赵峻英,董剑,何建春,梅小亿,欧国平
(大足区人民医院 检验科,重庆 402360)
耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(multiple-resistant staphylococcus aureus,MRSA)是金黄色葡萄球菌(staphylococcus aureus,SA)的一个独特菌株,对多种抗生素耐药,可引起严重的社区获得性感染和医源性感染[1-2],由于其症状与其他细菌感染无明显差异,临床难以早期针对该菌感染进行精准诊断和治疗。常规的细菌培养方法通常需要2~3 d,甚至更久,难以满足临床的需求,因此,快速、灵敏、准确的MRSA检测手段,是控制其感染和流行的关键[3-4]。本研究拟以环介导恒温扩增技术(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)和实时荧光技术相结合,构建实时荧光 LAMP(Rea-LAMP),同时检测葡萄球菌的mecA耐药标志性基因和SA特有的femA基因,并与VITEK2 Compact全自动微生物分析仪鉴定结果进行比较,初步探讨实时荧光 LAMP(Rea-LAMP)方法快速鉴定MRSA在临床应用中的可行性。
1.1.1菌株来源 随机抽取2015年10月—2019年10月经VITEK2 Compact全自动微生物分析仪鉴定并保存于-80 ℃冰箱的68株SA,其中MRSA 37株、MSSA 31株。本研究选择的标准菌株为MSSA(ATCC25923)、MRSA(ATCC43300)、表皮葡萄球菌(ATCC49134)、溶血葡萄球菌(CGMCC1.10528)、人葡萄球菌(ATCC27844)、沃氏葡萄球菌(ATCC17917)、头状葡萄球菌(ATCC 35661)、科氏葡萄球菌(ATCC29974)、路邓葡萄球菌(ATCC700328)、腐生葡萄球菌(ATCC49907)、耳状葡萄球菌(ATCC33753)、产色葡萄球菌(ATCC 43764)、佩氏葡萄球菌(DSM19554)、中间葡萄球菌(ATCC51874)、大肠埃希菌(ATCC25922)、肺炎克雷伯杆菌(ATCC700603)、铜绿假单胞菌(ATCC27853)、鲍曼不动杆菌(ATCC19606)和粪肠球菌(ATCC29212)标准菌株,由国家卫生和计划生育委员会临床检验中心提供。
1.1.2仪器与试剂 DEAOU-308C迪澳恒温荧光检测仪、VITEK2 Compact全自动微生物分析仪、细菌核酸提取试剂盒购自重庆中元汇吉生物技术有限公司,Loopamp DNA扩增试剂盒、梅里埃DENSIMAT比浊仪99234。
1.2.1细菌基因组DNA提取 将-80 ℃保存的19种标准菌株和68株临床SA菌株接种于血平板上,于37 ℃温箱培养18~24 h,取平板上的菌落于无菌生理盐水中制成麦氏浊度为3.0~4.0的菌悬液1.5 mL,按细菌核酸提取试剂盒说明书操作步骤提取细菌DNA。
1.2.2引物设计与合成 从美国国立生物技术信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)网站查找mecA和femA基因序列,并对查找到的基因序列使用Bioedit软件进行比对,根据比对结果选择保守区域利用LAMP引物设计软件PrimerExplorer V5设计引物,引物序列由英潍捷基上海贸易有限公司合成。见表1。
表1 SA的Rea-LAMP检测体系引物
1.2.3Rea-LAMP反应体系 将合成的引物序列F3、B3、FIP、BIP、LF、LB按1 ∶1 ∶8 ∶8 ∶4 ∶4混合配制引物混合液,然后取引物混合液1 μL进行Rea-LAMP反应,总反应体系25 μL:引物1 μL,2X反应液12.5 μL,链置换DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)8U,待检菌株DNA 2 μL,SYBR 0.5 μL,超纯水补足至25 μL,在恒温荧光检测仪中进行反应(63 ℃,1 h)。
1.2.4特异性试验 按1.2.1方法将提取的MRSA和MSSA及其他17种革兰阳性和阴性标准菌株的全基因组DNA,按照Rea-LAMP的反应条件进行扩增,分析检测信号并观察熔解曲线,评价该体系引物的特异性。
1.2.5灵敏度试验 测量提取的MRSA标准菌株全基因组DNA模板浓度,将浓度为1 mg/L的MRSA基因组DNA用超纯水进行10倍梯度稀释4次,得到5个不同浓度的DNA模板(1 000、100、10、1和0.1 μg/L),加入Rea-LAMP反应体系中进行反应,观察扩增曲线,确定引物最低检出限。
1.2.6重复性试验 将MRSA和MSSA标准菌株作为阳性菌株,其余17种标准菌株作为阴性菌株,分别进行3次Rea-LAMP重复性试验,所有标准菌株重复性试验所用模板为同一模板。
