断奶期内不同饲粮对羔羊生长、营养物质表观消化率和瘤胃发酵参数的影响

史晨迪 赵晓雅 田沛知 陈佳欣 段春辉 张英杰 刘月琴 纪守坤 严 慧

(河北农业大学动物科技学院，保定 071000)

断奶是羔羊生长发育过程中一个重要阶段，此时机体发育尚未成熟，加之母子分离、饲粮的转变等因素变化，引起羔羊一系列的应激反应，导致生长发育受阻、免疫力降低、发病率增加等[1-3]。断奶阶段的饲养管理对羔羊成活率及后期生长发育影响较大，是生产中需格外关注的阶段。

羔羊早期以采食母乳为主，由于条件反射引导食管沟闭合，乳液直接进入皱胃，被机体吸收利用，不利于瘤胃发育[4-5]。固体饲粮的采食有助于刺激羔羊胃肠道的发育，维持瘤胃正常功能[6]。饲喂固体饲粮有利于羔羊在断奶期的平稳过渡及后续的生长发育[7]。目前养殖场对于羔羊在断奶过渡期饲喂的饲粮各有不同，没有统一的饲粮过渡模式，主要包括代乳品、羔羊精料补充料+粗饲料、全混合日粮(TMR)和羔羊精料补充料+TMR等，羔羊腹泻及死亡率较高。如何有效缓解羔羊断奶应激已成为急需解决的生产问题。因此，本试验研究断奶期内不同饲粮对羔羊生长性能、营养物质表观消化率和瘤胃发酵参数的影响，旨在为羔羊饲养提供理论基础和技术指导。

1 材料与方法

1.1 试验时间与地点

本试验在河北省张家口市兰海牧业进行，试验时间为2020年11—12月。

1.2 试验设计

1.2.1 试验分组和饲粮

选取健康、体重相近的45日龄湖羊羔羊48只(公母各占1/2)，所有羔羊在45～59日龄随母哺乳，并补饲羔羊精料补充料，在52日龄时，将公母羔羊分别按体重[(15.58±2.45)kg]随机分为3组，然后公母进行随机配对，每组共16个重复，公羔8只，母羔8只。在60～75日龄，试验1组随母哺乳+补饲羔羊精料补充料，试验2组在60日龄断奶，并饲喂TMR，试验3组在60日龄断奶，并饲喂50% TMR+50%羔羊精料补充料。羔羊59日龄记为试验第0天，试验期23 d。所有羔羊在试验第-7(52日龄)、0、7、15天于晨饲前称重，并记录每只羊每天的采食量。所有羔羊在试验第0、3、9和15天于晨饲前采集瘤胃液，测定瘤胃发酵参数。羔羊精料补充料购自正大饲料公司，主要由玉米、豆粕、棉籽粕、菜籽粕、玉米干全酒精糟、玉米皮、石粉、磷酸氢钙、氯化钠、预混料等组成，其营养水平见表1。TMR组成及营养水平、50% TMR+50%羔羊精料补充料营养水平见表2，羊乳营养水平见表3。

表1 羔羊精料补充料营养水平(干物质基础)

表2 TMR组成及营养水平、50% TMR+50%羔羊精料补充料营养水平(干物质基础)

表3 羊乳营养水平

1.2.2 消化代谢试验

在52日龄(试验第-7天)，每组随机选取4只体重相近的羔羊固定笼进行消化代谢试验，预试期4 d，正试期3 d，并在试验第3、9、15天连续3 d进行消化代谢试验。消化代谢试验期间随母哺乳羔羊在09:00、15:00和21:00饲喂母乳。记录每只羔羊的日采食量及吃奶量(哺乳前后称重)，计算干物质采食量(DMI)，并采集饲粮样品。采用全收粪法收集粪样并称重记录。将每只羊连续3 d的粪样进行混合，并在-20 ℃保存待测。

