超高效液相色谱-四极杆/静电场轨道阱高分辨质谱法测定猪肉中9 种大环内酯类抗生素

马俊美，孙 磊，曹梅荣，刘 茁，李 强,*，范素芳,*

（1.河北省食品检验研究院，河北 石家庄 050000；2.河北科技大学生物科学与工程学院，河北 石家庄 050018）

大环内酯类抗生素（macrolides antibiotics，MALs）是以大环内酯为母核，与分子糖通过糖苷键连接的一类抗生素[1]，一般具有12～16 个碳内酯环。MALs易溶于极性有机溶剂，微溶于弱极性溶剂[2-4]，对革兰氏阳性菌及支原体有较强的抗菌活性，同时对部分革兰氏阴性菌、螺旋体和立克次氏体等也有一定的抗菌活性[5-6]，比氨基苷类、多肽类和四环素类等抗生素的毒副作用低，因此被广泛应用于畜禽疾病的治疗[7]。滥用或者使用不当，会导致动物源性食物中MALs的残留，通过食物链进入人体，在体内富集到一定浓度时，会使人眩晕、听力减退、肝肾受损甚至导致慢性中毒[8-10]。为保障食品安全，日本、美国、欧盟等均制定了动物源性食品中MALs的最高残留限量，我国农业部也对此做出了规定[11]。为满足监管的要求，建立一种快速筛查MALs残留的分析方法是非常必要的。

目前，MALs的检测方法主要有：微生物法[12]、毛细管电泳-电化学检测法[13-16]、液相色谱法[17-19]和液相色谱-质谱联用法[20-28]等，其中，微生物法特异性差、检出限高，难以准确定性定量[29]；液相色谱法是检测MALs的常用方法，但具有局限性，只能选择性地检测某几种MALs，如红霉素缺乏特征紫外吸收，较难进行分析；超高效液相色谱-四极杆/静电场轨道阱高分辨质谱（ultrahigh performance liquid chromatography-quadrupole/orbitrap high resolution mass spectrometry，UPLC-Q-Orbitrap HRMS）将具有高选择性的四极杆与高分辨率、高灵敏度的轨道阱有机结合，能进行目标物与非目标物的快速筛查与结果确证[30]，不同于三重四极杆低分辨质谱使用多反应监测模式进行定量分析，无需对目标物逐个优化子离子及相关参数，弥补传统三重四极杆质谱检测化合物数量有限、假阳性误判的不足，在食品检测行业中已得到广泛应用。已有研究报道了UPLC-Q-Orbitrap HRMS应用于动物源性食品中多肽类[31]、磺胺类、喹诺酮类[32]、青霉素类[33]抗生素的测定，本实验将该技术用于猪肉中MALs筛查、鉴定与定量研究。通过一级全扫描模式获得目标化合物的精确质量数，进行定性与定量，通过二级全扫描模式获得目标化合物的二级特征图谱，进一步提高定性的准确性。本研究能够准确、高效、快速、高通量地同时检测多种MALs物质，对保障我国食品安全和提高行业检测水平具有重要意义。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

甲醇、乙腈（均为色谱纯） 德国Merck公司；甲酸（色谱纯） 美国Sigma公司；超纯水（电阻率18.2 MΩ·cm，25 ℃） 美国Millipore公司；9 种MALs标准品克拉霉素、麦迪霉素、交沙霉素、红霉素、阿奇霉素、泰乐霉素、罗红霉素、替米考星、克林霉素（纯度≥95%） 中国食品药品检定研究院。

1.2 仪器与设备

Ultimate 3000UPLC-Q-Orbitrap HRMS仪美国Thermo Fisher公司；氮吹仪 美国Organomation Associates Jnc公司；3K15高速冷冻离心机 美国Sigma公司；P300H超声波清洗仪 德国Elma公司；Vortex Genius 3旋涡振荡器 德国IKA公司。

1.3 方法

1.3.1 样品前处理

将猪肉样品充分绞碎混匀后，装入洁净的容器内，作为试样。准确称取试样5.00 g，置于50 mL聚丙烯离心管中，加入乙腈20 mL，超声提取10 min，涡旋5 min充分混匀，8 000hg离心3 min，将上清液转移至另一离心管中，向残渣中加入10 mL乙腈重复提取一次。合并上清液，加入氯化钠2 g和正己烷20 mL，涡旋混匀2 min，8 000hg离心3 min，取乙腈层溶液，于40 ℃氮气吹干，用1 mL 0.1%甲酸溶液-甲醇（1:1，V/V）溶解残渣，过0.22 μm滤膜后，准备上机测定。

