考氏鳍竺鲷（Pterapogonkauderni）繁殖技术

李飞 高欣东 刘小沙 李妹妍

摘要：为减少野生考氏鳍竺鲷（Pterapogonkauderni）做为海水观赏鱼的捕捞量，保护海洋野生动物种质资源，增加考氏鳍竺鲷市场供应量，使用野生考氏鳍竺鲷作为亲鱼，进行了考氏鳍竺鲷繁育技术研究，主要技术包括野生成鱼选择及驯养、成鱼配对、亲鱼促熟、产卵及护卵管理、受精卵孵化及苗种培育。

关键词：考氏鳍竺鲷（Pterapogonkauderni）;亲鱼培育;苗种培育

考氏鳍竺鲷（Pterapogonkauderni），又名泗水玫瑰、峇里天使、长鳍玫瑰、珍珠飞燕，属于鲈形目，天竺鲷科，鳍竺鲷属[1]，仅分布于印度尼西亚东部的班达群岛近岸珊瑚礁区域，集小群活动，初孵仔鱼常在海葵中生活，成年鱼在珊瑚和海胆附近活动，尤其喜欢魔鬼海胆，海胆长而尖利的刺，可以为其提供天然的庇护场所[2-3]。考氏鳍竺鲷不仅拥有夸张的外表，细长色彩艳丽的鱼鳍上整齐地排列着点状白斑，有如星光璀璨的珍珠，受到了世界各地水族爱好者的追捧，市场需求量不断增加。由于每年捕捞超过100万条，加之其分布范围较窄，十多年来野外种群减少了90%，现已在世界自然保护联盟濒临灭绝物种危急清单中列为“濒危”物种，成为海水观赏鱼中的“大熊猫”。笔者在2019年开始进行考氏鳍竺鲷繁养殖技术研究，于2020年8月第一次孵化仔鱼成功。人工繁殖考氏鳍竺鲷这一海水观赏鱼不仅可以缓解成鱼来源紧张的局面，提高玩家饲养成活率，同时也可以减少考氏鳍竺鲷野外捕捞量，保护野生动物资源。目前，国内鲜有考氏鳍竺鲷繁养殖技术方面的研究报告，因此开展考氏鳍竺鲷人工繁殖技术的研究，不仅可以为考氏鳍竺鲷规模化人工繁殖工作奠定基础，还可以丰富珊瑚礁鱼类的繁殖生物学研究。

1亲鱼来源和暂养

1.1亲鱼来源

目前市场上销售的考氏鳍竺鲷全部以海洋捕捞为主，且多以炸鱼、毒鱼等方式捕捞[4]。由于藥物残留和经过长途运输，进入国内市场的考氏鳍竺鲷体质较弱，经常是回货后，鱼的成活率非常高，但是养不住，莫名其妙地偷死，加之考氏鳍竺鲷从外部形态看雌雄难辨，所以在选择亲鱼时，为了保证配对成功率，需购进一定数量的个头大、体制健壮、活力强、色泽鲜艳、无损伤的成鱼作为后备亲鱼。笔者在2019年8—9月，从广州花地湾几个渔场先后购买3批野生成鱼，共计16尾，全长4～6cm，空运到货当天基本无死亡，但是一周以后开始陆续出现死亡现象，推测原因一是由于该鱼的领地意识较强，鱼之间争斗致死;二是由于野蛮的捕捞方式，致使鱼内脏受损无法恢复致死;三是由于鱼不好动且视力较差，驯食未成功，饥饿而死。

1.2成鱼暂养

野生成鱼到达养殖场地后，首先将密封的鱼袋直接放入暂养桶，过渡30～40min。其次，将鱼和自带的海水一同放入事先消毒好的盆中，采用滴流的方式兑水1～1.5h，同时每个盆内放2片维生素C解毒。最后，在5L海水内加入20mL甲醛进行消毒杀虫2～3min后，捞入500L塑料大桶内暂养。采用天然海水，盐度30‰，温度（26±0.5）℃，pH值8.0～8.4，光照周期14L∶10D，氨氮0，亚硝酸盐0，溶解氧5mg/L以上。每天驯喂4次，分别在上午8∶30和11∶30、下午14∶30和17∶30，主要投喂当天孵化的丰年虫，每天下午投喂结束1h后，洗底换水1/3～1/2，暂养2～3星期后，开始捞入亲鱼培育缸内配对。

