张友福 罗来邦 杨华 丁利民 杨锦然 罗文峰 龙成美 李新长
摘 要 目的:探讨环孢素A(ciclosporin A, CsA)和他克莫司(FK506)在体外对外周血单个核细胞内乙型肝炎病毒复制的影响。方法:建立乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸(HBV-DNA)永久转染人外周血单个核细胞株,计算CsA和FK506对HBV-DNA永久转染人外周血单个核细胞株的药物安全浓度,采用狭缝印迹杂交法半定量分析细胞内HBVDNA水平。结果:CsA和FK506的药物作用安全浓度分别是≤36 μg/ml和≤200 ng/ml。在安全浓度范围内,CsA的质量浓度与细胞内HBV-DNA相对复制水平呈显著负相关(r=-0.886,P<0.05);FK506的质量浓度与细胞内HBVDNA相对复制水平无明显相关性(r=-0.593,P>0.05)。结论:CsA在体外呈剂量依赖性地抑制外周血单个核细胞内乙型肝炎病毒复制,而FK506不具备上述特性。
关键词 环孢素A 他克莫司 乙型肝炎病毒 外周血单个核细胞
中图分类号:R373.21 文献标志码:A 文章编号:1006-1533(2018)23-0097-03
In vitro effect of ciclosporin A and tacrolimus on the replication of peripheral blood mononuclear cells mesne hepatitis B virus *
ZHANG Youfu**, LUO Laibang, YANG Hua, DING Limin, YANG Jinran, LUO Wenfeng, LONG Chengmei, LI Xinchang(Department of No.3 General Surgery, the Peoples Hospital of Jiangxi Province, Nanchang 331100, China)
ABSTRACT Objective: To discuss the effect of ciclosporin A (CsA) and tacrolimus (FK506) on the replication of peripheral blood mononuclear cells mesne hepatitis B virus in vitro. Methods: A human peripheral blood mononuclear cell line permanently transfected with hepatitis B virus deoxyribonucleic acid (HBV-DNA) was established to calculate the safe concentrations of CsA and FK506 for HBV-DNA permanently transfected human peripheral blood mononuclear cell line, and semi-quantitative analysis of intracellular HBV-DNA levels was performed by slot blot hybridization. Results: The safe concentrations of CsA and FK506 were <36 mg/ml and <200 ng/ml, respectively. Within the safe concentration range, the mass concentration of CsA was negatively correlated with the relative replication level of HBV-DNA in cells (r=-0.886, P<0.05); the mass concentration of FK506 was not correlated with the relative replication level of HBV-DNA in cells (r=-0.593, P>0.05). Conclusion: CsA can in vitro inhibit hepatitis B virus replication in peripheral blood mononuclear cells in a dose-dependent manner but not FK506.
KEY WORDS ciclosporin A; tacrolimus; hepatitis B virus; peripheral blood mononuclear cell
