郑瑞兵,张卉卉,应建飞,汪一萍
艰难梭菌(CD)属于厌氧芽孢杆菌,能以芽孢形式长期存活于土壤或水环境中,经粪-口途径传播,是抗生素相关性腹泻和医疗机构相关性腹泻重要病原体之一[1]。艰难梭菌感染(CDI)患者常表现为腹泻、伴或不伴腹痛及发热等症状,轻中度症状具有自限性,重度及暴发型感染患者则易引发全身症状,威胁患者生命健康[2]。我国CDI 发病呈现逐年上升趋势,作为我国丙类法定传染病的重要病原体之一,CD的诊断与检测技术评估,对疾病的二级预防具有重大意义[3-4]。社区获得性艰难梭菌感染(CA-CDI)是指在医院外罹患的CDI[5]。相关研究显示,社区获得性腹泻中CDI 率为14%,培养阳性率为5%~6%[6]。CD 的毒性主要来源于两大毒素,毒素A(tcd-A)为外毒素,结合肠黏膜刷状缘以破坏其正常生理结构;毒素B(tcd-B)发挥细胞毒作用,破坏肠上皮细胞的细胞骨架结构从而形成伪膜[7]。本研究选取社区来源非重复腹泻粪便标本,运用实时荧光定量PCR 法对tcd-B 基因进行扩增检测,评估实时荧光定量PCR 法直接检测粪便标本与“金标准”[产毒培养法(TC)+细胞毒性酶免疫分析(EIA)][8]诊断结果的差异,为进一步的CA-CDI 社区干预提供更多依据。现报道如下。
1.1 样本 选取2016年4-10月宁波市社区医疗机构就诊的具有社区暴露史的腹泻患者,符合:(1)腹泻发病前6 周无住院经历;(2)非重复有效腹泻标本;(3)具有CDI 临床诊断特征(危险因素+临床表现)[9];(4)社区暴露腹泻样本行CA-CDI检测,以TC+EIA为“金标准”[10]。排除:(1)具有医院暴露史;(2)重复腹泻标本。最终获得有效腹泻标本329例,并及时进行厌氧培养。其中男191例,女138例;年龄3 ~81岁,平均(42.1±25.6)岁。
1.2 方法
1.2.1 样本采集与运输 嘱被检测者于干燥清洁便盆内自然排便,以无菌采便管/盒挑取粪便中存在黏液、脓液或血液的部分4 ~6 g(液体粪便≥5 ml),4℃保存,24 h 内完成免疫学检测。
1.2.2 检测方法
1.2.2.1 实时荧光定量PCR 法(1)仪器与试剂:仪器选取实时荧光定量PCR仪(Cepheid,美国),试剂采用艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒[(tcd-B)XY-DT-D-1330,xuanya]。(2)方法:拭子蘸取少量待测样本插入含样品处理液的小瓶后震荡混匀,加样后按照试剂盒说明书操作,将反应体系放入荧光PCR 仪进行扩增,并于退火/延长过程中记录荧光信号。采用通用循环法,即以95℃10min 进行酶活化;95℃15s 进行变性,循环35 ~40 轮;60℃60s进行退火/延伸。(3)反应结束后,根据荧光信号与Ct 值判断扩增结果。
1.2.2.2 TC+EIA 鉴定(1)CD 培养:取约0.2 ml 粪便标本与Eugon 肉汤(美国BBL公司)1∶1 混匀,并于80 ℃加热10 min;接种环丝氨酸-头孢西丁-果糖琼脂平板(CCFA)和增菌肉汤,行35 ℃厌氧菌培养。如直接培养阴性可取变成红色的肉汤转移CCFA 继续培养并鉴定;CD在CCFA上呈白色或淡黄色不透明的扁平状“摊鸡蛋样”菌落,分离CD 菌株入-40 ℃低温冰箱保存。(2)EIA 鉴定:采用毒素A+B 抗原ELISA 试剂盒(C.difficile toxins A+B ELISA,ELA4448 DRG,96T),检测tcd-A、tcd-B。
1.3 统计方法 采用SPSS 22.0 统计软件进行分析。计量资料以均数±标准差表示,计数资料以n(%)表示,待评估检测手段与“金标准”诊断结果差异性检验采用McNemar 检验,一致性检验采用Kappa 分析。