1.3 饲养管理

试验开始前，对羊舍进行消毒处理；试验期间，每周对羊舍地面及四壁进行消毒。所有羔羊单栏饲养，哺乳羔羊每天在09:00、15:00和21:00哺乳，每次1 h，哺乳后放回羔羊栏。所有羔羊每天于09:00和16:00各饲喂1次固体饲粮，自由采食和饮水。

1.4 指标测定及方法

1.4.1 生长性能

在试验第-7、0、7和15天时，所有羔羊于晨饲前称重并记录。试验1组在52～75日龄和试验2、3组在52～59日龄，每天测定羔羊吃奶量(哺乳前后称重)，并每隔7 d人工采集9只母羊奶样，分早、午、晚3次采集，每次采集20 mL，3次混合后，分2份，1份立即送检，1份-20 ℃保存待测，记录羔羊精料补充料的采食量；试验2、3组记录60～75日龄每天的饲粮采食量。计算各阶段平均日增重(ADG)、DMI、营养物质采食量和料重比。

试验期间，每天记录羔羊腹泻次数，通过每天观察羔羊肛门是否有粪便污染，以及粪便情况，其中粪便颗粒状为正常，糊状、不成型或液体为腹泻。

腹泻率(%)=100×试验期每日腹泻只数/(试验天数×试验只数)。

1.4.2 营养物质表观消化率

将采集的饲粮样品和粪样放入烘箱65 ℃烘48 h，回潮24 h，称重计算初水分。将烘干的饲粮和粪样用粉碎机粉碎，然后过40目筛制成分析样品，参照《饲料分析及饲料质量检测技术》[8]测定干物质(DM)、粗灰分(Ash)、粗蛋白质(CP)、粗脂肪(EE)、总能(GE)、中性洗涤纤维(NDF)、酸性洗涤纤维(ADF)、钙(Ca)和磷(P)含量，并计算表观消化率。

某营养物质表观消化率(%)=[(该营养物质摄入量-粪中该营养物质含量)/该营养物质摄入量]×100。

乳蛋白率和乳脂率采用乳成分分析仪测定；乳中DM、Ash含量和GE参照《饲料分析及饲料质量检测技术》[8]测定，乳中Ca含量采用GB 5009.92—2016中乙二胺四乙酸二钠(EDTA)滴定法测定，P含量采用GB 5009.87—2016中钒钼黄分光光度法测定。

1.4.3 瘤胃发酵参数

所有羔羊在试验第0、3、9和15天时，于晨饲前采用口腔插管法采集瘤胃液，将消毒好的PVC管从羔羊口腔插到瘤胃内，用注射器抽取约40 mL，将采集到的瘤胃液用4层无菌纱布过滤后保存在离心管中，-20 ℃保存备用。

采用便携式pH检测仪测定瘤胃液pH。

参照冯宗慈等[9]改进的比色法，采用岛津UV-1700紫外可见分光光度计，在波长700 nm处测定吸光值，利用标准曲线求出瘤胃液氨态氮(NH3-N)浓度。

参照王加启[10]的方法，采用气相色谱法，将处理好的瘤胃液上清液用美国Agilent 7890A气相色谱仪测定瘤胃液总挥发性脂肪酸(TVFA)、乙酸、丙酸和丁酸的浓度。

1.5 统计分析

试验所有数据用Excel 2010进行初步整理后，采用SPSS 21.0软件对数据进行单因素方差分析，采用Duncan氏法进行多重比较，结果均以“平均值±标准差”表示，以P<0.05作为差异显著性判断标准；用一般线性模型(GLM)分析饲粮及时间的影响，显著性水平为P<0.05。

