添加IBA和6-BA对山桃试管苗增殖及生根的影响

张雪冰 张帆 吴鑫泉 王鸿 王立

摘要：研究了IBA和6-BA组合对山桃试管苗增殖及生根的影响。结果表明，在改良QL培养基中添加IBA 0.1 mg/L+6-BA 0.6 mg/L最适宜山桃试管苗的增殖生长，增殖倍数可达到3.56倍。IBA浓度为1.0 mg/L时，生根率达95.83 %。

关键词：山桃;组织培养;增殖;生根

中图分类号：S662.1       文献标志码：A        文章编号：1001-1463（2020）06-0019-03

doi：10.3969/j.issn.1001-1463.2020.06.006

Screening Test of Pepper Cultivars Cultivated on Substrate in Gobi Solar Greenhouse

MA Yanxia， WANG Xiaowei， ZHANG Yuxin， KUAI Jialin， KANG Enxiang， ZHANG Junfeng

（Institute of Vegetable， Gansu Academy of Agricultural Sciences， Lanzhou Gansu 730070， China）

Abstract：In order to introduce the cultivar of pepper suitable for the substrate cultivation in the solar greenhouse of Hexi gobi， the experiment on the cultivation of the cultivar of pepper on the substrate of greenhouse was carried out in the gobi desert， Baba village， Heli town， Gaotai county. The results showed that the comprehensive performance of Longjiao 11 was better than other cultivars， with good growth potential. The fruit long was 26.6 cm， shoulder width 32.3 mm， flesh thickness 2.5 mm， weight of single pepper 54.6 g， and the yield per plant was 1.4 kg， equivalent yield reached 71 401.5 kg/hm2. The comprehensive analysis shows that Longjiao 11 is suitable for promoting cultivation in the substrate culture in solar greenhouse of Hexi gobi.

Key words：Gobi greenhouse;Substrate culture;Pepper;Cultivar screening

桃是我国主要栽培的果树之一，面积和产量均居世界首位。早期桃生产所需要的砧木主要是通过实生种子繁殖。生产中通过组培技术可以有效克服实生繁殖砧木后代分 离[1 ]，有效缩短苗木繁育的周期，提高种苗繁育的效率[2 ]。桃的组培快繁技术可用于脱毒、无性系砧木生产、种质资源离体保存及转基因研究等[3 - 5 ]，但相对于其他果树而言桃的组织培养比较困难，且不同品种之间的培养条件差异也比较大。影响桃组织培养的因素众多，比如组培室温度、湿度、光照条件、基本培养基内的养分、添加的激素种类及激素浓度等。我们开展了基本培养基添加不同浓度激素对山桃试管苗增殖及生根的影响研究，现将结果报道如下。

1   材料与方法

1.1   外植体的建立

2019年5 — 6月，采集甘肅省农业科学院林果花卉研究所桃砧木种质资源圃的山桃新梢，带回实验室，用自来水冲洗30 min;然后在超净工作台上将带芽茎段用无菌水漂洗1遍，用75%乙醇浸泡30 s 后，用 0.1% 的升汞（HgCl2）浸泡5 min;最后，用无菌水将残留物冲洗干净，裁剪成2 ～3 cm的带芽茎段作为外植体。

1.2   初代培养

将外植体接入改良QL培养基中，光照时间16 h/d，光照强度3 000 lx，进行初代培养。培养室的温度保持在22～25 ℃。

1.3   增殖培养

山桃试管苗初代培养28 d后，将其转接到以改良QL为基本培养基，添加不同浓度IBA+6-BA的培养基中进行增殖培养。增殖培养的激素组合处理共8个（表1、表2）。光照条件同初代培养。每瓶接3个芽。28 d后观察试管苗生长情况，并调查计算其增殖倍数。

1.4   生根培养

将增殖培养高于2 cm 的组培试管苗，转接到以改良QL为基本培养基，添加不同浓度IBA（表3）的生根培养基中进行生根培养，先暗培养7 d，再转光照培养，21 d后观察试管苗生根情况，调查生根率、平均根数、平均根长。

增殖倍数=28天后芽数/起始芽数

生根率=（生根苗数/总苗数）×100%

2   试验结果与分析

2.1   6-BA对山桃试管苗增殖的影响

从表1可知，增殖培养28 d后，当添加IBA浓度为0.10 mg/L不变，6-BA浓度为0.6 mg/L的山桃试管苗增殖效果最好，颜色浓绿，枝条粗壮，增殖效果最优，无黄化、褐化、玻璃化等现象，增殖倍数为3.56倍。6-BA浓度为0.4 mg/L时，增殖效果不明显。6-BA浓度为0.8 mg/L和1.0 mg/L时，试管苗增殖效果一般，但出现轻度褐化的现象。6-BA浓度为1.2 mg/L时，试管苗褐化严重，出现玻璃化现象，增殖效果最差。

