葛延玮 胡鹏飞 林原 刘文雷 依高彤 刘奇 张磊 张伟仁 黄露
摘 要:增殖放流是对受损的沿海生态系统开展生物资源修复的一种有效手段,而对即将放流的苗种开展营养成分分析,有助于了解种质质量,为今后提升增殖放流的幼体培育工艺,提高放流后苗种在自然环境中的存活率、抗逆性等性状奠定重要基础。该文从基础营养成分、脂肪酸以及微量金属元素等方面分析了3家放流单位所培育的中国对虾虾苗营养成分,以期为今后建立适宜的放流苗种的种质质量分析标准提供科学资料。
关键词:中国对虾;增殖放流;营养成分
中图分类号 Q952 文献标识码 A 文章编号 1007-7731(2018)22-0050-03
Abstract:Stock enhancement is an effective means of repairing the biological resources of damaged coastal ecosystems.Analysis of the nutrient composition of hatchery-raised seeds that will be released will help to assess the health level of the seed.Moreover,this study can also provide basic information for improving the seed rearing process and improving the survival rate and stress resistance of the seed in the natural environment after release. In this study,the differences hatchery-raised seeds quality between the three farms were analyzed from the basic nutrients,fatty acids and trace metals. It is hoped that it will provide a scientific basis for the establishment of hatchery-raised seeds quality analysis standards in the future.
Key words:Fenneropenaeus chinensis;Stock enhancement;Nutrient content
中国对虾(Fenneropenaeus chinensis)俗称明虾、对虾、黄虾(雄)、青虾(雌)等,属于节肢动物门,甲壳纲,十足目,对虾科,对虾属。中国对虾是一种广泛分布、一年生、暖水性、长距离洄游底栖大型经济虾类,曾在我国四大海域均有分布[1]。目前,辽宁、河北、山东海域为中国对虾的主产区,其肉质鲜嫩味美,营养丰富,是重要的渔业资源。
自20世纪80年代以来,由于人类活动对沿海生态系统的过度干扰,加之生活生产污水排放等原因,造成海水污染,海洋生物产卵地丧失,近海渔业资源量显著下降,主要经济种类被过度开发[2-3]。为恢复天然水域生物种群资源量,保证渔业生产的可持续发展,维持沿海生态系统平衡,近年来,我国沿海纷纷开展了人工放流增殖活动。自1984年起,我国开始实施中国对虾人工繁育及放流增殖工作,且放流数量不断扩大;但1993年疾病大规模爆发后[4-6],中国对虾放流数量锐减,渤海海域甚至一度暂停中国对虾苗种放流活动;直至2000年前后,我国沿海各省份的中国对虾人工放流才逐步恢复,近几年放流数量又再次激增[7]。以辽宁省为例,2012—2016年在黄海北部和辽东湾海域,共放流中国对虾苗种超过174.6亿尾。
增殖放流指将人工繁育苗种或采集到的野生苗种投放到自然海域中,突破自然种群补充限制,达到修复固有种群,提高渔获量的目的[8]。它是一项综合性工程,尽管影响放流活动经济、生态效益的因素较多,但苗种质量却是最直接的因素之一[9-10]。近20年来,随着人们对渔业养护的重视和对虾养殖技术不断提高,通过人工增殖放流,我国近海中国对虾资源量得到有效恢复,取得了一定经济和社会效益,但放流苗种的种质质量情况依旧未知,这不仅影响到人工增殖放流效果,也很可能会产生潜在的遗传效应[11]。近些年,虽有不少学者针对以上问题提出一些建议,但关于增殖放流过程中苗种质量的实例研究至今仍不多见[12-14]。
本研究旨在通過解析放流虾苗营养成分等不同指标,来探究经人工培育后不同放流单位即将放流中国对虾的营养状况及差异,为今后系统解析放流苗种的种质质量,优化苗种培育工艺,奠定科学基础。
1 材料与方法
1.1 实验材料及样品保存 实验用中国对虾虾苗在2016年6月间放流的前1d,取自盘锦、金州和营口3家放流单位,所取虾苗平均体长为14.7mm。所取样品经漂洗,液氮速冻后放置于-80℃冰箱保存备用。