2 结 果

2.1 断奶期内不同饲粮对羔羊生长性能的影响

由表4可知，在试验第-7～0天，3组间羔羊ADG、DMI及CP、GE、EE、NDF、ADF采食量和料重比均差异不显著(P>0.05)。

表4 断奶期内不同饲粮对羔羊生长性能的影响

在试验第0～7天，试验1组羔羊ADG显著高于试验2组(P<0.05)，提高了87.93%，与试验3组差异不显著(P>0.05)；试验3组羔羊DMI显著高于试验1组(P<0.05)，提高了17.03%，与试验2组差异不显著(P>0.05)；试验1、3组CP采食量分别较试验2组显著提高了24.95%、33.06%(P<0.05)；试验1、2组GE采食量分别较试验3组显著降低了16.46%、14.62%(P<0.05)；3组间羔羊EE采食量差异不显著(P>0.05)；与试验1组相比，试验2、3组NDF、ADF采食量显著升高(P<0.05)，NDF采食量分别提高了32.31%、46.36%，ADF采食量分别提高了69.44%、68.02%；试验1组羔羊料重比分别较试验2、3组显著降低了47.72%、30.21%(P<0.05)，试验3组羔羊较试验2组显著降低了25.09%(P<0.05)。

在试验第8～15天，试验1、3组羔羊ADG分别比试验2组显著提高了61.67%、88.34%(P<0.05)；试验3组羔羊DMI较试验1、2组分别显著提高了25.34%、30.68%(P<0.05)；与试验1组相比，试验2组CP采食量显著降低了25.52%(P<0.05)，试验3组CP采食量显著提高了12.65%(P<0.05)，试验3组CP采食量较试验2组显著提高了51.24%(P<0.05)；与试验3组相比，试验1、2组GE、EE采食量显著降低(P<0.05)，GE采食量分别降低了21.04%、24.86%，EE采食量分别降低了20.83%、18.30%；与试验1组相比，试验2、3组NDF、ADF采食量显著提高(P<0.05)，NDF采食量分别提高了22.27%、53.72%，ADF采食量分别提高了56.59%、76.48%，试验3组NDF、ADF采食量分别较试验2组显著提高了25.73%、12.70%(P<0.05)；试验1、3组羔羊料重比分别较试验2组显著降低了35.59%、30.68%(P<0.05)。在试验第0～15天，试验1、2和3组羔羊腹泻率分别是3.81%、10.95%、7.14%；与试验1组相比，试验2、3组羔羊腹泻率分别提高了187.40%、87.40%。

2.2 断奶期内不同饲粮对羔羊营养物质表观消化率的影响

由表5可知，不同饲粮显著影响了羔羊EE、NDF和ADF表观消化率(P<0.05)，对DM、CP、GE、Ca和P表观消化率无显著影响(P>0.05)；断奶期内时间显著影响了羔羊DM、CP、EE、GE、NDF、ADF和Ca表观消化率(P<0.05)，对P表观消化率无显著影响(P>0.05)；处理与时间交互显著影响了羔羊NDF、ADF表观消化率(P<0.05)，对DM、CP、EE、GE、Ca和P表观消化率无显著影响(P>0.05)。

不同时间组间营养物质表观消化率分析结果：在试验第-7、3和9天，3组羔羊DM、GE表观消化率差异不显著(P>0.05)；在试验第15天，试验2组羔羊DM、GE表观消化率分别较试验1组显著提高了10.78%、8.33%(P<0.05)，与试验3组差异不显著(P>0.05)。在试验第-7、9和15天，3组羔羊EE表观消化率差异不显著(P>0.05)；在试验第3天，试验2、3组羔羊EE表观消化率分别较试验1组显著降低了12.43%、11.31%(P<0.05)。在试验第-7和3天，3组羔羊NDF、ADF表观消化率差异不显著(P>0.05)；在试验第9和15天，与试验1组相比，试验2、3组羔羊NDF、ADF表观消化率显著升高(P<0.05)。在试验第-7、3、9和15天，3组羔羊CP、Ca和P表观消化率差异不显著(P>0.05)

