植物生长调节剂对多花黄精芽体外发生过程中性状的影响

孙志学，刘怡菲，孟凡金

（1.本溪县青山保护局，辽宁本溪117100；2.辽宁省林业科学研究院，辽宁沈阳110032）

1 实验理论概述

多花黄精是百合科植物，它的根茎能作中药，具有抗菌、降压、延缓风湿疼痛的疗效，主要生长在我国南方地带，繁殖培养方式多为无性生殖，但其繁殖系数不高，无法大面积推广种植，目前还不能为推广提供大量的种源。并且一直使用无性生殖法会导致这种植物的退化。为了改良这种现象，保证其能获得良好的推广需要借助性杂交和基因工程手段，而这两种手段都需要借助组织培养完成。组织培养是一种比较有效且能帮助多花黄精快速生长的方法，其优点在于能在短时间内得到大面积的种苗，并且在具体的组织培养过程中通过多倍体的变异，可能会出现新品种。为了做种培养，已经成立了较大型的实验基地，靠组织培养实现快速生长。植物生长调节剂因种类不同其应用作用也不同，对使用的要求比较严格，只有在特定的情况下才能对目标植物产生促进或抑制的作用，如果改变调节剂的浓度，之前的结果就会不一样。所以，在进行实验时必须把握好植物生长调节剂的浓度，一般来说，浓度越低，促进作用越好；浓度越高，抑制作用越好。

2 实验过程

2.1 实验材料与方法

准备几个多花黄精的根茎，并进行切割，切成大约2毫米厚的薄片置于培养基上，培养基的规格为MS+BA1.0mg/L+2,4-D0.5mg/L，每天光照大约达到16h，温度保持在25℃左右，光源的强度基本维持在24lx，在这种状况下培养两个月。另外，把多花黄精的外植物体分成直径3毫米的小圆团，将其接种在MS培养基上，该培养基中含有不同的植物生长调节剂组合，笔者将其分为BA，TDZ，2,4-D及NAA，多花黄精生长期间，在MS培养基中接一点蔗糖和琼脂。在实验过程中把两个培养基的酸碱浓度值调节到5.8，15Pa，温度大约为120℃，进行15分钟灭菌处理。经过2个月的实验，发现每组的性状有以下特点，基本每块外植物体上芽均超过0.5mm，植物体长出叶片、外植体的自然生长率以及根茎的发生频率。

2.2 实验结论

2.2.1 不同植物生长调节剂组合对多花黄精芽发生过程中几种性状的影响 该实验中的培养基均能使多花黄精的幼芽再生，进入培养基后，多花黄精切口中的颗粒状伤痕逐渐增大，变成颗粒团状，大概经过40小时后，颗粒表面的嫩芽呈现凸起状，其他叶片也会直接从颗粒表面生成。颗粒状逐渐长大后，其团状越来越不规律，团状最终形成根茎结构。TDZ与2,4-D组的培养基中能看到少许的外植物体表面再生芽。培养2个月后对各培养基的植物性状进行统计总结。TDZ1.5mg/L+2,4-D

1.0mg/L的培养基比较适合多花黄精嫩芽的增长，每个根茎出的嫩芽生长数能达到8个，比其他激素组合增长的很多，而BA与2,4-D最多只有5个嫩芽，远不及TDZ1.5mg/L+2,4-D

1.0mg/L的培养基，显然TDZ1.5mg/L+2,4-D1.0mg/L的培养基对嫩芽的再生和增殖起的作用最大。在BA1.0～2.0 mg/L+NAA1.0～2.0mg/L及TDZ1.5mg/L与 2,4-D1.0mg/L或NAA1.0mg/L组合的培养基上有86%的概率产生叶片，并且四组对照之间没有很大的差异，从多花黄精的叶片生长频率看BA与NAA组合及TDZ与2,4-D或NAA都比较适合用来培养叶片的成长，而如果培养目标是多花黄精的根部，BA2.0mg/L+NAA1.0mg/L对植物生长调节是最好的，在同一组内BA2.0mg/L+2,4-D1.0～2.0mg/L对植物根茎的生长是最好的，再生的根茎都能大于0.5mm。如果想将多花黄精作为药用，提高其药用价值，采用这种培养方式能实现种植的最大化。

2.2.2 不同植物生长调节剂组合对芽形态发育的影响 在TDZ的培养基中，如果嫩芽能进一步生长，就能看到变态叶的形成，变态叶的叶片相对厚实，呈不规则弯曲状。BA的培养基中叶片是正常的，无论是形状还是厚度，都在正常数据范围内，所以TDZ加NAA或2,4-D与BA加NAA的培养基组合从根本上没有很大差异，但是TDZ加NA或2,4-D的培养基组合显然不能用于叶片的正常生长诱导。3结语

综上所述，可知实验中的集中植物生长调节剂在哪种情形下能得到良好的发育，并且具体的生长剂在哪里更适应那一部分的发展。植物的愈伤组织中一般有大量的天然植物有效成分，所以目前采用这种方式实现药用的已经成为一种实际的趋势，并且通过这种培养方式还不受外界因素的制约，最大化的实现人工控制，现在有很多工厂能够实现部分多花黄精的生产，比如青蒿素、人参皂苷等，尽管现行的技术还不够成熟，但是笔者相信，经过不断地发展，未来该技术会有更大的发展空间。

[1]Wang LS,Yang HM, Wang YF,etal. Formation ofsomatic embryo intissue culture of Fritilla riae pallidiforae andcytol ogical observation [J]. J Lanz hou Univ - Nat Sci (兰州大学学报·自然科学版),1988, 14(01):109-110.

[2]Hao YR,Li MS,Wu YW.Callus ind ucti on and pl antregenerati onin tissue culture of Fritillariae pallidiflorae[J].ActBot Bor-OccSin(西北植物研究),1982,2(01):38-43.

[3]SunJS,ZhuZQ,WangJJ.Callus formati on and organregenerati on in the tissu eculture of Fritillaria thunber giiMiq[J].Acta Bot Sin(植物学报 ),1977,19(02):161-162.