2.1 329例社区暴露腹泻标本CA-CDI检测情况 艰难梭菌荧光PCR 检测共检测tcd-B阳性14例,阳性率为4.26%;其中包括1例荧光PCR 检测CA-CDI(+)但培养(-)标本。排除1例培养(+)但EIA 鉴定阴性标本,TC 法共获得产毒CD 17 株(5.17%),阳性菌株ELISA法定性测定毒素基因tcd-A 和tcd-B,15株标本为tcd-A(+)、tcd-B(+)样本;1 株为tcd-A(-)、tcd-B(+),1 株为tcd-A(+)、tcd-B(-)。
2.2 两种检测法对CA-CDI 检测效能比较 艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒(tcd-B)对CA-CDI 检测结果与“TC+EIA 鉴定”结果差异无统计学意义(P=0.375,双侧检验),一致性检验Kappa 值为0.831。艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒(tcd-B)对CA-CDI 检测灵敏度为76.47%,特异度为99.68%,见表1~2。
表1 实时荧光定量PCR与产毒培养对CACDI 检测结果比较 例
2.3 两种检测法对tcd-B检测效能比较艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒(tcd-B)对tcd-B 检测结果与“TC+EIA 鉴定”结果差异无统计学意义(P=0.625,双侧检验),一致性检验Kappa 值为0.860。艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒(tcd-B)对tcd-B 检测灵敏度为81.25%,特异度为99.68%,见表2~3。
表2 实时荧光定量PCR 对不同诊断目标的检测效能参数 %
表3 实时荧光定量PCR 与产毒培养对产毒基因tcd-B 检测结果比较例
CDI 是肠道菌群失调,进而产毒性CD大量繁殖并产生毒素导致的[11]。以往研究多着眼于医院CDI 的检测与治疗,关于的CA-CDI 研究相对较少[12-13]。本研究就是着眼于CA-CDI,分析在社区暴露腹泻患者群体中,病原分子生物学检测手段的检测效能。
现有的CDI 检测技术包括粪便厌氧培养、EIA、谷氨酸脱氢酶(GDH)检测及荧光定量PCR 检测等[14]。本研究选取实时荧光定量PCR 为主要待评估检测手段,以TC+EIA 为“金标准”进行比较,结果显示,艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒(tcd-B)检测CA-CDI 阳性率为4.26%;“金标准”检测CA-CDI 阳性率为5.17%(17/329),与以往研究中1%~7%的人群携带率相符[15]。出现1例实时荧光定量PCR 检测样本tcd-B(+)但培养(-)标本,考虑为运输及保存过程中空气暴露时间过长引起的假阴性结果。另有1例TC 法对样本CA-CDI 检测中培养(+),但进一步EIA 检测显示均为阴性,考虑源于TC 无法区分产毒与非产毒CD 的检测缺陷导致[16]。艰难梭菌荧光PCR 检测试剂盒(tcd-B)对社区暴露腹泻样本CA-CDI诊断灵敏度与特异度分别为76.47%和99.68%;对tcd-B 检测灵敏度与特异度分别为 81.25%和99.68%;与“金标准”检测一致性分别达到0.831 和0.860。这说明社区暴露腹泻样本CA-CDI 产毒基因tcd-B 的实时荧光定量PCR 检测效能较高,可代替TC 进行快速的独立检测。
总之,实时荧光定量PCR 技术检测粪便样本,具有简单快捷且准确率高等优点,对CA-CDI诊断效能良好,方便在基层医疗单位广泛应用。