肖雪莲,刘润坤,涂康生
(西安交通大学第一附属医院肝胆外科,陕西西安710000)
原发性肝癌是世界第五大常见肿瘤,其中75%~85%为肝细胞癌(HCC),而中国该病发病例数约占全球的45.3%[1]。尽管现有治疗手段如手术切除、局部射频消融治疗和介入治疗等取得了不错的进展,但由于较高的复发和转移率,HCC 患者的5年生存率仍不到12%[2]。越来越多的研究表明在HCC 中存在大量分子的异常表达,在癌症进程中发挥重要的调控作用[3-4]。进一步探索HCC 进展的机制将有助于治疗方法的改进,最终改善患者预后。
实体肿瘤中,由于肿瘤细胞的快速增长对氧的大量消耗导致缺氧微环境的产生,缺氧进一步诱导肿瘤细胞适应性地表达缺氧诱导因子1α(hypoxia-inducible factor-1α,HIF-1α),而HIF-1α 参与调控多种靶基因的表达,进而促进肿瘤细胞的多种恶性生物学行为[5-6]。长链非编码RNAs(long non-coding RNAs,lncRNA)是一类长度>200 核苷酸的非编码RNA,在包括HCC 在内的多种肿瘤中表达紊乱,并影响患者预后[7-8]。研究[9-10]发现,缺氧不仅可以调控蛋白编码基因的表达,同时也可以诱导lncRNA 的表达。缺氧诱导的lncRNA 表达可通过多种机制影响细胞的增殖、迁移和代谢,进而影响患者预后[11-12]。然而,仍有很多缺氧反应性lncRNA,以及这些lncRNA 调控肿瘤进程的机制有待发现。本研究通过芯片发现了HCC 细胞中的缺氧反应性lncRNA AC114803,并进一步探索了其对HCC 生物学功能的影响及可能的机制,以期更好地理解HCC 进展的分子机制。
本研究下载了TCGA 数据库(https://portal.gdc.cancer.gov)中HCC 的转录组数据(HCC 组织374 例,正常组织50 例),同时获取了患者的生存时间。
人HCC 细胞系HCCLM3 和Hep3B 购买于中科院上海细胞库,缺氧培养箱(PHCbi),Dulbecco 的改良Eagle 培养基(Dulbecco's Modified Eagle Medium,DMEM) (Sigma), 青霉素- 链霉素双抗(HyClone),胰酶及胎牛血清(Gibco),RNA 提取试剂TRIzol(Life technologies),RNA 反转录试剂盒(ThermFisher), SYBR Premix Ex Taq ™ II Kit(Takara),AC114803 过表达质粒和阴性对照质粒、AC114803 引物,18S 引物(北京擎科),RIPA 细胞裂解液,BCA 蛋白定量试剂盒,5×蛋白示踪缓冲液,转染试剂lip8000,CCK-8 试剂盒(碧云天),聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜,增强化学发光(enhanced chemiluminescent,ECL)试剂(Millipore),N-cadherin,E-cadherin,vimentin,β-actin 抗体(Proteintech),bcl-2,bax,CCND1 抗体(Santa Cruz)。
1.3.1 细胞培养 人HCC 细胞HCCLM3 和Hep3B 培养于含1%双抗、10%胎牛血清的DMEM 培养基中,并放置于5%CO2或1%O2的37 ℃培养箱中培养。
1.3.2 lncRNA 芯片 Hep3B 细胞分别在常氧(20%O2)和缺氧(1%O2)条件下培养48 h,然后,使用TRIzol 试剂从Hep3B 细胞中分离总RNA,通过NanoDrop ND-1000 测量RNA 数量和质量。根据制造商的标准方案,应用上海数谱生物的Arraystar Human LncRNA Arrays V5 芯片鉴定不同培养条件下Hep3B 表达的lncRNA 和 mRNA。 芯片数据(GSE155505)被上传到GEO 数据库。
1.3.3 细胞转染 将处于生长对数期的HCCLM3 和Hep3B 细胞计数,按照3×105个细胞/孔接种于6 孔板中,待细胞融合度达约50%时进行转染。按照lip8000 试剂转染说明书,将2.5 μg AC114803 质粒或阴性对照质粒稀释至125 μL 无血清培养基,4 μL lipo8000 稀释至125 μL 无血清培养基,两者混合后加入6 孔板细胞中,24 h 后换液,继续培养至48 h。48 h 收取细胞并提取RNA 进行qRT-PCR 检测转染效率,同时收取细胞并提取蛋白进行蛋白质免疫印记实验,其余细胞进行后续功能学试验。