1.3.2 色谱条件

色谱柱：Waters AcquityB E H C18柱（2.1 mmh100 mm，1.7 μm）。流动相A为0.1%甲酸溶液，B为甲醇。梯度洗脱程序：0～1.5 min，10% B；2～9 min，10%～80% B；9～12 min，80% B；12～13 min，80%～10% B；13～15 min，B相保持10%。

1.3.3 质谱条件

质量分析器：四极杆-静电场轨道阱；电喷雾离子源（正离子）；扫描模式：全扫描/数据依赖二级扫描；鞘气流量35 arb；辅助气流量10 arb；喷雾电压3.8 kV；离子源温度350 ℃；毛细管温度320 ℃。一级扫描范围m/z 100～1 500，一级扫描分辨率70 000，自动增益控制做全扫描S进入C形阱中的目标离子数目3h106。二级扫描分辨率17 500，自动增益控制做MS2进入C形阱中的目标离子数目1h105，隔离窗口为m/z4.0，碰撞能量30 eV。9 种MALs质谱信息见表1。

表1 9 种MALs的质谱信息Table 1 Mass spectral parameters for the 9 macrolide antibiotics

2 结果与分析

2.1 提取溶剂的选择

本实验选择6 种不同的溶剂（甲醇、乙腈、0.1%甲酸-乙腈、0.2%甲酸-乙腈、0.1%甲酸-甲醇、0.2%甲酸-甲醇），以9 种MALs的平均回收率（加标量10 μg/kg）考察不同溶剂的提取效果。实验表明，采用乙腈作为提取溶剂时，9 种MALs的回收率最高。这是因为MALs一般为弱碱性化合物，易溶于有机溶剂，可与酸形成盐，因此采用中性乙腈提取回收率最高。乙腈提取后，加入正己烷能去除脂肪等杂质，提高回收率，可省去净化步骤，降低实验成本。

2.2 色谱-质谱条件的优化

2.2.1 色谱柱的选择

为得到较好的峰形和分离效果，选择质量浓度为10 ng/mL的9 种MALs标准品溶液，在相同的流动相和洗脱程序下，分别采用Waters Acquity-BEH C18色谱柱（2.1 mmh100 mm，1.7 μm）、XBridge BEH Shield RP18色谱柱（2.1 mmh100 mm，2.5 μm）、Thermo Accucorea Q C18色谱柱（2.1 mmh100 mm，2.6 μm）、Hypersil Gold C18色谱柱（2.1 mmh100 mm，1.9 μm）进行分离实验。MALs为碱性化合物，Waters Acquity BEH C18色谱柱采用亚乙基桥杂化颗粒、三键键合和端基封尾技术，保证了碱性化合物的峰形，相较于其他色谱柱，采用Waters Acquity BEH C18色谱柱可有效分离9 种MALs，且峰形较好。故本实验选择Waters Acquity BEH C18（2.1 mmh100 mm，1.7 μm）作为色谱柱。

2.2.2 流动相的选择

本实验考察3 种不同的流动相体系（水-甲醇、水-乙腈、0.1%甲酸-甲醇）对色谱峰形和信号响应的影响。实验表明，使用水-甲醇流动相体系得到的色谱峰形优于水-乙腈体系；使用0.1%甲酸-甲醇作流动相相对于使用水-甲醇体系峰面积变大，稳定性也有所提高。在电喷雾正电离条件下，甲酸的加入有助于目标物离子化，从而提高分离效率和信号的强度。后续实验选用0.1%甲酸溶液-甲醇体系作为流动相。

2.2.3 质谱条件优化

利用UPLC-Q-Orbitrap HRMS对9 种MALs混合标准溶液进行正离子扫描，得到一级全扫描质谱图，以各化合物的分子离子峰[M+H]+理论精确质量数提取色谱图，图1为9 种MALs的提取离子流色谱图（50 ng/mL）。9 种MALs的精确质量相对偏差小于1.0h10-6（表1），符合高分辨质谱检测的要求[34]。二级质谱扫描基于数据依赖的碰撞解离模式运行，采集目标物的二级质谱图进行定性（图2）。