1.3成鱼配对

考氏鳍竺鲷为雌雄异体。在暂养桶内，时常会出现2条成鱼占领一块区域的现象，明显观察到驱赶进入该领地的其他同类[5]，一旦出现此类现象，基本可以断定已配对成功，可直接捞入亲鱼玻璃缸系统中，独立空间饲养。但大部分情况是需要技术员自行配对的，依照笔者经验，可以挑选2只从外观上相似度极高的成鱼，捞入亲鱼缸强制配对，此时要经常观察，因为此鱼虽不好动，但领地意识异常强，一旦双方相处不和谐，会变得异常凶猛，如不捞开，时间一长会打斗致死。如果两条鱼相处和谐，配对成功率就会大大提高，一般暂养1～2个月可自然配对成功。如果两条鱼相互骚扰，或打斗现象不明显，可以通过以下处理方式提高配对成功率，一是将两条鱼放在一个隔离盒内，中间插板隔开2条鱼，这样在相对狭小的空间内暂养3～4个星期，可大大提高配对成功率;二是将两条鱼放在一个独立的饲养空间，突降温度2～3℃或突变0.5个pH值，使其产生一定的应激，一天反复2次，这种方法虽有一定效果，但对鱼的伤害较大。

2亲鱼培育

2.1亲鱼培育缸

参照场内小丑鱼亲鱼培育系统，每套亲鱼培育系统包括一层底缸和两层亲鱼缸。底缸2.4m×0.5m×0.6m，亲鱼缸2.4m×0.4m×0.6m。亲鱼缸中间用透明亚克力板隔开，分成0.4m×0.4m×0.4m的隔间，每个隔间放一个花盆和一对亲鱼。两层亲鱼缸上距水面20cm处，放LED灯，光照强度在4000lx左右。底缸分成4格：上水格、藻缸格、生化滤材格和下水格。上水水泵8000L/h，下水口处套一个300G纤维过滤袋，生化滤材格最下一层珊瑚骨，中层陶瓷环和细菌屋，藻缸格养殖葡萄球藻和羽毛藻，每天下午8∶00到次日早晨6∶00，开藻缸灯，每天清洗过滤袋[6]。

2.2亲鱼营养与促熟

考氏鳍竺鲷性成熟个体体长一般在7～8cm，成鱼需促熟才能达到性成熟。亲鱼营养质量的好坏，直接关系着亲鱼的产卵力、受精卵的孵化率和仔鱼的成活率，一般使用蛋白质含量高，且富含DHA和EPA的自制亲鱼配合饲料，其组分见表1，其中沙蚕、虾仁、鱿鱼、扇贝为新鲜材料，经清水洗净，可直接使用;小球藻粉为人用;电解多维、大蒜素、裂壶藻为兽用。亲鱼在亲鱼培育缸内单独饲养促熟，采用天然海水，盐度30‰，温度（29±0.5）℃，pH值8.0～8.4，光照周期14L∶10D，氨氮0，亚硝酸盐0，溶解氧5mg/L以上。每天投喂自制亲鱼配合饲料2次，分别为上午9∶00和下午15∶00，下午投喂结束0.5～1h后，开始吸底补水。

2.3親鱼产卵及护卵

有研究表明，考氏鳍竺鲷在野外环境下性成熟时间为10～14个月[5]。笔者经验表明，人工环境下成鱼在亲鱼培育缸内一般需促熟5～8个月，才开始陆续产卵，部分亲鱼1年多才开始产卵，且考氏鳍竺鲷是否产卵与有无海胆无直接关系。考氏鳍竺鲷并不是严格的“一夫一妻”制[6]，且单从外观形态上很难区分雌雄。随着性腺的发育，雌鱼肚子越来越鼓，当性腺发育到一定阶段后，雄鱼头部的黑色条纹会异常加深，产卵前雌鱼经常靠近雄鱼抖动身体，雄鱼时常张大嘴巴。产卵一般发生在夜间，有时候也在下午。产卵时，两条鱼非常靠近，雌鱼并非一颗一颗地产卵，而是挂在肛门处形成一个团卵，行体外受精，然后雄鱼马上将卵团吞进口中进行孵育，但常因速度太快而留下部分卵粒未被含到口中。雌鱼产卵量与个头大小正相关，一般为20～50颗/次，雄鱼含卵后，嘴巴鼓得像塞满了“弹珠”，此时雄鱼表现得异常安静且喜欢躲在隐蔽处，在整个孵育期间雄鱼不进食。

3苗种培育

3.1孵化及吐出幼苗

雄鱼采用口孵的方式孵育幼体，有研究表明，受精卵在雄鱼口内孵育时，当孵育到一定阶段后，幼苗会破膜而出，但雄鱼不会马上吐出幼苗，幼苗继续呆在雄鱼口中，待卵黄囊消失殆尽时，雄鱼才从口中吐出幼苗[7]。孵化考氏鳍竺鲷幼苗与孵化小丑鱼幼苗不同，孵化小丑鱼幼苗时，可以将亲鱼捞入孵化缸内孵化幼苗，这样既便于管理，又可以避免亲鱼吃掉幼苗，但考氏鳍竺鲷不可以采取这一方式，因为幼苗并非一次性从雄鱼口中吐出，而是在2～3d内分批次吐出，如果将亲鱼捞到孵化缸孵化幼苗，势必惊动雄鱼，一旦雄鱼受惊，经常发生吞卵现象。一般在水温（29±0.5）℃时，经过26～28d雄鱼即可从口内排出幼苗，此阶段发生在夜里，初孵幼苗外部形态与成鱼相差无几，此时可摄食活丰年虫。一般在吐苗后3周到2个月亲鱼可再一次产卵，推测可能雌鱼产卵周期与雄鱼吐苗后摄食营养和恢复体力情况有关。