环孢素A(cyclosporin A, CsA)和他克莫司(FK506)均为常用的器官移植后免疫抑制剂。研究发现,CsA 对乙型肝炎病毒脱氧核糖核酸(HBV-DNA)转染人肝癌细胞的乙肝表面抗原、HBV-DNA表达具有抑制作用[1]。然而,HBV不仅存在于肝细胞中,而且存在于外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell, PBMC)中,PBMC内HBV成为乙型肝炎病患者肝移植术后HBV再感染的病毒来源之一[2-3]。目前,关于CsA或FK506对PBMC内HBV复制的体外实验研究却鲜有报道。为此,我院开展本研究,旨在探讨CsA和FK506在體外对PBMC内HBV复制的影响,为日后肝移植免疫抑制方案的临床研究提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 细胞培养
收集乙肝病毒携带者的外周静脉血,分离PBMC,将PBMC种植于10%胎牛血清(美国Gibco 公司)、100 U/ml青霉素(美国Sigma公司)的RPMI 1640培养基(美国Gibco公司),置于孵箱中培养(37 ℃、饱和湿度、5% CO2),待细胞融合度达85%±5%时,用0.25%胰蛋白酶(美国Thermo Fisher Scientific公司)消化传代,待P/N值>5时,用于实验[4]。
1.2 四甲基偶氮唑蓝(methyl thiazolyl terazolium, MTT)试验
取对数生长期的PBMC,0.25%胰蛋白酶消化后稀释成2.5×104个/ml的混悬液,接种于96孔板上,200μl/孔。培养24 h后弃上清液,分別加入100 μl预先配制好的含不同浓度CsA 的培养基(0.00、0.50、1.00、2.00、4.00、8.00、16.00、24.00、36.00、40.00、80.00、100.00及200.00 μg/ml)和FK506的培养基(0.00、5.00、10.00、20.00、50.00、100.00、200.00、400.00、800.00、1000.00、2000.00、4000.00及5000.00 ng/ml),以不含药孔作对照,每个浓度设3个复孔。每隔24 h换相应药物质量浓度的新鲜培养基,培养4 d后弃上清液,每孔加入5 g/L的MTT 20 μl,继续培养4 h后,加入二甲基亚砜200 μl,用全自动酶标仪于570 mm处测定A值[5]。采用下列公式计算细胞存活率:细胞存活率=药物处理孔A值平均值/对照孔A值平均值×100%。
1.3 药物干预实验
取对数生长期的PBMC,胰酶消化后稀释成2.5×104个/ml的混悬液,接种于24孔板上,200 μl/孔。培养24 h后弃上清液,分别加入100 μl预先配制好的含不同浓度 CsA的培养基(0.00、0.50、1.00、2.00、4.00、8.00、16.00、24.00及36.00 μg/ml)和 FK506的培养基(0.00、5.00、10.00、20.00、40.00、80.00、160.00及200.00 ng/ml),以不含药孔作对照。每隔24 h换相应药物质量浓度的新鲜培养基,培养4 d后收集24孔板各孔培养细胞,独立保存。
1.4 HBV-DNA检测
培养细胞经磷酸盐缓冲液(氢离子浓度指数为7.8)漂洗,采用全蛋白提取试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司)按说明书提取细胞 DNA。以所提取的DNA为模板,采用反转录试剂盒(全式金生物技术有限公司)按说明书逆转录成cDNA,以b肌动蛋白为内参,并用DNA凝胶电泳回收提纯。采用狭缝印迹杂交半定量(试剂盒购自上海罗氏制药有限公司)分析HBV-DNA复制相对水平。
1.5 统计学方法
所有数据均经SPSS 20.00统计学软件进行统计学处理。采用Pearson相关性分析药物的质量浓度与细胞内HBV-DNA相对复制水平的相关关系,检验水准a=0.05。
2 结果
2.1 MTT 结果
CsA的质量浓度在0.00、0.50、1.00、2.00、4.00、8.00、16.00、24.00、36.00 μg/ml 时,细胞存活率>95%。提示,CsA≤36 μg/ml对培养细胞无毒性,为药物作用安全浓度。FK506的质量浓度在0.00、5.00、10.00、20.00、50.00、100.00、200.00 ng/ml 时,细胞存活率>95%。提示,FK506≤200 ng/ml 对培养细胞无毒性,为药物作用安全浓度。
2.2 CsA和FK506在体外对细胞内HBV-DNA复制的影响