1.3.4 RNA 提取和qRT-PCR 参照TRIzol 说明书将TRIzol 加入细胞中提取总RNA。用核酸仪测定RNA 浓度后,取1 μg RNA 按PrimeScript RT 试剂盒说明书将RNA 逆转录为cDNA,反应条件为:16 ℃30 min,42 ℃30 min,72 ℃10 min。取3 μL cDNA按照SYBR Premix Ex Taq™II Kit 说明书进行qRTPCR,反应条件为:98 ℃10 min,98 ℃10 s,60 ℃30 s,72 ℃30 s,共50 个 循环。反转录及qRT-PCR 在BIO-RAD CFX96 上进行。AC114803 正向:5'-CCT CTG GGG ACT TGG ACT GAT-3',反向:5'-TGC TCT GG TGT CCT CTC TGT A-3';以 人18s 为内参,18s 正向:5'-CGG CGA CGA CCC ATT CGA AC-3',反向:5'-GAA TCG AAC CCT GAT TCC CCG TC-3'。采用2-ΔΔCt法计算AC114803 的相对表达量。
1.3.5 CCK-8 试验 细胞转染48 h 后按5 000 个/孔接种于96 孔板,每组实验设5 个复孔。于5% CO2、37 ℃培养箱中培养0、24、48、72 h 后,每孔加入10 μL CCK-8 试剂,培养箱孵育1 h,酶标仪测定450 nm 波长处的吸光度值(OD 值)。
1.3.6 细胞划痕试验 细胞转染48 h 后,用枪头在每孔细胞中十字交叉画出4 条直线,PBS 洗涤细胞,加入新鲜培养液,拍照,此时为0 h,继续培养48 h 后拍照为48 h。细胞迁移率=(宽度0h-宽度48h)/宽度0h×100%。
1.3.7 Western blotting 试验 按照RIPA 试剂盒步骤,在4 ℃条件下充分裂解细胞提取总蛋白。采用BCA 法进行蛋白定量,取20 μg 总蛋白加入5×上样缓冲液后100 ℃煮沸5 min 变性蛋白。将变性蛋白质在10% SDS 聚丙烯酰胺凝胶上电泳后转印至PVDF 膜,用5%封闭牛奶封闭2 h,膜与一抗(Ncadherin:1∶2 000;E-cadherin:1∶2 000;vimentin:1∶1 000;bcl-2:1∶1 000;bax:1∶1 000;CCND1:1∶1 000;β-actin:1∶2 000)4 ℃孵育过夜,将膜与二抗(1:3 000)室温孵育1 h,用ECL 发光液显影,最后用Amersham™Imager 680 凝胶成像仪拍照。
采用SPSS 22.0 软件对数据进行分析。符合正态分布、方差齐性的计量资料的两组间比较使用t检验,方差不齐性计量资料的两组间比较使用非参数检验。表达量采用均数±标准差(±s)表示。根据AC114803 表达中位值将患者分为高、低表达组,使用R 语言的survival 包绘制生存曲线,采用Kaplan-Meier 法计算其与生存的相关性。P<0.05 视为差异有统计学意义。
将Hep3B 细胞缺氧处理48 h 后通过芯片检测缺氧相关的lncRNA,结合TCGA 预后分析,图1A展示了与HCC 患者预后有关的缺氧诱导变化倍数较大的lncRNA。通过qRT-PCR 进一步验证,发现在HCC 细 胞HCCLM3 和Hep3B 中 仅AC114803 可 被缺氧诱导表达(图1B-C)。
通过TCGA 数据分析发现AC114803 在HCC 组织中表达水平明显高于正常组织,差异有统计学意义(P<0.05)(图2A)。根据AC114803 表达中位值将患者分为高表达组和低表达组,采用Kaplan-Meier 法计算其与总生存时间的相关性,生存曲线显示,AC114803 高表达组患者的总生存率明显低于AC114803 低表达组(P<0.05)(图2B)。以上结果提示AC114803 在HCC 中可能发挥促癌作用。
在 HCC 细胞 HCCLM3 和 Hep3B中转染AC114803 过表达质粒和阴性对照质粒,用RTqPCR 检测转染效率,结果显示AC114803 质粒组和阴性对照组的AC114803 相对表达量分别是345 310±27 377 和1.000±0.271(HCCLM3),70 510±2 589 和1.000±0.164(Hep3B),差异均有统计学意义(均P<0.05)( 图3A-B)。 通 过CCK-8 试验检测AC114803 对细胞增殖能力的影响,结果显示,自转染后第3 天,AC114803 过表达组细胞增殖能力明显增加,差异均有统计学意义(均P<0.05)(图3C-D),提示过表达AC114803 可以促进HCC 细胞的增殖能力。
