轻症状,增强机体抵抗力,促使病牛康复。首先要预防因腹泻导致脱水,及时补液,纠正电解质平衡和酸碱平衡,患该病犊牛会因为严重脱水、电解质丢失和酸中毒导致休克和心力衰竭而死亡,补液采用口服或静脉补液,补液量根据犊牛脱水程度而定。其次要预防细菌性继发感染,合理选择抗菌药物,及时使用抗生素。

5.2 怀孕母牛分娩前2~4周接种疫苗可增加初乳中特异性抗体的含量,有利于预防犊牛腹泻。对同群未发病犊牛接种疫苗,疫苗选择上减毒活疫苗存在散毒或毒力返强的风险,还会引起犊牛免疫力下降,因此推荐选择灭活疫苗。

6 防控措施

6.1 加强健康管理保障妊娠母牛特别是妊娠后期母牛的营养,保持母牛乳房卫生健康,母牛产犊过程中的排出物和产后母牛排出的污物要及时处理。犊牛注意保暖,减少因环境改变、运输等因素导致的应激反应。

6.2 加强卫生管理该病的主要传染源就是患病的畜禽,无论是分泌物、排泄物,还是血液、脾脏等,都含有病毒,潜伏期通常7~10d,因此放牧场所和圈舍要定期清扫,粪尿及时清理,每周坚持至少消毒一次,犊牛发病圈舍可使用2%氢氧化钠或5%~10%生石灰消毒。饲喂犊牛的所有工具必须干净卫生,且用后要立即冲刷干净,避免因用具、环境不卫生导致犊牛发生肠道疾病、免疫力下降。

6.3 增强犊牛免疫力确保犊牛及时吃到母乳,犊牛断奶早期少量多次采食优质干草,逐渐增加采食量但不宜过多。日常饲喂要提供充足的蛋白质、VE及亚硒酸钠,饲料或饮水中添加黄芪多糖,提高机体抗病能力。

6.4 牛群净化场内牛群全部检测牛病毒性腹泻病毒,及时淘汰阳性牛,控制传染源。严格把关引进牛,禁止引入病牛或带毒牛,引入检测合格后,隔离观察21d,方可合群。

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