同组在不同时间营养物质表观消化率的分析结果：在试验1组，各时间羔羊DM、CP、EE、GE、NDF、ADF、Ca和P表观消化率差异不显著(P>0.05)。在试验2组，试验第15天羔羊DM和GE表观消化率显著高于试验第-7、3和9天(P<0.05)；试验第-7和15天羔羊CP表观消化率显著高于试验第3和9天(P<0.05)；试验第-7和15天羔羊EE表观消化率显著高于试验第3和9天(P<0.05)，试验第3天显著低于试验第9天(P<0.05)；与试验第-7天相比，试验第3、9和15天羔羊NDF表观消化率显著升高(P<0.05)，试验第3天羔羊NDF表观消化率显著低于试验第9和15天(P<0.05)；试验第-7和3天羔羊ADF表观消化率显著低于试验第9、15天(P<0.05)，试验第9天显著低于第15天(P<0.05)；试验第15天羔羊Ca和P表观消化率显著高于试验第-7、3天(P<0.05)，试验第9天与第-7、3、15天差异不显著(P>0.05)。在试验3组，各时间羔羊DM、CP、GE和P表观消化率差异不显著(P>0.05)；试验第-7天羔羊EE表观消化率显著高于试验第3天(P<0.05)，与试验第9、15天差异不显著(P>0.05)；试验第-7天羔羊NDF表观消化率显著低于试验第9、15天(P<0.05)，与试验第3天差异不显著(P>0.05)；试验第-7天羔羊ADF表观消化率显著低于试验第15天(P<0.05)，与试验第3、9天差异不显著(P>0.05)；试验第3天羔羊Ca表观消化率显著低于第15天(P<0.05)，与试验第-7、9天差异不显著(P>0.05)。

2.3 断奶期内不同饲粮对羔羊瘤胃发酵参数的影响

由表6可知，不同饲粮显著影响了羔羊瘤胃液pH、NH3-N、丙酸、丁酸浓度和乙丙比(P<0.05)，对TVFA、乙酸浓度无显著影响(P>0.05)。断奶期内时间显著影响了羔羊瘤胃液pH及TVFA、乙酸和丁酸浓度(P<0.05)，对NH3-N、丙酸浓度及乙丙比无显著影响(P>0.05)。饲粮与时间交互显著影响了羔羊瘤胃液pH和乙丙比(P<0.05)，对NH3-N、TVFA、乙酸、丙酸、丁酸浓度无显著影响(P>0.05)。

表6 断奶期内不同饲粮对羔羊瘤胃发酵参数的影响

不同时间组间瘤胃发酵参数的分析结果：在试验第0天，3组羔羊瘤胃液pH差异不显著(P>0.05)；在试验第3、9、15天，试验2、3组瘤胃液pH显著高于试验1组(P<0.05)。在试验第0、3、9、15天，3组羔羊瘤胃液NH3-N、TVFA浓度差异不显著(P>0.05)。在试验第0、3、15天，3组羔羊瘤胃液乙酸、丙酸浓度差异不显著(P>0.05)；在试验第9天，试验3组乙酸浓度较试验2组显著降低了31.15%(P<0.05)，与试验1组差异不显著(P>0.05)，试验1组瘤胃液丙酸浓度较试验3组显著增加了77.70%(P<0.05)，与试验2组差异不显著(P>0.05)。在试验第0、3天，3组羔羊瘤胃液丁酸浓度差异不显著(P>0.05)；在试验第9、15天，试验1组瘤胃液丁酸浓度显著高于试验2、3组(P<0.05)。在试验第0天，3组羔羊瘤胃液乙丙比差异不显著(P>0.05)；在试验第3天，试验1组瘤胃液乙丙比显著低于试验3组(P<0.05)，与试验2组差异不显著(P>0.05)；在试验第9天，试验1组瘤胃液乙丙比显著低于试验2、3组(P<0.05)；在试验第15天，试验2组瘤胃液乙丙比显著高于试验1、3组(P<0.05)。