0.00、0.50、1.00、2.00、4.00、8.00、16.00、24.00及36.00 μg/ml的CsA作用4 d时间后,细胞内HBVDNA相对复制水平分别为99.68、92.76、88.96、89.92、85.49、79.54、75.44、74.80及70.26%。0.00、5.00、10.00、20.00、40.00、80.00、160.00及200.00 ng/ml的FK506作用4 d时间后,细胞内HBV-DNA 相对复制水平分别为99.46、99.72、99.83、99.65、99.49、99.20、99.50及99.30%。
CsA的质量浓度与细胞内HBV-DNA相对复制水平呈显著负相关(r=-0.886,P<0.05);FK506的质量浓度与细胞内HBV-DNA相对复制水平无明显相关性(r=-0.593,P>0.05)。
3 讨论
HBV-DNA是观察病毒感染复制的“金标准”,HBV-DNA永久转染人PBMC细胞株能完整地表达HBV-DNA,因此是PBMC内HBV复制体外实验的理想模型[5-6]。MTT结果提示,CsA≤36 μg/ml对培养细胞无毒性,FK506≤200 ng/ml对培养细胞无毒性,为药物作用安全浓度。因此,本研究在上述药物作用浓度下观察CsA和FK506对培养细胞内HBV-DNA相对复制水平的影响。
本研究结果显示,CsA的质量浓度与细胞内HBVDNA相对复制水平呈显著负相关;FK506的质量浓度与细胞内HBV-DNA相对复制水平无明显相关性。提示,CsA能呈剂量依赖性地抑制细胞内HBV-DNA复制,而FK506对细胞内HBV-DNA复制无明显影响。有关细胞内信号传导通路的研究发现,CsA能与HBV-DNA转染人肝癌细胞中的线粒体膜通透转运复合孔结合,与该复合孔结合后能抑制该复合孔的构成亚基——亲环孢素D的催化活性,从而阻止该复合孔的构象变化,续而干扰HBV-DNA转染人肝癌细胞表达,进而抑制HBV-DNA转染人肝癌细胞复制[7-9]。FK506在HBV-DNA转染人肝癌细胞内结合蛋白质为FKBP,其介导的钙离子与信号转导与亲环孢素D不同,这可能是FK506不能抑制HBV-DNA转染人肝癌细胞复制的原因[10]。HBV-DNA转染人PBMC细胞和肝癌细胞的感染复制及致病机制完全相同[11]。笔者推测,CsA 在 HBV-DNA 永久转染人PBMC细胞中抑制HBV复制的过程与HBV-DNA 转染人肝癌细胞相同。上述论断还有待进一步研究来证实。
参考文献
[1] 夏伟良, 沈岩, 谢海洋, 等. 环孢素A对乙型肝炎病毒作用的体外实验[J]. 中華传染病杂志, 2006, 24(6): 367-371.
[2] 沈薇. 乙型肝炎患者外周血单个核细胞和血清中HBVDNA含量与HBVM间关系的探讨[J]. 医学检验与临床, 2012, 23(1): 4-6.
[3] Song ZW, Ma YX, Fu BQ, et al. Altered mRNA levels of MOV10, A3G, and IFN-α in patients with chronic hepatitis B[J]. J Microbiol, 2014, 52(6): 510-514.
[4] 邢益平, 黄祖瑚, 唐保元, 等. 筛选抗HBV药物的外周血单个核细胞体外培养系统的建立[J]. 南京医科大学学报, 2000, 20(5): 399-400.
[5] 杨军珂, 杨新春, 杨龙, 等. CaN-NFAT信号传导通路参与EPCs凋亡作用的研究[J]. 心血管康复医学杂志, 2013, 22(3): 208-212.
[6] 毛学锋, 彭丽珊, 刘显, 等. 慢性乙型肝炎病毒感染者外周血单个核细胞Toll样受体9水平与CD38、HLADR、CD95水平正相关[J]. 细胞与分子免疫学杂志, 2016, 32(5): 660-665.
[7] 朱圣涛, 谢琴秀, 张亚飞, 等. 乙型肝炎患者外周血单个核细胞中共价闭合环状DNA的检测及其临床意义[J]. 中华传染病杂志, 2014, 32(4): 214-218.
[8] 杨柳, 刘晓军, 王宏宇, 等. 环孢素A对肝细胞中磷酸化AKT蛋白表达的影响[J]. 中国比较医学杂志, 2016, 26(6): 18-22.
[9] 吴鹏飞, 刘俊麟, 崔志峰. 钙调磷酸酶-活化T细胞核因子信号通路抑制剂的研究进展[J]. 中国药理学与毒理学杂志, 2016, 30(4): 397-404.
[10] 刘定燮, 姜荣龙, 吴道宏, 等. 乙型肝炎病毒S区蛋白对环孢素A诱导HepG2细胞凋亡的影响[J]. 中华器官移植杂志, 2002, 23(6): 350-352.
[11] 夏伟良, 谢海洋, 沈岩, 等. 环孢素和他克莫司在体外对乙型肝炎病毒复制影响的对比研究[J]. 中华医学杂志, 2006, 86(2): 111-115.