2.2   IBA对山桃试管苗增殖的影响

从表2可以看出，增殖培养28 d后，添加6-BA浓度为0.6 mg/L不变， IBA浓度为 0.1 mg/L的培养基中，山桃试管苗增殖效果最优，叶片颜色浓绿;IBA浓度为 0.05 mg/L时，试管苗增殖效果次之，且试管苗矮小;IBA浓度为 0.15 mg/L和0.20 mg/L时，试管苗增殖效果差，且枝条生长细弱，叶片颜色发黄，卷曲，出现轻度玻璃化。

2.3   IBA对山桃试管苗生根的影响

生根培养结果（表3）表明，当培养基中添加IBA浓度为1.00 mg/L时，试管苗的生根效果最好，根系粗壮，毛细根较多，生根率达95.83%，平均根数5.75根/株，平均根长6.8 cm。IBA浓度为0.50 mg/L时，生根率较低，平均根长最短，只有主根，没有毛细根。IBA浓度为0.75 、1.25 mg/L时，生根情况相似，但与IBA浓度为1.00 mg/L相比，生根不理想。IBA浓度为1.50 mg/L时，生根效果最差，平均根数不到3根/株 ，无毛细根，根细，生根率仅50.00%。

3   小结与讨论

试验表明，山桃组织培养以IBA和6-BA为影响因子，在IBA+6-BA的8种浓度组合中，使用IBA 0.1 mg/L+6-BA 0.6 mg/L组合时，增殖效果最好，增殖倍数为3.56倍，且山桃试管苗表现颜色浓绿，枝条粗壮，增殖效果，无黄化、褐化、玻璃化等现象。IBA浓度为1.00 mg/L时，生根效果最好，生根率达95.83 %，平均根数5.75根/株，平均根长6.8 cm。

影响组培苗增殖和生根的激素有许多，如IBA、BA、GA[6 ]、TDZ、KT、IAA、NAA、2，4-D等，但是对于不同的品种，其适宜的激素种类并不相同，激素的使用浓度也不相同[7 ]。乔改霞等[8 ]关于四川扁桃的组培试验中，激素6-BA+IAA组合时增殖效果最好;石晓东[9 ]对川中岛白桃的试验研究中，BA 2.0 mg/L +IBA 0.1 mg/L组合时增殖效果最好;田增胜[10 ]对早熟油桃的茎尖培养研究中表明激素TDZ+KT组合使用时，其增殖效果最好。而在我们的试验中，对山桃使用IBA 0.1 mg/L+ 6-BA 0.6 mg/L组合时增殖效果最好，说明不同品种适宜的激素种类不尽相同。郭伟伟等[11 ] 在‘黄金冠桃的组培试验研究中，使用NAA+IBA组合的生根效果最显著;潘瞳等[12 ]对紫叶桃的组培研究中，使用BA+2，4-D组合时，生根效果最理想;而我们的试验中，IBA浓度为1.0 mg/L时生根效果很理想，说明不同桃品种适宜生根的激素存在差异。总之，在不同植物和品种的组织培养中，添加的激素种类和浓度的适宜性存在差异，我们研究筛选出的添加激素配比浓度对山桃试管苗的增殖生根具有重要意义。

参考文献：

[1] 白晓燕，王力荣，王新卫，等.  桃砧木组织培养和扦插生根的解剖学观察[J].  果树学报，2015，32（1）：74-78;175.

[2] 陈建军，李宽莹，张   帆，等.  甘肃地区桃苗木繁育技术[J].  甘肃农业科技，2018（10）：92-94.

[3] LAIMER M，HANZER V，KRISTON E，et al. Elimination and detection of pathogens from tissue cultures of Prunus sp[J].  Acta Horticulturae，2006（725）：319-324.

[4] 李洪雯，刘建军，鄧家林，等.  桃砧木GF677离体快繁技术体系研究[J].  西北植物学报，2008（11）：2226-2230.

[5] 赵剑波，郭继英，姜   全，等.  桃抗重茬砧木GF677组培快繁技术[J].  江苏农业科学，2016（5）：60-61+68.

[6]江虎军，潘季淑，孟新法.  桃（Prunus persica L.）茎尖培养技术的研究[J].  北京农业大学学报，1993（1）：49-52.

[7] 高春媛.  影响油桃（Prunus persica var.nectarina）茎尖培养和胚轴再生因子的研究[D]. 杨凌：西北农林科技大学，2008.

[8] 乔改霞，陈春伶，徐美隆，等.  四川扁桃组织培养技术研究[J].  北方园艺，2015（14）：96-98.

[9] 石晓东.  川中岛白桃茎段离体培养研究[D].  晋中：山西农业大学，2005.

[10]田增胜. 早熟油桃（Prunus persica var. nectaria）茎尖快繁及胚轴再生技术研究[D].  杨凌：西北农林科技大学，2005.

[11] 郭伟伟，孟庆杰，黄   勇，等. ‘黄金冠桃组织培养的初步研究[J]. 北方园艺，2010（19）：142-144.

[12]潘   瞳，姚苗笛，于晓南.  紫叶桃（Prunus persica f. atropurpurea）的愈伤组织诱导和培养[J].  河北林果研究，2009，24（1）：77-80.

（本文责编：陈    珩）