同组在不同时间瘤胃发酵参数的分析结果：在试验1组，各时间羔羊瘤胃液pH及NH3-N、TVFA、乙酸、丙酸浓度和乙丙比差异不显著(P>0.05)；第3天羔羊瘤胃液丁酸浓度显著低于试验第15天(P<0.05)，与试验第0、9天差异不显著(P>0.05)。在试验2组，各时间羔羊瘤胃液NH3-N、TVFA、乙酸、丙酸和丁酸浓度差异不显著(P>0.05)；与试验第0天相比，试验第3、9、15天瘤胃液pH显著升高(P<0.05)；试验第0天瘤胃液乙丙比显著低于试验第15天(P<0.05)，与试验第3、9天差异不显著(P>0.05)。在试验3组，各时间羔羊瘤胃液NH3-N浓度差异不显著(P>0.05)；与试验第0天相比，试验第3、9、15天瘤胃液pH显著升高(P<0.05)，试验第9天瘤胃液pH显著高于试验第15天(P<0.05)，与试验第3天差异不显著(P>0.05)；试验第15天瘤胃液TVFA浓度显著高于试验第3、9天(P<0.05)，与试验第0天差异不显著(P>0.05)，试验第0天瘤胃液TVFA浓度显著高于试验第9天(P<0.05)，与试验第15天差异不显著(P>0.05)，试验第3天与第9天瘤胃液TVFA浓度差异不显著(P>0.05)；与试验第0、3、9天相比，试验第15天瘤胃液乙酸、丙酸浓度显著升高(P<0.05)；与试验第0天相比，试验第3、9天瘤胃液丙酸浓度显著降低(P<0.05)，试验第3天与第9天瘤胃液丙酸浓度差异不显著(P>0.05)；与试验第0天相比，试验第3、9、15天瘤胃液丁酸浓度显著降低(P<0.05)；试验第0、15天瘤胃液乙丙比显著低于试验第3、9天(P<0.05)。

3 讨 论

3.1 断奶期内不同饲粮对羔羊生长性能的影响

断奶是羔羊生长发育过程中的重要阶段，对于羔羊生长有重要影响，其中体重变化是评价羔羊生长发育的重要指标。王世琴[11]研究断奶应激对羔羊生长性能的影响，发现与断奶前0～7 d相比，21和49日龄断奶羔羊的采食量在断奶后1～7 d升高，但ADG在断奶后1～7 d显著降低。Chai等[12]研究断奶对羔羊生长发育的影响，发现与随母哺乳组相比，10和30日龄断奶羔羊在断奶后1～10 d的ADG显著降低，在断奶后11～20 d升高。有研究发现，30日龄断奶羔羊的ADG在断奶后1～10 d显著低于未断奶组[13]。以上研究表明，羔羊在断奶期内ADG降低。本试验中，在试验0～7天，未断奶组羔羊的ADG高于断奶组，DMI、NDF和ADF采食量低于断奶组，同时未断奶组的料重比显著低于断奶组，说明断奶导致的应激会降低羔羊生长，虽然断奶组DMI、NDF和ADF采食量高于未断奶组，但由于羔羊胃肠道发育未完全，加上断奶应激导致消化利用率低，因此有效缓解断奶应激对提高羔羊养殖效益至关重要。未断奶组羔羊在试验第8～15天ADG略低于第0～7天，可能是由于随着泌乳期延长泌乳量和品质下降导致。在试验第0～7天，TMR组羔羊的ADG和DMI低于50% TMR+50%羔羊精料补充料组，CP、GE采食量显著低于50% TMR+50%羔羊精料补充料组，料重比显著高于50% TMR+50%羔羊精料补充料组，可能是因为断奶后直接饲喂TMR，饲粮型变化较大，对羔羊应激较大，造成CP、GE摄入量降低，加之羔羊瘤胃未发育完善，对高纤维饲粮的消化利用率低。在试验第8～15天，50% TMR+50%羔羊精料补充料组羔羊ADG高于未断奶组，显著高于TMR组，DMI、CP、GE、EE、NDF和ADF采食量显著高于未断奶组、TMR组，未断奶组、50% TMR+50%羔羊精料补充料组羔羊料重比显著低于TMR组，说明羔羊断奶后饲喂50% TMR+50%羔羊精料补充料更有利于后续的生长发育，可能是因为断奶后饲喂TMR+羔羊精料补充料较直接饲喂TMR缓和，造成的应激相对较小，对瘤胃的影响更小，使羔羊对饲粮转变适应地更快，更有利于瘤胃发育，促进瘤胃发酵，提高瘤胃上皮VFA的吸收速率，进一步提高了营养物质采食量和ADG。

