文│张耀文(新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市动物疾病控制与诊断中心)
蔡扩军(新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市动物疾病控制与诊断中心、新疆农业大学动物医学学院)
徐敏*(新疆维吾尔自治区乌鲁木齐市动物疾病控制与诊断中心、乌鲁木齐市奶业协会)
新疆是我国第一大骆驼养殖基地,现有骆驼25万峰,现代科学研究表明,驼乳不但营养价值高,且富含不饱和脂肪酸、维生素等营养成分,易被消化吸收,而且含有天然胰岛素、胰岛素蛋白质等降血糖因子,对糖尿病治疗有一定功效。另外,驼奶中的乳铁传递蛋白、溶解酵素、免疫球蛋白可提高人体免疫力,是免疫力低下者的理想饮品。由于驼乳的价值逐渐被广大消费者认可,使得驼乳行业飞速发展,供不应求。但驼乳的质量安全应引起广大科研工作者的重视。
Escherich在1885年发现了大肠杆菌,又叫大肠埃希氏菌。大肠杆菌是常在的条件性人畜共患病致病菌,又是重要的食源性细菌,在一定条件下可以引起人和动物局部组织器官感染。动物产品中大肠杆菌的污染给消费者带来了安全隐患,其中乳源性大肠杆菌的危害已引起人们的极大关注,牛乳中大肠杆菌污染较多,而驼乳中大肠杆菌的污染报道极少。鉴于此,为调查本地生驼乳中大肠杆菌的污染情况,本研究利用荧光PCR快速检测方法对生驼乳中大肠杆菌的污染情况开展调查,为保障驼乳质量安全,促进驼乳产业的健康快速发展提供技术支撑。
1.主要试剂。大肠杆菌荧光PCR检测试剂盒购自深圳澳东检验检测科技有限公司;EC肉汤购自北京陆桥技术股份有限公司。
2.主要仪器。荧光PCR仪(ABI 7500型)购自美国ABI公司;生物安全柜;细菌培养箱。
3.大肠杆菌的分离、检测。
(1)样品采集。采集生鲜驼奶90份,样品放入含有冰袋的运输箱内低温运输至实验室。
(2)检验程序。
(3)操作步骤,见图1。
增菌:无菌取25毫升生驼奶样品放入三角瓶,再加入225毫升的EC肉汤,36±1℃培养18~24小时。
提取样品DNA:取1毫升菌液加到1.5毫升无菌离心管中,13000转/分离心5分钟,弃上清,加入50微升DNA提取液悬浮沉淀,充分混匀后沸水浴10分钟,13000转/分离心5分钟,离心后取上清作为DNA模板检测或保存于-20℃待检测。阴性对照参与提取,以对环境进行监控。阳性对照无需提取,直接使用。
反应组份配制:按照大肠杆菌荧光PCR检测试剂盒的说明书将样品DNA、核酸扩增反应液、反应液、HS-Taq酶加至反应管内,反应总体积为25微升,同时设置阴性和阳性对照。
PCR扩增:将配置好反应液的反应管置于荧光PCR仪器中,扩增程序为预变性95℃ 3分钟、变性95℃5秒、退火/延伸60℃ 40秒,40个循环。荧光信号采集设定在退火/延伸时。对于多通道荧光PCR仪,选择荧光素FAM为信号采集通道,淬灭基团选None,染料校正选None。
(4)结果描述及判定。
阴性:无Ct值并且无扩增曲线,表示样本阴性或者被检测样本核酸浓度含量低于1×102copies/毫升。
阳性:Ct值≤30,且出现明显的指数增长期,表示样本阳性。
可疑:检测样本30<Ct<35时重复一次。如果Ct值仍小于35,且曲线有明显的指数增长期,可报告样本阳性,否则报告样本阴性或被检测样本核酸浓度含量低于1×102copies/毫升。
对照:阴阳性对照必须成立,否则此次实验视为无效。
根据大肠杆菌荧光PCR检测试剂盒说明书进行结果判定,结果显示,该试验阴阳性对照成立,本批次一共检测样品90份,其中18份阳性,72份阴性,阳性率20%。
近年来,驼乳在疾病辅助治疗、营养保健、提高免疫力等方面的研究不断深入,越来越受到广大消费者的认可,同时驼乳的质量安全也引起了广泛关注。驼乳中大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、无乳链球菌等微生物污染是影响质量安全的重要因素,大肠杆菌是环境中常在的条件性致病菌,驼乳可通过外源性污染和骆驼的内源性感染造成其携带大肠杆菌,对消费者身体健康造成影响,具有一定的公共卫生安全隐患。本研究结果显示,驼乳中大肠杆菌的阳性率为20%,虽然检出率显著低于全国牛乳中大肠杆菌检出率的平均水平,但应引起相关部门的重视。由于骆驼一般采取传统手工挤奶方式,易造成大肠杆菌的污染,建议相关部门制定骆驼挤奶技术规范,降低因挤奶不卫生而造成的外源性污染。
大肠杆菌的检测技术主要包括对核酸、繁殖代谢产物、特异性抗体等进行检测,其中针对核酸DNA的PCR技术在检测中得到广泛应用。荧光PCR方法是指在PCR反应体系中加入荧光基团,随着PCR扩增的进行,反应产物不断累积,荧光信号强度也等比增加,最后通过荧光强度变化监测产物量的变化,从而得到一条荧光扩增曲线图,对PCR进程进行实时检测。本研究利用荧光PCR技术,其操作方便快捷,具有较强的特异性和较高的灵敏度,实现了对生驼奶中大肠杆菌的快速检测,为生驼乳中大肠杆菌的污染调查提供了技术支持。