红阳猕猴桃糖度分布与糖度测定方法分析

周艳　朱永清　李华佳　袁怀瑜　徐瑞　钟杨　曹乐淑　李可

摘要：本文以红阳猕猴桃为研究对象，分别测定果实不同部位及全果糖度值，通过差值分析，单因素方差分析等初步了解了猕猴桃果实糖度分布特征，结果显示红阳猕猴桃糖度分布由茎端向花端呈非等梯度增长趋势，以果实赤道线为分界，两端果实糖度存在显著差异，即P1、P2与P3、P4之间差异显著，表明果实中间部位糖度分布变异系数大。同时，结合目前猕猴桃糖度检测方法及技术手段，探讨了糖度分布对糖度检测的影响，结果表明，采用两端测定平均值能够较好地反应全果糖度，对于基于糖度建立无损检测方法时，更应该注意样本参数收集部位与糖度检测部位之间的一致性。以上研究为红阳猕猴桃最佳糖度测定提供了科学依据。

关键词：红阳;猕猴桃;糖度分布;AVOA;无损检测

中图分类号：S-3文献标识码：ADOI：10.19754/j.nyyjs.20200115006

收稿日期：2019-11-12

基金项目：四川省科技计划重点研发项目（项目编号：2019YFG0155）

作者简介：周艳（1995-），女，本科。研究方向：采后生理;通信作者李可（1987-），男，博士。研究方向：食品生物技术。

糖度是果实最主要的内部品质之一，糖度中85%左右的成分是可溶性固形物（SSC），因此常以可溶性固形物含量反映糖度。SSC含量的变化与果实的生长、发育、成熟、衰老等过程密切相关，SSC变化能够反映生长和贮藏过程中外界环境如生长激素、胁迫因子等的影响。因此，猕猴桃SSC含量不仅是感官评价和品质分级的一个重要指标，也是检验水果生长发育、成熟衰老的重要指标，在农业研究和农业生产以及水果贮藏环境下，SSC检测值已经成为评价果实生长发育规律，制定科学的采收标准，评判果实贮藏保鲜效果的最重要、最关键指标之一 [1-5]。基于SSC的重要性，目前多数研究将高光无损检测技术 [6]、荧光高光谱图像无损检测技术 [7]、近红外漫反射光谱法无损检测技术 [8]等用于SSC含量分析，以期通过建立快速、准确、无损的猕猴桃可溶性固形物含量检测方法来反映果实内部品质。但以上内容均需要以准确的SSC检测方法为基础。

研究表明，在同一水果的不同部位，由于代谢水平差异其糖度值存在较大差异[9]，因此如何准确采样及计算成为SSC的关键。国内检测水果SSC的方法是取部分果肉榨汁、将果汁滴入折射仪中测量 [10]，该方法具有仪器价格低廉、操作过程简便等优点，是水果可溶性固形物含量测定的经典方法。但是经查阅国内SSC相关检测方法可知，目前国内关于猕猴桃SSC含量检测方法没有统一的标准和参考依据。耿玉韬 [11]研究了金冠苹果和砀山酥梨的糖度最佳检测点为中點，贾云云等分析认为草莓果实最佳测糖位也为果实中段 [12]。目前猕猴桃检测方法多借鉴Burdon [13]等的方法，分别检测果实两端SSC含量然后取平均值，然而由于对猕猴桃SSC分布不清楚，该方法的合理性及其在红外、荧光高光谱等新技术方面的普适性还有待进一步研究。此外，我国猕猴桃生产者在SSC检测过程中更多的是将两端果汁不等量混匀后检测SSC含量，由此可见，关于猕猴桃SSC含量检测方法及其科学依据的探讨是非常必要的。

基于此，本文研究了不同部位果实SSC含量与全果SSC含量之间的关系，以期为猕猴桃SSC含量测定方法提供依据。

1材料与方法

1.1材料

果实采收后20℃自然条件下成熟，选取硬度4～6N果实（可食用成熟度）时，将果实按照纵径长度均匀分为4段。

1.2方法

选取果肉硬度在4～6N果实（可食用成熟度），使用ATAGO的PAL-1 POCKET糖度计测定果肉汁液的糖度（Brix）。将果实沿纵轴切为相等两部分，将其中一半猕猴桃从蒂至脐按纵轴长度分为P1、P2、 P3、P4 进行4等分;取每段果肉组织捣碎机捣碎后5000rpm离心5min，取上清液用于测定可溶性固形物含量分别记为P1、P2、P3、P4;将另一半果实果肉榨汁测定糖度代表全果糖度，记为AVE。