腹泻是羔羊生产中的一种常见疾病，尤其是受到母子分离、饲粮转换等应激影响，会造成抵抗力下降，腹泻率增加[14]。本试验中，与未断奶组相比，TMR组、50%TMR+50%羔羊精料补充料组羔羊腹泻率分别提高了187.40%、87.40%，说明断奶产生的应激造成腹泻率升高，可能是因为断奶应激造成羔羊免疫力下降，易受外界病菌的侵袭，增加腹泻率。TMR组羔羊腹泻率比50% TMR+50%羔羊精料补充料组更高，说明羔羊断奶后直接饲喂TMR对羔羊影响更大，可能是因为直接饲喂TMR饲粮型变化比较大，加之此时羔羊瘤胃发育不完全，导致羔羊消化不良，引起腹泻，造成生长性能下降。

3.2 断奶期内不同饲粮对羔羊营养物质表观消化率的影响

营养物质消化率反映了羔羊消化和利用饲粮中营养物质的能力[15]。柴建民等[13]研究断奶对羔羊生长性能的影响，发现在20、30日龄断奶的羔羊在断奶后10 d的营养物质消化率低于未断奶组。李冲[16]研究断奶对羔羊营养物质消化动态变化规律的影响，发现21日龄断奶羔羊在断奶后1～7 d的DM、CP、EE和ADF的表观消化率显著低于断奶前1～7 d。以上研究表明，断奶期内羔羊的营养物质消化率会降低。本研究中，在试验第3天，断奶组羔羊的EE表观消化率显著低于未断奶组，而其他营养物质表观消化率差异不显著，可能是因为未断奶羔羊采食母乳，而羊乳中含有更高比例的小脂肪球，且富含短中链脂肪酸，使乳脂更易被完全消化，提高了EE表观消化率[17]。在试验第15天，未断奶组羔羊DM、GE的表观消化率显著低于TMR组，可能是因为断奶导致的应激已经恢复，同时采食一段时间的固体饲粮刺激了胃肠道发育，提高了营养物质的消化率。也可能是由于采食15 d高NDF饲粮后，充分刺激了瘤胃发育，使瘤胃排空速度减慢，增加食糜在瘤胃内停留时间，提高其消化率[18]。在试验第9、15天，未断奶组羔羊的NDF、ADF表观消化率显著低于断奶组，可能是因为断奶组饲粮中NDF、ADF含量较高，随着采食量的增多，NDF、ADF表观消化率提高，有研究发现饲喂高纤维TMR的犊牛NDF、ADF消化率更高[19]，也可能是因为高水平NDF饲粮增加了羔羊咀嚼的时间，促进唾液分泌，进一步延长了瘤胃反刍时间，使瘤胃液pH升高，更有利于瘤胃内纤维分解菌的大量繁殖，从而提高NDF、ADF表观消化率。

与断奶前相比，断奶组羔羊的DM、CP、EE和GE表观消化率在试验第3天下降，之后升高，说明断奶会降低羔羊的营养物质消化，且在断奶1周内影响最大。TMR组羔羊的CP表观消化率在试验第3天显著低于试验第-7天，而50% TMR+50%羔羊精料补充料组变化不明显，说明断奶后饲喂50% TMR+50%羔羊精料补充料能够更好地应对断奶应激。TMR组羔羊的EE表观消化率在试验第3、9天显著低于试验第-7天，50% TMR+50%羔羊精料补充料组在试验第3天显著低于试验第-7天，说明断奶产生的应激降低了EE表观消化率，且饲喂50% TMR+50%羔羊精料补充料更有利于缓解断奶应激对羔羊生长发育的影响。TMR组羔羊的NDF表观消化率在试验第3、9、15天显著高于试验第-7天，50% TMR+50%羔羊精料补充料组在试验第9、15天显著高于试验第-7天，说明饲喂纤维含量高的饲粮能提高NDF消化率。

