张建东,陈永林,马宏伟,刘天驹,张 涛,李 钊,赵建东,米吉提·莫合他尔汗,颜成旭,路广计,张喜悦
(1.山东农业大学动物科技学院,山东泰安 271000;2.洛阳市动物疫病预防控制中心,河南洛阳 471000;3.河北省动物疫病预防控制中心,河北石家庄 050000;4.石家庄市动物疫病预防控住中心,河北石家庄 050000;5.济源市动物疫病控制中心,河南济源 459000;6.新疆维吾尔自治区动物卫生监督所,新疆乌鲁木齐 830000;7.中国动物卫生与流行病学中心,山东青岛 266032)
牛结核病(bovine tuberculosis,bTB)是由分枝杆菌属牛分枝杆菌(Mycobacterium bovis,M.bovis)引起的一种人兽共患慢性消耗性传染性疾病,给我国养牛业带来严重危害[1]。世界动物卫生组织(OIE)将其列为须通报动物疫病,我国将其列为二类动物疫病。牛分枝杆菌感染宿主广泛,除可感染人外,还可感染50 多种哺乳动物[2]。牛结核病目前尚无有效疫苗预防,药物治疗成本太高,所以“检测+扑杀”是控制该疫病的主要手段。
我国目前的牛结核病检测方法主要包括,结核菌素(PPD)皮内变态反应试验(TST)、比较皮内变态反应试验(SICTT)、γ-干扰素ELISA试验(IFN-γ-ELISA)、抗体ELISA 试验和胶体金检测等[3]。TST 是我国牛结核病检测的国家标准,也是国际贸易指定方法。此方法灵敏度高,但特异性差,无法排除其他结核杆菌干扰。SICTT 与TST相比,可排除其他杆菌干扰,减少假阳性。TST 和SICTT 检测成本低,但操作麻烦、耗时长,结果判定主观性强[4]。IFN-γ-ELISA 试验操作简单,但成本较高[5]。抗体ELISA是现代抗体检测的主要方法,但牛分枝杆菌抗原表位复杂,不同阶段可产生不同抗体,因而导致检测阳性率偏低[6]。
结核病污染场内,牛分枝杆菌普遍存在,需要敏感性更高的检测方法,来尽量避免漏检,从而加快净化进程。本试验采用TST、SICTT、IFN-γ-ELISA 和抗体ELISA 4 种检测方法,同时对牛结核病污染场的牛群进行检测,比较分析不同试验的检测结果,以期为我国牛结核病污染场的净化提供有效的检测方法。
1.1.1 试剂与仪器 牛PPD、禽PPD、INF-γ 夹心ELISA 检测试剂盒(批次P201906-001),均购自青岛瑞尔公司;牛分枝杆菌ELISA 抗体检测试剂盒(批号190504),购自韩国安世佳合有限责任公司。仪器包括:剪毛剪、0.5 mL 注射器、游标卡尺、酶标仪(包含450 nm 和620~650 nm 滤光片)、CO2培养箱、12 孔细胞培养板、肝素钠采血管、移液器及吸头等。
1.1.2 试验动物 某规模养殖场的300头泌乳牛。
1.2.1 检测方法
1.2.1.1 TST 试验 按照国家标准《动物结核病诊断技术》(GB/T 18645—2002)的要求操作和结果判定:采用牛型PPD,剂量为2 000 IU,分别于注射前和注射后72 h 测量皮肤厚度,并计算皮厚差。皮厚差≥4.0 mm,为阳性;2.0 mm ≤皮厚差<4.0 mm,为疑似;皮厚差<2.0 mm,为阴性。疑似牛于第1 次检疫 60 d 后进行复检,仍为疑似时,60 d 后再复检,如仍为疑似,则判为阳性。
1.2.1.2 SICTT 试验 采用牛PPD 和禽PPD,在牛颈部左侧分点皮内注射,注射点间隔12~15 cm,72 h 后,观察注射部位的炎性反应,并量取皮皱厚,根据皮皱厚增加值判定。牛型PPD 皮厚差减去禽型PPD 皮厚差>4 mm,判为阳性;1 mm <牛型PPD 皮厚差减去禽型PPD 皮厚差≤4 mm,判为可疑;牛型PPD 皮厚差≤禽型PPD 皮厚差,判为阴性。
1.2.1.3 IFN-γ-ELISA 试验 采集5 mL 血液肝素抗凝血液,各取1.5 mL 加入3 个孔中,然后分别取100 μL 的牛型PPD、禽型PPD 和阴性对照磷酸盐缓冲液(PBS),加入抗凝全血中,混匀后放于含5% CO2的培养箱中37 ℃培养18 h。用移液器小心吸取培养上清,转入1.5 mL 离心管中,即获得刺激产生的γ-干扰素上清。取出单抗包被板,每孔加入50 μL 样品稀释液,然后加入50 μL 待测样品或对照,混匀后室温作用1 h;洗涤,每孔加入100 μL 酶标抗体,室温作用1 h;洗涤后每孔加入100 μL 底物,室温避光作用30 min 后,加入终止液,测定OD450nm值。当牛型PPD 刺激上清的OD 值-PBS 刺激上清的OD 值≥0.1,且牛型PPD 刺激上清OD 值-禽型PPD 刺激上清OD值≥0.1,为阳性,反之为阴性。