1.2 实验设计及样品处理 实验共设3个组别,分别为盘锦组、金州组和营口组,每组设3个重复。分别测量中国对虾虾苗水分、蛋白质、脂质,并进行脂肪酸和微量无机金属元素检测。
1.3 检测方法 据GB5009.3—2003《食品中水分的测定》,采用直接干燥法测定水分含量;采用考马斯亮蓝法[15]测定粗蛋白含量;据Folch法[16]通过甲醇-氯仿提取法测定粗脂肪含量;待粗脂肪含量检测后,根据Mercalfe L.D.法[17]使用气相色谱仪(岛津GC-2010,日本)测定各组实验样品脂肪酸成分及含量;最后使用珀金埃尔默原子吸收光谱仪(AAnalyst 800,PerkinElmer,美国)测定各组实验样品微量无机金属元素。
1.4 数据处理 实验数据用平均值±标准误(mean±S.E.)表示。使用统计分析软件SPSS(24.0)的单因素方差(one-way ANOVA)开展各测量参数组间差异性分析,P<0.05认为差异具有统计学意义。当方差齐时,使用LSD命令进行组间多重比较;当方差不齐时,使用Tamhane's T2(M)进行近似检验。
2 结果与分析
2.1 基础成分 增殖放流用中国对虾虾苗基础成分分析如表1所示。由表1可知,营口放流单位培育出的虾苗粗蛋白含量最高,盘锦放流单位培育出的虾苗粗脂肪含量最高,而金州组虾苗表现出粗蛋白和粗脂肪含量最低,且具有统计学差异(P<0.05)。
2.2 脂肪酸 增殖放流用中国对虾虾苗脂肪酸分析结果如表2所示。共统计了12种脂肪酸,包括4种饱和脂肪酸(C14:00、C16:00、C17:00、C18:00),3种单不饱和脂肪酸(C16:1n-7、C18:1n-9、C18:1n-7),以及5种多不饱和脂肪酸(C18:2n-6、C18:3n-3、C20:4n-6、C20:5n-3、C22:6n-3)。因某些微量脂肪酸所占比例较少,可能存在分析误差,故未计入统计。由表2可知,3个组别的饱和脂肪酸含量并无显著差异;但在单不饱和脂肪酸含量方面,营口组>金州组>盘锦组,且具有统计学差异(P<0.05);而在多不饱和脂肪酸方面,盘锦组>金州组>营口组,也具有统计学差异(P<0.05)。
中国对虾幼体发育过程中,脂肪酸组成会发生明显变化,表现为幼体中所含饱和脂肪酸比例逐渐减少,不饱和脂肪酸比例逐渐增大。但由于大多数虾类缺乏合成长键脂肪酸的能力,因此幼虾在生长发育过程中,必需不断地从外界环境(如饲料)中获取不饱和脂肪酸来满足其生理发育需求。因此,探究对虾虾苗体内基础营养成分、脂肪酸组成和微量金属元素的差异,可以作为建立中国对虾虾苗培育质量的一种有益参考。本实验中,金州实验组虾苗体内粗脂肪含量和粗蛋白含量最低,可能暗示金州实验组虾苗在饲育过程中,从饲料中所获取的营养不充分。由表2可知,营口组虾苗C20:5n-3(EPA)、盘锦组C22:6n-3(DHA)所占比例最高。研究表明,若投喂饲料中C22:6n-3(DHA)含量较高,则可增加虾苗的脱皮次数,提高生长速度[18]。根据KanazawaA[19]等研究成果,为满足自身的能量需求,水生动物很可能具有利用一定量的C18:3n-3(亚麻酸)来合成C20:5n-3(EPA)和C22:6n-3(DHA)的能力。因此,对虾虾苗体内C18:3n-3(亚麻酸)含量的高低也非常重要。本实验中,C18:3n-3(亞麻酸)含量盘锦>营口>金州,且差异具有统计学意义(P<0.05)。
钙、铁、铜、锌是甲壳类生长发育必需的微量金属元素,是生物体内一些酶和组织的重要组成部分,或直接参与机体内重要的生理活动。李荷芳[20]等检测了中国对虾肌肉中几种重要金属元素含量,但研究对象限于体长大于3cm对虾,目前对于体长更小的对虾虾苗尚缺乏研究。本实验样品小于2cm,因肌肉难以解剖,故检测了虾苗整体的微量金属元素含量。从实验结果可以看出,不同组别虾苗的微量金属元素含量存在一定差异,比如,在铜含量方面,盘锦实验组>金州>营口,上述结果与虾苗的体色相对应[21],即盘锦组虾苗表现出体色最深,其次为金州和营口组。
2.3 微量金属元素 增殖放流用中国对虾虾苗微量金属元素分析如表3所示。从表3可以看出,在本实验中,样品之间钙含量没有显著差异,盘锦实验组铁含量低于营口和盘锦组,营口与金州组培育的虾苗锌含量略大于盘锦,而铜含量则相反。
3 小结
通过对盘锦、营口、金州3家放流单位培育的放流用中国对虾虾苗营养成分的检测分析显示,3个实验组中虾苗的基础营养成分、脂肪酸以及微量金属元素均有所不同,这可能会反应在放流后虾苗的生理功能上。今后尚需检测营养及生理生态学指标,探究苗种营养状况与自身存活率、抗逆性间的内在关系,为科学地开展增殖放流工作提供有力支撑。
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(责编:张宏民)