3.3 断奶期内不同饲粮对羔羊瘤胃发酵参数的影响

反刍动物主要依赖瘤胃发酵获取营养，瘤胃内环境的稳定直接影响营养物质的消化，瘤胃液pH及VFA和NH3-N浓度是反映瘤胃内环境稳定的重要指标[20-22]。瘤胃液pH能够评估瘤胃发育的状况，是反映瘤胃发酵最直观的指标，受饲粮类型、VFA发酵和瘤胃吸收速度以及食糜的排空速度等多种因素影响[23]。瘤胃液pH的正常变化范围为5.5～7.5，瘤胃液pH维持在一个正常范围是保证瘤胃正常发酵的前提[24]。Xiao等[25]研究不同饲粮类型对犊牛瘤胃发酵的影响，发现与断奶前相比，断奶前补饲精料组和精料+干草组瘤胃液pH在断奶后3 d升高，在断奶后15 d降低。李冲[16]研究发现，断奶显著提高了瘤胃液pH，断奶组羔羊的瘤胃VFA浓度显著低于未断奶组。Takemura等[26]研究不同饲粮对断奶前后荷斯坦犊牛瘤胃发酵参数的影响，发现断奶后饲喂开食料+青干草组犊牛断奶1周内瘤胃pH高于断奶前，而开食料组变化不大。以上研究表明，断奶应激会提高瘤胃液pH。本试验中，断奶组羔羊瘤胃液pH在试验第3、9、15天显著高于未断奶组，同时断奶组羔羊瘤胃pH在试验第3、9、15天显著高于试验第0天，说明断奶显著提高了瘤胃液pH，与以上研究结果一致。断奶组羔羊瘤胃液pH在断奶后先升高再降低，在试验第9天后开始下降，而断奶2组间差异不显著，说明2种饲粮对瘤胃液pH无显著影响，这与TVFA浓度变化一致，同时说明了羔羊在试验第9～15天适应了断奶环境，同时随着固体饲粮采食的增多，促进瘤胃降解饲粮产生更多的VFA，从而降低了瘤胃液pH[27]。

瘤胃NH3-N是由饲粮中蛋白质、非蛋白氮等含氮物质发酵产生，在一定程度上能够反映瘤胃氮代谢的水平[28]。瘤胃液中NH3-N浓度过高或过低都会对动物的健康造成影响，研究表明，瘤胃NH3-N浓度的适宜范围为6～30 mg/dL[29]。刘鹏等[28]研究发现，羔羊断奶前后2个时间段内瘤胃NH3-N浓度差异不显著。Wang等[27]研究发现，羔羊在断奶后5 d的瘤胃NH3-N浓度低于未断奶组，但差异不显著。有研究表明，采食母乳有增加瘤胃NH3-N浓度的趋势，断奶犊牛的瘤胃NH3-N浓度低于未断奶犊牛，但差异不显著[30]。以上研究说明，断奶对瘤胃NH3-N浓度影响不大。本试验中，3组羔羊在各时间点瘤胃液NH3-N浓度均处在正常范围内，未断奶组羔羊在各时间点瘤胃液NH3-N浓度与断奶组差异不显著，说明断奶对瘤胃液NH3-N浓度影响不大，与以上研究结果一致。TMR组羔羊瘤胃液NH3-N浓度在试验第3天低于试验第0天，而50% TMR+50%羔羊精料补充料组变化不大，说明断奶后饲喂50% TMR+50%羔羊精料补充料对瘤胃含氮物质发酵影响更小，可能是因为TMR中CP含量比50% TMR+50%羔羊精料补充料略低，同时TMR组羔羊CP采食量、表观消化率比50% TMR+50%羔羊精料补充料组低，造成TMR组断奶后瘤胃液NH3-N浓度下降。