1.2.1.4 抗体ELISA 试验 按照牛分枝杆菌ELISA 抗体检测试剂盒操作步骤进行,计算S/P值。S/P=(样品OD450nm平均值-阴性对照OD450nm平均值)/(阳性对照OD450nm平均值-阴性对照OD450nm平均值)。S/P≥0.3 为阳性,S/P<0.3为阴性。
1.2.2 评估方法 以TST 试验为参考标准,分别与SICTT、IFN-γ-ELISA、抗体ELISA 检测结果比较,计算符合率,并运用SPSS 软件进行对比,分析敏感性差异。
对比结果(表1)显示:TST 检出阳性114 份,IFN-γ-ELISA 检出阳性154 份,符合率为72.7%,经SPSS 分析,P<0.05,说明IFN-γ-ELISA 阳性检出率显著高于TST,表明其敏感性明显高于TST。
表1 TST 与IFN-γ-ELISA 检测结果对比 单位:份
对比结果(表2)显示:TST 检出阳性114份,SICTT 检出阳性103 份,符合率为96.3%,经SPSS 分析,P>0.05,说明SICTT 阳性检出率略低于TST,但差异不显著,表明两种方法的敏感性相似。
表2 TST 与SICTT 检测结果对比 单位:份
对比结果(表3)显示:TST 检出阳性114 份,抗体ELISA 检出阳性21 份,符合率为69.0%,经SPSS 分析,P<0.05,说明抗体ELISA 阳性检出率显著低于TST,表明其敏感性明显低于TST。
表3 TST 与抗体ELISA 检测结果对比 单位:份
近年来,我国牛结核病流行率普遍升高,结核病污染场数量逐渐增加[7]。本试验利用4 种检测方法,对结核病污染场的奶牛进行检测。以TST为参考标准,分别与其他3 种方法进行比较,结果发现IFN-γ-ELISA 敏感性最高,明显大于TST,而其他2 种方法的敏感性都低于TST。在牛结核病污染场的净化过程中,要将所有感染牛尽可能全部筛检出来,这就需要敏感性高的检测方法,因此IFN-γ-ELISA 是首选的检测方法。
TST 试验是国家标准,也是国际贸易指定方法,但其结果判定存在人为误差,尤其是大量检测时,会出现阳性漏检。在牛结核病污染场的净化初期,需要进行大量检测,如果采用TST 检测,就会漏检感染牛,使其继续污染牛群[8-9]。SICTT 虽然可排除禽结核杆菌的干扰,检测结果准确,但其阳性检出率更低,同样不适合牛结核病污染场初期的净化。抗体ELISA 检测是现代血清检测的主要方法,操作简单、耗时少,但因不同感染阶段的牛分支杆菌抗体比较复杂,无法准确捕获[10],导致阳性检出率也明显比TST 偏低,因此也不适合用于牛结核病污染场初期的净化检测。
TST 和SICTT 这两种方法适合在基层推广,成本低,但主观性强,检测过程对牛的应激影响较大[11]。抗体ELISA 检测时间短,出结果快,但成本较高,阳性检出率偏低[12]。IFN-γ-ELISA 操作复杂、成本高,检测要求较高,不适合在基层推广,但检测敏感性高[13]。因此,在实际的牛结核病检测中,应根据不同的需要和条件,选择合适的检测方法,也可以不同方法联合使用。在条件不允许情况下,可以用TST 对牛结核病污染场进行检测。因IFN-γ-ELISA 是4 个方法中最敏感的方法[14],所以在条件允许的情况下,在牛结核病污染场最适合选用,这样可以尽量避免漏检感染牛。在牛结核病污染场,患结核病的牛数量较多,如果检测方法不敏感,就会导致大量阳性牛漏检,使牛群净化困难[15]。如果每年春秋两季,对牛场进行IFN-γ-ELISA 检测,及时隔离淘汰阳性牛,连续检测几年,牛场就会达到净化目标[16]。
评估认为,在TST、SICTT、IFN-γ-ELISA 和抗体ELISA 4 种检测方法中,IFN-γ-ELISA 方法敏感性最高,阳性检出率最高,可以尽可能地将感染牛全部检出,减少漏检,因此最适合用于牛结核病污染场初期的净化。