1.2.7临床菌株的检测 用Rea-LAMP试验体系对68株SA进行检测,并与VITEK2 Compact全自动微生物分析仪鉴定结果进行比较。
MRSA标准菌株出现femA和mecA基因扩增曲线,MSSA标准菌株出现femA基因扩增曲线,其余17种病原菌的标准菌株未出现femA或mecA基因扩增曲线。扩增过程未出现引物二聚体的干扰,熔解曲线无杂峰。见图1。
注:A为femA基因熔解曲线,B为mecA基因熔解曲线。
本研究体系显示1 μg/L MRSA基因组DNA约23 min出峰,出现扩增曲线,此浓度为本研究体系的最低检测限,见图2。
图2 MRSA灵敏度检测
MRSA和MSSA各自的3个重复管几乎同时出峰且扩增曲线几乎重叠,其余菌株各自的3个重复管均无扩增曲线。
结果显示,对68株临床菌株检测结果与VITEK2 Compact全自动微生物分析仪鉴定结果一致,见表2。
表2 本研究测试结果与VITEK2 Compact全自动微生物分析仪鉴定结果比较
MRSA一直以来是全球引起感染性疾病的重要病原菌之一,其耐药性严重、耐药机制复杂,使得临床感染死亡率增高,成为当今感染医学的一个难题[5-7]。
相关研究证明,MRSA菌株的耐药性主要由mecA基因介导[8-9],其编码产生的青霉素结合蛋白2a(PBP2a)使菌株对β-内酰胺类抗生素的亲和力明显降低,从而使细菌产生耐药性[10-12]。故SA一旦获得mecA基因,便可表现为高度和多重耐药。
femA基因为SA所特有的基因,也是MRSA耐药性的辅助基因[13-14],在MRSA中,femA基因启动子或调控区域的插入,可使细菌细胞壁成分或结构发生改变,协助mecA基因降低对β-内酰胺类抗生素的敏感性,从而导致对甲氧西林耐药[15-16]。
对于临床实验室而言,选择合适的检测方法,准确及时地发出检验报告尤为重要。LAMP是2000 年,由日本学者Notomi等[17]提出的一种恒温核酸扩增技术,其特点是反应快、特异性强、灵敏度高、检测成本低以及操作简单等,被广泛应用于分子诊断技术中[18-22]。本研究基于LAMP的基本原理,在mecA和femA基因序列上设计6条引物:2条外引物(F3、B3)、2条内引物(FIP、BIP)和2条环引物(LF、LB),特异性识别mecA和femA基因序列上的6个独立区域,启动循环链置换反应。内引物杂交在目标DNA区域,启动互补链的合成,再通过外引物在同一链上互补序列,这样周而复始形成有很多茎-环DNA混合物。环引物提高了反应灵敏度,缩短了反应时间,从而实现对目的DNA序列的快速扩增。同时,在反应体系中加入了SYBR荧光染料,反应过程在DEAOU-308C迪澳恒温荧光检测仪中进行,可对整个反应过程进行实时动态检测。
本研究将LAMP的快速性和实时荧光的敏感性有机结合起来建立了Rea-LAMP检测MRSA的新方法,主要特点包括以下5个方面。(1)特异性强,在靶基因mecA和femA的6个不同的区域设计了6条不同引物,要使目标序列快速扩增,引物必须与靶序列的6个区域严格识别配对,不受非目标DNA的干扰。本实验选取了MRSA、MSSA和17种其他常见病原菌的全基因组DNA同时作为模板在Rea-LAMP检测体系中扩增,仅MRSA和MSSA出现相应的扩增曲线。(2)检测灵敏度高,本Rea-LAMP检测体系的灵敏度达1 μg/L。(3)速度快,1 h以内即可完成检测,大大缩短了检测周期。常规的细菌培养的检测方法通常需要2~3 d,甚至更久,本研究与常规的细菌培养和鉴定方法相比时间大大缩短,与普通的PCR方法相比省去了PCR模板的高温变性和低温退火步骤,节约了温度变化导致的时间耗损。(4)稳定性好,MRSA和MSSA作为阳性样品,各自的3个重复管几乎同时出峰且扩增曲线几乎重叠,说明该反应体系具有良好的稳定性。(5)实时动态检测,本研究体系通过收集荧光信号,可对扩增体系进行实时动态检测,及时跟踪检验结果。同时,由于本研究的荧光染料SYBR在反应前加入,避免了实验反应结束后开盖导致气溶胶污染。
在临床菌株检测中,同时出现mecA和femA扩增曲线的为MRSA,只出现femA扩增曲线的为MSSA。所检测的临床68株SA中,检测出MRSA37株,MSSA31株,与VITEK2 Compact全自动微生物分析仪鉴定结果一致。由于本研究体系所检测的临床菌株数量有限,需增加菌株的数量做进一步的验证。本研究只是定性检测,下一步需要将尝试设计标准曲线用于定量检测。本研究只能检测mecA和femA基因,对与MRSA耐药机制有关的其他基因如mecC基因等[23-25]无法检出。也无法区分MRSA和MSSA感染或定植。
综上所述,虽然本研究的Rea-LAMP检测MRSA的体系具有一定的局限性,但具有特异性强、稳定性好、灵敏度高、操作简单快捷的特点,并且能够实时动态观察检测结果,可为MRSA提供一种新的的快速检测方法。