费菜组织培养体系的探讨

2021-09-15 03:08谢久凤张寒蕾闫睢豪郭阳阳杨亚昕李海霞
浙江农业科学 2021年9期
关键词:丛生壮苗生根

谢久凤, 张寒蕾, 闫睢豪, 郭阳阳, 杨亚昕, 李海霞

(河南农业大学 生命科学学院,河南 郑州 450002)

费菜又称土三七、景天三七,是景天科景天属多年生草本植物,含有丰富的黄酮类、生物碱、氨基酸、谷甾醇、维生素以及多种糖类物质,且作为食物口感极佳,具有极高的观赏价值、药用价值及食用价值[1-2]。费菜富含的黄酮类物质具有抗炎、抗氧化、抗病毒、改善记忆、调节血管渗透性、防治慢性疾病、保护DNA及抑制肿瘤细胞生长等功效,具有很高的药用价值[3-5]。市场对费菜的需求量很大,而传统的扦插和分株繁殖方式较难实现工业化大规模生产。关于费菜叶片组织培养目前鲜见报道,繁殖以扦插和分株为主,但易受季节和外界环境的影响,存在繁殖系数低、幼苗质量差和生根难的问题,严重制约着大规模的种植。利用组织培养技术可解决繁殖难问题,本试验以费菜叶片为外植体进行再生培养,建立组培快繁体系,以满足市场需求。

1 材料与方法

1.1 材料

费菜采购于郑州市陈寨花卉市场,均为健康植株。植物生长调节剂为6-BA,NAA,以75%乙醇、氯化汞进行材料消毒。

1.2 方法

采集新鲜的费菜嫩叶片→自来水加入洗洁精进行清洗→自来水冲洗5 min→蒸馏水浸泡5 min→超净台无菌环境中用75%乙醇浸泡10 s→无菌水清洗4~5次→0.1%氯化汞浸泡3~5 min→无菌水冲洗4~5次→无菌滤纸吸干水分备用。

1.2.2 培养基配制

以MS为基础培养基,配制不同培养基。

愈伤组织诱导培养基。设6个处理,T1~T3分别为6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.1、0.2、0.3 mg·L-1;T4~T6分别为6-BA 3.0 mg·L-1+NAA 0.1、0.2、0.3 mg·L-1。

丛生芽诱导培养基。设6个处理,M1~M3分别为6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.2、0.4、0.6 mg·L-1;M4~M6分别为6-BA 3.0 mg·L-1+NAA 0.2、0.4、0.6 mg·L-1。

壮苗培养基。MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1。

生根培养基。1/2MS+NAA 0.1 mg·L-1。

以上培养基pH值为5.8,于115 ℃下灭菌30 min,倒入无菌组培瓶中,每瓶20~25 mL(生根培养基每瓶倒30 mL)。

5.3 去雄。为节省养分,将有限的养分集中供给植株生长发育,因此,玉米拔除多余分蘖应及早进行,以降低养分损耗,同时还可以避免损伤主茎。玉米去雄可减少植株体内的营养消耗,促使光合产物和矿物营养向雌穗输送,使穗大、粒多、子饱。去雄后,一般可增产10%左右。人工辅助授粉可减少秃顶、缺粒,一般可增产8%~10%。在玉米进入蜡熟末期,扒开玉米果穗苞叶,以促进玉米早熟,进行田间降水,提高玉米品质。

1.2.3 愈伤组织诱导培养

在无菌环境下用刀片和镊子将叶片切成直径1~2 cm的小块,背面朝上平整放入组培瓶的愈伤组织诱导培养基上,每瓶放3~4块,每个浓度做20瓶,最后将组培瓶放入人工气候培养箱中,23 ℃黑暗培养3 d后打开灯光,光照强度1 500~2 000 lx,光照培养12 h,第10和20天时观察愈伤组织生长情况,30 d后统计愈伤组织生长结果,计算不同激素浓度配比下愈伤组织诱导率。

1.2.4 丛生芽诱导培养

选取上述最佳的配比处理的松软、绿色、生长状态好的外植体,切成0.5 cm见方小块,转移至丛生芽诱导培养基上,每种浓度转接10瓶,每瓶转接4~5块外植体。在人工气候培养箱中23 ℃、光照强度1 500~2 000 lx,每天光照12 h培养。在培养10和20 d后观察丛生芽的生长情况,30 d时计算出芽率。