VFA是反映瘤胃发酵的重要指标之一，反刍动物可将饲粮中的碳水化合物降解并转化为乙酸、丙酸、丁酸等VFA，为机体提供70%～80%的能量需求[20,29]。瘤胃VFA浓度主要取决于VFA产量和吸收速率，而VFA的吸收速率受食糜通过速率和瘤胃内容物的缓冲能力的影响[27]。Xiao等[25]研究早期不同饲粮类型对犊牛瘤胃发酵的影响，发现与断奶前相比，断奶前补饲精料组和精料+干草组瘤胃TVFA浓度在断奶后3 d降低，在断奶后15 d升高。Takemura等[26]研究不同饲粮对断奶前后荷斯坦犊牛瘤胃发酵参数的影响，发现与断奶前1周相比，开食料组犊牛断奶后1周内瘤胃VFA浓度下降，断奶后第2周开始升高。Kim等[31]研究断奶过渡期荷斯坦犊牛瘤胃发酵参数的变化，发现与断奶前1周相比，犊牛瘤胃液VFA浓度在断奶后先下降后升高。本研究中，未断奶组羔羊在各时间点瘤胃液TVFA浓度与断奶组差异不显著，但在试验第3天，断奶组羔羊瘤胃液TVFA、丙酸、丁酸浓度低于未断奶组，与羔羊试验第3天的营养物质表观消化率结果一致，断奶组羔羊试验第3天DM、CP、EE和GE表观消化率都低于未断奶组，说明断奶1周内对羔羊瘤胃液VFA浓度影响较大。

有研究表明，瘤胃TVFA浓度随固体采食量的增加而增加[27]。本研究中，断奶期内时间显著影响了瘤胃液TVFA浓度，表明随着日龄的增加TVFA浓度逐渐增加。与试验第0天相比，断奶组羔羊瘤胃液TVFA、乙酸、丙酸浓度在试验第3天下降，TMR组在试验第9天升高，说明断奶后饲粮的变化在1周内对瘤胃应激最大。但50% TMR+50%羔羊精料补充料组在试验第9天并未升高，可能是由于断奶后饲喂TMR+羔羊精料补充料对瘤胃造成的影响较小，羔羊对饲粮转变的适应较快，更有利于瘤胃发育，提高了VFA的吸收速率。

瘤胃的发酵类型与饲粮组成、来源等有关，当饲粮中粗饲料含量较多时，使瘤胃纤维分解菌成为优势菌群，可以提高瘤胃内乙酸浓度，以乙酸型发酵为主[5, 32]。当饲粮中淀粉含量相对较多时，分解淀粉的微生物占优势，使瘤胃内的丙酸浓度增多，以丙酸型发酵为主[33-34]。本试验中，在试验第3、9、15天，断奶组羔羊的瘤胃液乙丙比高于未断奶组，说明断奶后饲粮的转换使得羔羊瘤胃发酵类型发生转变。TMR组羔羊的瘤胃液乙丙比在断奶后逐渐增大，而50% TMR+50%羔羊精料补充料组在断奶后逐渐变小，是因为断奶后饲粮的改变使瘤胃菌群发生了变化，TMR中纤维含量较高，导致纤维分解菌成为优势菌，乙酸浓度增多，50% TMR+50%羔羊精料补充料组中淀粉含量相对较高，导致分解淀粉的微生物占优势，丙酸浓度升高。

4 结 论

断奶期内不同饲粮对羔羊瘤胃发酵及营养物质表观消化率的影响不同，在哺乳期补饲羔羊精料补充料的基础上，断奶后饲喂50% TMR+50%羔羊精料补充料饲粮更有利于羔羊瘤胃发育及营养物质的消化利用，可显著提高羔羊生长性能，在实际生产中具有应用价值。