1.3数据分析

采用JMP13.0分析糖度在果实不同部位的分布情况，SPSS19.0对不同部位果实及全果糖度值进行差异性分析。

2结果与讨论

2.1不同部位糖度分布分析

果实糖度分布与果实品种具有相关性，猕猴桃属于呼吸跃变型果实，研究果实糖度的分布，确定测糖最适部位对正确了解果实含糖量，了解果实生长发育水平和品质优劣，指导生产、贮藏和销售具有重要的意义。本文分析了20枚可食成熟度猕猴桃果实的SSC分布情况，结果如下。

由图1可知，猕猴桃糖度的分布由茎端至花端呈逐渐增加的趋势，糖度由高到低依次排序为P4>P3>P2>P1，P1、P2、P3、P4糖度均值分别为17.31Brix、1.61Brix、18.55Brix和19.02Brix，P3与P2之间的差异最大，P4与P3的差异其次，P1与P2之间的差异最小。进一步对不同部位糖度分布情况分析可知（图2，表1），由蒂端到脐端糖度分布95%上限和下限呈递增趋势，果实糖度分布逐渐向较大数值平移，P1部位果实糖度分布在15～20Brix之间，其中分布在17～18Brix范围内占比最大。P2部位果实糖度多数分布在16～21Brix，糖度17～18Brix和18～19Brix占比均比较;P3部位糖度连续分布在15～21Brix之间，多数糖度较为均匀地分布在17～21Brix较宽的范围内，P4部位果实糖度主要分布在17～22Brix，分布在19～20Brix的果实占比最大。同时，通过标准偏差分析可知，虽然不同部位糖度分布存在差异，但不同果实各部位糖度分布变异情况较为接近。综上可知，果实SSC含量虽然呈增加趋势，但这种增加趋势并不均匀，赤道部位糖度纵向变化最大。

2.2不同部位果实SSC与全果SSC差异分析

在明确猕猴桃糖度分布情况的基础上，本文分别通过做差法和单因素方差分析进一步对各部位果肉糖度、全果糖度的差异进行分析。

通过比较4个部位果肉糖度与全果果肉糖度可知，各部位与全果果肉差异从大到小排序为P4>P3>P1>P2>P1&P4>P2&P3（图3），与全果糖度差值绝对值之和分别为15.4（P1）、10.0（P2）、24.8（P3）、28.8（P4）、6.7（P1&P4）、6.25（P2&P3）。由此可知，采用P1&P4/P2&P3更接近平均糖度值。

进一步对以上各部位糖度进行单因素方差分析，结果显示，P1、P2、AVE、P1&P4、P2&P3之间无显著差异（P>0.05），P3、P4、AVE、P1&P4、P2&P3之间无显著差异（P>0.05），而P1、P2与P3、P4之间存在显著差异（P<0.05），P4与P1、P2之间存在极显著差异（P<0.01），P3与P1之间也存在极显著差异（P<0.01）。P&P4，P2&P3与AVE较为接近，P2&P3与AVE最为接近，说明以果实赤道部位为分界两端果实糖度分布存在显著差异，P&P4，P2&P3值与AVE相较于单一部位糖度值更为接近。

3讨论

糖度的测定是重要的，在猕猴桃糖度分析检测方法中，通常采用果实部分果肉糖度测定值代表，新西兰等采用果实两端果肉果汁SSC测定值的平均值表示，而国内鲜有关于糖度测定方法的描述 [14-17]。同时，据笔者常年调研过程中发现，目前实际生产中采用的糖度测定方法也极为不规范，取样部位比较随机，部分虽然采用取两端果汁混合测定，但存在不等量混合等问题。通过对猕猴桃各部位糖度分布及其与全果糖度值差异分析可知，糖度在猕猴桃果实中呈不均匀分布，猕猴桃糖度由蒂端到脐端呈非等梯度增长变化，以果实赤道线为分界两端糖度分布呈显著性差异（P<0.05），采用两端平均值和赤道线两边平均值相较于单一部位能更好的代表果实糖度。因此，为了准确测定果实的糖度，两端分别采样，等量混合或采用两段测定平均值才能更好代表果实的真实SSC含量。随着近红外等技术的日趋成熟，以猕猴桃SSC为靶标建立的猕猴桃成熟度红外等无损检测技术逐渐成为研究热点，而这些方法的建立更加注重检测部位与果肉糖度之间的对应关系，对建立模型的优劣存在较大影响 [18]。目前，红外检测多以果实赤道部位为检测点，以果实SSC为指标构建果实成熟度无损检测方法，本研究结果表明赤道两侧P2、P3部位果肉糖度差异较大，说明在采用红外光谱仪等建立无损检测方法时，很容易因为检测部位的不同造成较大差异，因此更应该保证红外检测部位和SSC测定的一致性和对应性。

对猕猴桃糖度分布的了解是准确测定糖度的基础，也是研究猕猴桃果实生理变化的基础。本文揭示了猕猴桃可食状态下糖度的分布情况，关于不同成熟度果实糖度分布、硬度等其它指标分布與糖度之间对应关系等有待进一步研究。

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（责任编辑李媛媛）