1.2.5 壮苗和生根培养

将获得的丛生芽切割成单芽,接种到壮苗培养基上进行壮苗培养,光照12 h、光照强度1 500~2 000 lx、23 ℃培养20~25 d后,选取生长高度4~6 cm、具有3~4片叶的幼苗,将其从基部切下,转至生根培养基上进行生根培养。

1.2.6 炼苗与移栽

生根培养10~20 d后,当组培苗长出5~6片叶、7~8条根时,将组培瓶从人工气候培养箱中取出,放置阳光能照射的外界环境中适应3~4 d,然后取下瓶盖炼苗3~4 d,往瓶中加入温水溶解培养基,用镊子轻轻取出小苗,用清水洗净根部黏附的琼脂,待晾干后栽入经灭菌处理的草炭土、蛭石、珍珠岩等体积混合基质中,并计算成活率。

2 结果与分析

2.1 愈伤组织的诱导

由图1可见,接种10 d后,在外植体切口处萌发出半透明状的绿色水珠样的微小胚状体,随后从胚状体中央抽出带绒毛的小芽,分化出具有胚芽、胚根、胚轴的胚状结构,进而生长成完整的小植株,25 d时统计诱导情况。由表1可知,T2的胚状体生长状态最好,芽体浓绿,出芽量多,健壮紧凑,故T2培养基是费菜愈伤组织诱导最适合的培养基。

图1 费菜胚状体生长情况

表1 不同培养基对愈伤组织诱导的影响

2.2 丛生芽诱导培养结果

由图2可知,费菜胚状体诱导芽培养至第10天时,丛生芽大量生长,逐渐形成完整植株,25 d时已经完全长成小植株。由表2可知,M3培养基诱导率为100%,丛生芽量多,苗健壮,生长旺盛,叶片浓绿,是费菜丛生芽诱导最适培养基。

图2 费菜丛生芽诱导情况

表2 不同培养基对丛生芽诱导的影响

2.3 壮苗和生根培养

选取生长最佳的费菜丛生芽,将其从基部切割,转至壮苗培养基上进行壮苗培养。由图3可见,培养20 d时,株高达4~5 cm,叶片浓密。将单个幼苗从基部切割转至生根培养基上进行生根培养,10 d后观察发现,幼苗基部开始形成10条左右细根;继续培养至第20天,每个幼苗下形成大量细根和须根,生根率达100%。

图3 费菜壮苗培养与生根培养

2.4 炼苗与移栽

生根培养20 d后,将组培瓶从人工气候培养箱中取出,置于外界环境中适应4 d,然后取下瓶盖炼苗4 d,并往组培瓶中加入温水溶解培养基,用镊子轻轻取出小苗,用清水洗净根部黏附的琼脂,待晾干后栽入经灭菌处理过的草炭土、蛭石、珍珠岩等体积比的混合基质中。培养30 d后,费菜成活率达90%。

3 小结与讨论

有研究选用费菜茎段进行离体快繁研究。罗林会等[6]以费菜茎段为材料,以MS+6-BA 1.00 mg·L-1+NAA 0.03 mg·L-1作为芽增殖培养基和生根培养基;何碧株等[7]以费菜的茎段进行离体快繁,芽诱导培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L-1,芽增殖培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L-1+IAA 1.0 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1,生根培养基为1/2MS+IBA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1。本研究得出,费菜叶片愈伤组织诱导最适宜培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.2 mg·L-1,丛生芽诱导最适宜培养基为MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.6 mg·L-1,壮苗培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1,生根培养基为1/2MS+NAA 0.1 mg·L-1。

费菜组培不是分化出愈伤组织,而是半透明状的胚状体形成微小绿水珠状结构堆积在一起,即由愈伤组织中的薄壁细胞不经过有性生殖过程,直接产生类似于胚的结构;继续分化时,会从胚状体中央抽出带绒毛的小芽,进而发育成小植株。愈伤组织的形态发生方式主要有不定芽方式和胚状体2种,胚状体方式比不定芽方式有更多的优点,如胚状体产生的数量比不定芽多,因其可直接生长成小植株,成苗率较高。由于胚状体的维管束是独立产生的,与母体维管束不相连,因此,可得到无病毒植株。费菜的常规繁殖系数低,生长缓慢。本试验的组织培养技术可在短期内获得大量试管苗,生长迅速,性状优良,且移栽成活率高,可实现费菜规模化生产。

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