3.2幼苗培育

借助刚吐出的幼苗趋光性极强的特点，将亲鱼缸内的幼苗捞到100L幼苗培育桶中饲养，水温（29±0.5）℃，盐度30‰，pH值8.0～8.4，光照周期14L∶10D，氨氮0，亚硝酸盐0，溶解氧5mg/L以上。一般吐出的幼鱼，大部分卵黄囊营养已吸收殆尽，此时即可投喂初孵丰年虫，密度为1～2个/mL，4～5h投喂一次，考氏鳍竺鲷为夜行性鱼类，除白天摄食外，夜晚也可借助微弱的灯光进行捕食，所以在关灯前再喂一次丰年虫，以便幼鱼夜里捕食。刚吐出的幼苗体长约6～8mm，对环境比较敏感，一般在幼苗培育桶内放置一个花盆等遮蔽物，以降低幼苗对环境的应激性。初孵幼苗前三天不换水，每天加10～15L新水，到第四天时，下午投喂结束0.5～1h后，开始吸底换水，第一次换水约1/5～1/4，每天依次增多。一般一个桶内只放一窝鱼，或是放同一天孵化的幼苗，因为幼苗生长速度很快，如放置不同孵化时间的幼苗，会导致一部分苗越长越大，另一部分苗基本不生长，同时大苗也容易欺负小苗。在幼苗吐出15d后，就可以加投一些颗粒饲料，此时转饵驯饵比较容易，逐渐由投喂初孵丰年虫转换成颗粒饲料，一般在养殖1个月后，随着幼苗个头的增长，水温逐渐降低到26℃，因为水温过高，桶内壁容易生长硅藻，较厚的硅藻经常掉落死藻渣，污染水质。一般养殖两个半月到三个月即可达到商品鱼规格。

参考文献：

[1]

AIIENGR.Threatenedfishesoftheworld：PterapogonkaudneriKoumans1933（Apogonidae）[J].EnvironmentalBiologyofFishes，2000（57）：142.

[2]VAGELLIAA，ERDMANNMV.FirstcomprehensiveecologicalsurveyoftheBanggaicardinalfish，Pterapogonkaudneri[J].EnvironmentalBiologyofFishes，2002（63）：1-8.

[3]LUNNKE，MOREAUMA.Unmonitoredtradeinmarineornamentalfishes：ThecaseofIndonesiasBanggaicardinalfish（Pterapogonkauderni）[J].CoralReefs，2004（23）：344-351.

[4]KOLMN，BERGLUNDA.Wildpopulationsofareeffishsufferfromthe“Nondestructive”aquariumtradefishery[J].ConservationBiology，2003，17（5）：910-914.

[5]KOLMN，BERGLUNDA.Sex-specificterritorialbehaviourintheBanggaicardinalfish，Pterapogonkaudneri[J].EnvironmentalBiologyofFishes，2004（70）：375-379.

[6]李飞，刘小沙，高欣东，等.公子小丑鱼亲鱼培育技术[J].河北渔业，2020（12）：56-57.

[7]VAGELLIAA.ThereproductivebiologyandearlyontogenyofthemouthbroodingBanggaaicardinalfish，Petrapogonkauderni（Perciformes，Apogonidae）[J].EnvironmentalBiologyofFishes，1999（56）：79-92.

BreedingtechnologyofmarineornamentalfishPterapogonkauderni

LIFei

（TangshanMaritimeInstitute，DepartmentofMechanicalEngineering，Tangshan063200，China）

Abstract：InordertoreducethecatchofwildmarineornamentalfishPterapogonkauderni，protectmarinewildlifegermplasmresources，andincreasethemarketsupplyofthefish，thebreedingtechnologyofPterapogonkauderniwasresearchedbyusingwildPterapogonkauderniasbroodstock.Themaintechnologiesincludeselectionanddomesticationofwildadultfish，broodstockpairing，maturationofbroodstock，spawningandeggprotectionmanagement，hatchingoffertilizedeggandseedlingbreeding.

Keywords：Pterapogonkauderni;broodstockbreeding;seedlingbreeding

（收稿日期：2021-05-25）