家蚕醇提物对MIN6细胞增殖及凋亡的影响※

2018-04-10 05:57赵淑飞许光辉黄亦琦戚欢阳马雪云潘东明
中国中医药现代远程教育 2018年7期
关键词:家蚕胰岛试剂盒

赵淑飞 许光辉 黄亦琦 戚欢阳 马雪云 潘东明

糖尿病的发病率呈逐年上升趋势,当前全球范围内糖尿病患者已高达3.87亿,预计这一数字到2030年会超过5亿。现在我国的糖尿病绝对患病人数居世界首位,糖尿病已经成为继肿瘤、心脑血管病之后对人类健康构成严重危害的第三大疾病,阐明糖尿病发病机制、开发安全有效的治疗药物刻不容缓。研究表明[1-2]2型糖尿病患者胰岛β细胞凋亡增高,胰岛素分泌功能下降。因此,保护胰岛β细胞分泌功能,减缓细胞凋亡,是抗糖尿病的关键,也是寻找抗糖尿病有效药物的基础。

家蚕治疗消渴病历史悠久,在传统中药的记载中关于家蚕治疗消渴病的介绍,如《齐民要术》 《天工开物》 《神农本草》 《中国药物》等对家蚕的药用价值均有记载,主要用于治疗小儿疳热、消瘦、消渴。现代药理研究发现[4-6]全蚕粉抑制血糖值的主要有效成分是1-脱氧野尻霉素和黄酮类化合物。全蚕粉[7]中含有三碘甲腺原氨酸(T3),蚕沙中果胶,以及全蚕粉中的蛋白质多肽、甾族激素、蚕素、蜕皮激素等物质[5,8],可能具有不同程度调节血糖的作用。本实验中用家蚕醇提物(Silkworm alcohol Extract,SA) 作用于胰岛β细胞,旨在研究其对胰岛β细胞增殖、凋亡的影响。

1 材料

1.1药品与试剂 DMEM培养基(Hyclone公司);胎牛血清(Bi公司);CCK-8试剂盒(Keygentech公司);PI荧光染色试剂盒(Keygentech公司)。

1.2细胞株 小鼠胰岛β细胞瘤MIN6细胞,采用DMEM高糖培养基,临用前加青链霉素混合液、10%FBS。在37 °C,5%CO2条件下培养。

2 方法

2.1SA的制备 采集5龄3天家蚕,冻干粉碎,70%乙醇提取,得到乙醇部位,与培养基配制成0.66 g/mL的混悬液,0.22 um水系滤膜过滤,备用。

2.2CCK-8法检测SA对正常细胞增殖活性 取对数生长期的MIN6细胞,调整浓度为4×104,接种至96孔板中,加入细胞培养液以100μL/孔。培养24h细胞贴壁汇合,弃培养基,用细胞培养基稀释SA,以每孔100μL的量加入细胞,终浓度设为0.25 mg/mL、0.5 mg/mL、1 mg/mL,每孔至少设3个重复孔,同时以不含SA的细胞作为空白对照组,培养12 h,每孔10μL的CCK-8溶液,37°C培养箱孵育4 h,酶标仪检测OD值,波长为450 nm。实验重复3次。

2.3H2O2诱导MIN6细胞损伤模型实验方法同2.2,MIN6细胞培养24 h贴壁后,H2O2终浓度设为0、220、440、660、880μmol/L,至少设3个重复孔,培养12 h,按CCK-8试剂盒操作方法测OD值,计算细胞存活率。实验重复3次。

2.4CCK-8法检测SA对H2O2损伤细胞的作用 实验方法同2.2,MIN6细胞加家蚕醇提物预培养12 h,设5个分组:空白组、模型组、440μmol/L H2O2+0.25 mg/mL SA组、440μmol/L H2O2+0.5 mg/mL SA组、440μmol/L H2O2+1 mg/mL SA组。至少设3个重复孔,培养12 h,按CCK-8试剂盒操作方法测OD值。实验重复3次。