为了进一步探索AC114803 对细胞迁移能力的影 响, 在HCC 细 胞HCCLM3 和Hep3B中转染AC114803 过表达质粒和阴性对照质粒48 h 后进行细胞划痕试验。结果显示AC114803 质粒组和阴性对照组的细胞迁移率分别为0.490±0.018 和0.296±0.084 (HCCLM3), 0.507±0.065 和 0.312±0.056(Hep3B),差异均有统计学意义(均P<0.05)(图4A-B),提示过表达AC114803 可以促进HCC 细胞的迁移能力。
为了揭示AC114803 促进HCC 细胞增殖和迁移能力的潜在机制,在HCC 细胞HCCLM3 和Hep3B 中转染了AC114803 过表达质粒和阴性对照质粒,48 h后检测了细胞增殖和迁移相关蛋白的表达。结果显示AC114803 过表达组间叶细胞标志物N-cadherin和vimentin 表达上调,而上皮细胞标志物E-cadherin表达下调,提示AC114803 可能通过促进上皮间质转化过程促进细胞的迁移;同时发现AC114803 过表达组抗凋亡蛋白bcl-2 表达上调而促凋亡蛋白bax表达下调,细胞周期蛋白CCND1 表达上调,提示AC114803 可能通过抑制细胞的凋亡、调控细胞周期促进HCC 细胞的增殖(图5)。
HCC 中存在大量基因的表达紊乱,包括编码基因和非编码基因[13]。lncRNA 作为非编码基因,在HCC 中常异常表达并参与调控肿瘤进程[14-15]。肝肿瘤中常存在不同程度的缺氧,并导致HIF-1α 适应性的激活,从而改变下游靶基因的表达[5,16]。因此,进一步地探索缺氧反应性lncRNA 与HCC 的关系将有助于更好地理解HCC 发生发展的分子机制[17-18]。本研究通过芯片检测发现缺氧可诱导Hep3B 细胞中多种lncRNA 的表达,并进一步通过qRT-PCR 在HCC 细胞中验证发现了一个新的缺氧诱导性lncRNA AC114803。通过TCGA 数据分析发现AC114803 在肿瘤组织中表达上调,其高表达与患者预后不良有关,提示AC114803 可能参与调控HCC 的疾病进程。研究报道多种缺氧反应性lncRNA 如AC099850.4、MIR210HG 和NRAV可联合作为HCC 的独立预后标志物[19]。这些研究结果表明缺氧反应性lncRNA 可能参与调控了肿瘤进展,进而影响患者预后。
缺氧反应性lncRNA 通过影响肿瘤的多种生物学行为调控肿瘤进展,如肿瘤细胞的增殖、迁移、血管侵犯、代谢特性等[11-12,20]。 本研究发现AC114803 可促进HCC 细胞的增殖和迁移,进一步机制探索发现AC114803 促进抗凋亡基因bcl-2 表达,而抑制促凋亡基因bax 表达,同时促进细胞增殖标志物CCND1 的表达,提示AC114803 可能通过抑制细胞的凋亡促进细胞的增殖。多个研究表明缺氧诱导lncRNA 表达上调,并通过不同机制促进肿瘤细胞的增殖。Wang 等[21]研究发现MIR31HG 通过靶向作用于HIF-1α 和P21 调控细胞周期进程,抑制细胞凋亡,从而促进头颈癌细胞的增殖。Zhou 等[22]研究发现HIF-1α 可以激活lncRNA RAET1K 转录,RAET1K 沉默显著抑制HCC 细胞增殖和侵袭并阻断缺氧诱导的乳酸浓度和葡萄糖摄取的增加,提示缺氧诱导性lncRNA 可能作为潜在的治疗靶点。另外,本研究发现AC114803 可促进间叶细胞标志物N-cadherin 和vimentin 的表达,而抑制上皮细胞标志物E-cadherin 的表达, 表明AC114803 可能促进HCC 细胞的上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)过程,减弱细胞的黏附能力,从而促进细胞的迁移。EMT 是上皮细胞获得间质细胞特征的过程,在上皮肿瘤中常被激活,从而促进肿瘤细胞迁移、肿瘤干性和化疗抵抗等[23-24]。lncRNAs 可通过调控EMT 过程影响肿瘤进展,研究发现lncRNA-PNUTS 通过靶向作用于miR-205 激活乳腺癌细胞的EMT 过程,表现为vimentin 表达增强和E-cadherin 表达减弱,最终促进癌细胞的迁移和侵袭[25]。
由于缺氧可诱导HIF-1α,HIF-2α 等多种分子表达上调[26],后期需要进一步探索缺氧是通过何种机制诱导AC114803 的表达。lncRNA 可竞争性结合相应的miRNA 而相互调控[27-28],也可以通过表观遗传学调控基因的表达等机制影响细胞的增殖、分化和凋亡等多种生物学行为[29-30],故下一步需要探究AC114803 具体通过哪个靶点来调控增殖和迁移相关蛋白的表达。
总之,本研究新发现了HCC 中的缺氧诱导性lncRNA AC114803,其高表达导致患者预后不良,这可能与AC114803 促进HCC 细胞的增殖和迁移能力有关。
利益冲突:所有作者均声明不存在利益冲突。