图1 9 种MALs的提取离子流色谱图Fig. 1 Extracted ion chromatograms of the 9 macrolide antibiotics

图2 9 种MALs的二级质谱图Fig. 2 MS2 spectra of the 9 macrolide antibiotics

2.3 基质效应评价结果

基质是指样品中目标物以外的组分，与目标物共洗脱出的样品基质对目标物的离子化过程产生影响，造成离子化抑制或增强，这就是基质效应[35]。与三重四极杆质谱相比，UPLC-Q-Orbitrap HRMS具有更强的抗干扰能力，但基质效应仍然存在，且猪肉样品基质较为复杂，因此，需要对基质效应进行评价，本实验将9 种MALs标准品分别用乙腈和猪肉空白基质提取液配制标准溶液（0.5～100 ng/mL），以相同物质在基质溶液中标准曲线斜率与纯溶剂中标准曲线斜率比值评价基质效应情况。基质效应大于100%时，表明基质对目标物离子化有增益作用；基质效应小于100%时，表明基质对目标物离子化有抑制作用。结果表明，9 种MALs在猪肉基质中均存在明显的离子抑制现象：克拉霉素（69.5%）、麦迪霉素（72.9%）、交沙霉素（69.8%）、红霉素（79.1%）、阿奇霉素（69.4%）、泰乐菌素（71.8%）、罗红霉素（59.4%）、替米考星（51.9%）、克林霉素（49.2%）。由于基质效应的存在，本方法在定量时采用基质配标，降低基质效应的影响。

2.4 方法的线性范围、检出限和定量限结果

在猪肉空白提取液中添加标准溶液配制一系列的标准工作液，以9 种MALs的一级质量数提取离子峰面积为纵坐标（Y），各组分的质量浓度为横坐标（X）作线性回归方程，以3 倍和10 倍信噪比对应的空白猪肉样品添加质量浓度作为检出限和定量限。9 种MALs的线性方程、检出限、定量限见表2。结果表明，9 种MALs在0.5～100 μg/L质量浓度范围内相关系数（r2）大于0.998，线性关系良好。检出限为0.05～0.2 μg/kg，定量限为0.1～0.4 μg/kg，低于GB/T 20762ü2006《禽畜肉中林可霉素、竹桃霉素、红霉素、替米考星、泰乐菌素、克林霉素、螺旋霉素、吉他霉素、交沙霉素残留量的测定液相色谱-串联质谱法》[36]（检出限为1.0 μg/kg）和SN/T 1777.2ü2007《动物源性食品中大环内酯类抗生素残留测定方法》[37]（测定低限为20 μg/kg）。

表2 9 种MALs的线性关系、检出限、定量限Table 2 Linear equations, limits of detection and limits ofquantification of the 9 macrolide antibiotics

2.5 回收率和精密度结果

表3 9 种MALs的回收率和精确度Table 3 Spiked RSDs of the 9 macrolide antibiotics

在空白猪肉样品中添加9 种MALs标准溶液制成阳性样品，添加水平分别为1、2 倍和10 倍定量限，每个添加水平进行6 次重复实验，计算回收率和相对标准偏差（relative standard deviations，RSD）。如表3所示，添加量0.1～4.0 μg/kg时，方法的回收率范围为69.4%～107.6%，RSD不高于8.3%，符合检验方法要求。

2.6 实际样品检测结果

应用本研究建立的方法对市场采购的20 批次猪肉样品进行检测，采用精确质量数和保留时间对样品中的MALs定性筛查，并结合二级特征碎片离子确证，均未检出阳性样品。与标准方法GB/T 20762ü2006[36]和SN/T 1777.2ü2007[37]的测定结果一致。

3 结 论

本研究建立了UPLC-Q-Orbitrap HRMS测定猪肉中9 种MALs，并进行了方法学验证。该方法简单高效、选择性好、灵敏度高，满足大量猪肉样品中MALs快速、准确定量的需要，可为其他基质中其他MALs的快速筛查提供方法参考，也是对现有国家标准检测动物源性食品中MALs的有力补充。