2.5流式细胞仪检测细胞凋亡 取生长状态好的MIN6细胞,按照常规传代方法制成单细胞悬液接种于10 cm2培养皿,约1×105/mL,每瓶加DMEM完全培养液10 mL,培养24 h细胞贴壁后,弃原培养液,磷酸盐缓冲液(PBS) 洗2次,培养基稀释成2.2所示的浓度,培养细胞24 h,同时设空白对照组;细胞密度106/mL,用0.02%胰酶进行常规消化2 min,含血清的培养液终止消化,吹打均匀,细胞悬液离心(5 min、800 rpm),弃上清,加7 mL PBS重悬细胞,制成单细胞悬液,离心;弃上清,加70%乙醇固定,与4°C冰箱过夜。弃去乙醇,加PBS至1 mL,离心;加入PBS 300μL重悬细胞沉淀,加入RNaseA(终浓度20 ug/mL) 0.6μL,37°C作用30 min;向300μL细胞悬液中,加入PI(1 mg/mL)10μL,置于4°C冰箱,避光染色30 min,即可上机检测。2.6统计学方法 采用SPSS 20.0软件包进行统计学分析,结果采用均数±标准差(x±s)表示。对于各组之间的差异采用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。

3 结果

3.1SA对正常MIN6细胞的作用 用CCK-8法检测SA对MIN6细胞增殖活性的影响,结果如表1所示。不同浓度SA作用于MIN6细胞12 h,与对照组相比,0.5 mg/mL和1 mg/mL SA组MIN6细胞活性升高,且呈浓度依赖性(P<0.05)。

表1 不同浓度SA作用后胰岛MIN6细胞的增殖活性 (x±s)

3.2H2O2诱导MIN6细胞损伤模型 不同浓度H2O2诱导MIN6细胞损伤结果如表2所示。不同浓度H2O2作用于MIN6细胞12 h后,对细胞造成不同程度的损伤。浓度为440μmol/L H2O2培养细胞12 h后,计算细胞存活率(给药组/空白组×100%),存活率为60%(P<0.05),为最佳造模浓度。

表2 不同浓度H2O2诱导MIN6细胞损伤 (x±s)

3.3SA对H2O2损伤MIN6细胞的作用 SA对H2O2损伤MIN6细胞的作用,结果如表3所示。不同浓度SA+440μmol/L H2O2作用于MIN6细胞12 h后,440μmol/LH2O2+0.5 mg/mL SA组和440μmol/L H2O2+1 mg/mL SA组与模型组相比对MIN6细胞有保护作用(P<0.05)。0.25 mg/mL+H2O2SA组与模型组相比,差异无统计学意义。

表3 不同浓度SA对H2O2损伤MIN6细胞的保护作用 (x±s)

3.4SA对MIN6细胞凋亡的影响 流式细胞仪检测细胞凋亡结果显示,与对照组比较,0.5 mg/mL和1 mg/mL SA组MIN6细胞凋亡率呈减少趋势(P<0.05);0.25 mg/mLSA组与正常组比较差异无统计学意义。结果见表4。

表4 不同浓度SA作用后胰岛MIN6细胞的凋亡率 (x±s)

4 讨论

胰岛β细胞在糖尿病的发生发展中起着十分重要的作用[9],胰岛β细胞功能损害是糖尿病的主要病理机制之一。尽管胰岛素抵抗是2型糖尿病发病的始动因素,但β细胞功能受损是2型糖尿病的决定因素[10]。本实验用不同浓度的SA(0、0.25、0.5、1 mg/mL) 干预胰岛 MIN6细胞12 h,发现与对照组比较,0.5 mg/mL和1 mg/mL SA组MIN6细胞增殖活性增高(P<0.05),细胞凋亡率减低(P<0.05),且呈剂量依赖性;440μmol/L H2O2诱导MIN 6细胞损伤12 h,细胞存活率为60%,为最佳造模浓度。0.5 mg/mL和1 mg/mL SA对H2O2诱导MIN 6细胞损伤有保护作用。

本实验结果提示适宜剂量的SA可以通过促进胰岛β细胞增殖,抑制其凋亡,进而改善胰岛β细胞功能,对糖尿病的防治有积极作用;此实验探讨了SA对胰岛β细胞的影响,其机制正在进一步研究中,考虑与AKT及其下游信号传导通路有关。因此,进一步探讨SA的作用机制及临床疗效,对中西医联合治疗糖尿病有着重要意义。

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