橘红痰咳液止咳化痰平喘抗炎作用的药效学研究＊

王艳慧，黄洁文，江 晓，吴舒楹，连林生

（广州市香雪制药股份有限公司 广州 510663）

橘红痰咳液止咳化痰平喘抗炎作用的药效学研究＊

王艳慧＊＊，黄洁文，江 晓，吴舒楹，连林生

（广州市香雪制药股份有限公司 广州 510663）

目的：研究橘红痰咳液的止咳、化痰、平喘和抗炎的药效作用。方法：采用小鼠氨水引咳法和豚鼠枸橼酸引咳法观察止咳作用；用小鼠酚红排泌法、大鼠毛细玻管排痰法及对家兔气管纤毛运动影响实验观察化痰作用；用致敏原致大鼠哮喘实验观察平喘作用；用小鼠腹腔毛细血管通透性实验和二甲苯致小鼠耳廓肿胀实验观察抗炎作用。结果：橘红痰咳液能抑制呼吸道感受器的高敏感性而引起的反射性咳嗽，促进呼吸道黏膜黏液的分泌，增加痰液的排出量，促进气管纤毛运动使痰液排放更加顺利，能降低支气管的反应性，延长实验动物的哮喘潜伏期，抑制毛细血管通透性增加，减轻小鼠耳廓肿胀度。结论：橘红痰咳液能抑制呼吸道感受器的高敏感性而引起的反射性咳嗽，为外周性镇咳而非中枢性镇咳，具有显著的止咳、化痰、平喘和抗炎作用，并且其止咳、化痰、平喘及抗炎防治作用优于或等同于阳性化学对照药。

橘红痰咳液 止咳 化痰 平喘 抗炎 药效学研究

橘红痰咳液为广州市香雪制药股份有限公司独家品种，引经于宋代《太平惠民和剂局方》里的“二陈汤”，其重用岭南道地中药材“化橘红”，并配以苦杏仁、半夏（制）、蜜百部、白前、茯苓、五味子和甘草等8味中药精制而成，是温化寒痰的代表方剂，具有理气化痰，润肺止咳的功效，适用于痰湿阻肺型急性气管-支气管炎、慢性支气管炎急性发作、咽喉炎、感冒等疾病的治疗[1-2]。目前有关橘红痰咳液的药效研究尚未见报道，笔者对橘红痰咳液进行了止咳、化痰、平喘和抗炎的药效作用研究。

1 实验材料

1.1 药物及试剂

橘红痰咳液（广州市香雪制药股份有限公司，10 mL/支，批号：20140402），盐酸氨溴索口服溶液（上海勃林格殷格翰药业有限公司，100 mL，0.6 g/瓶，批号：A13486），氢溴酸右美沙芬口服液（江苏汉晨药业有限公司，100 mL/瓶，批号：1311036），盐酸异丙肾上腺素（上海禾丰制药有限公司，2 mL，1 mg/瓶，批号：41140601），乌来糖（成都市科龙化工试剂厂，批号：20120109），氨水（成都市科龙化工试剂厂，批号：2014091001），枸橼酸（天津市恒兴化学试剂制造有限公司，批号：20140228），苯酚红（成都市科龙化工试剂厂，批号：20100701），卵清蛋白（规格 25 g/瓶，Biosharp），氢氧化铝（天津市福晨化学试剂厂，批号：20140807）。

1.2 动物

昆明种小鼠120只，雌雄各半，体重18-22 g，SPF级，（实验动物质量合格证号：44002100004311）；SD大鼠70只，雌雄各半，体重140-170 g，SPF级，（实验动物质量合格证号No：44002100004145）；新西兰兔12只，雌雄各半，普通级，（实验动物质量合格证号No：44002100004742）；豚鼠30只，雌雄各半，普通级，（实验动物质量合格证号No：44002100004338）均由南方医科大学实验动物中心提供。

1.3 仪器

UV-1201型紫外分光光度计（广州广一科学仪器有限公司），YLS-8A多功能诱咳引喘仪（济南益延科技发展有限公司），超声雾化器（江苏鱼跃医疗设备股份有限公司），T1000Y电子天平（美国双杰兄弟集团），BP211D电子天平（德国Sartorius公司），UW620H型电子天平（日本岛津公司），AWH-6-SA计重电子桌秤（上海英展机电企业有限公司）。

2 实验方法

2.1 小鼠酚红排放试验[4,7]

取SPF级昆明种小鼠30只，随机分为空白对照组、氨溴索组和橘红痰咳液组，每组10只。给药前小鼠禁食不禁水12 h，然后按0.01 mL·g-1体重灌胃给药，每天2次，连续给药3天。末次给药30 min后，各小鼠按剂量0.01 mL·g-1体重腹腔注射5%的酚红溶液，注射后30 min，将小鼠颈椎脱臼处死。仰位固定于手术板上，剪开颈前皮肤，分离气管，剥离气管周围组织，剪下甲状软骨下缘至气管分叉处的气管，用5%碳酸氢钠溶液0.5 mL冲洗气管，连续3次，洗出液合并，置于紫外分光光度计上于546 nm波长处测定A，并根据制定的标准曲线计算出气管冲洗液中酚红浓度，判断药物的化痰作用。

2.2 对大鼠痰液排放量的影响[4,5]

取SPF级SD大鼠30只，随机分为空白对照组、氨溴索组和橘红痰咳液组，每组10只。给药前大鼠禁食不禁水12 h，然后按5 mL·kg-1体重灌胃给药，每天2次，连续给药3天。末次给药前大鼠禁食不禁水12 h，用乌拉坦按4 mL·kg-1体重腹腔注射麻醉后，仰位固定，剪开颈中部皮肤，钝性分离气管，在甲状软骨下缘上正中两软骨环之间用尖锐的注射针尖扎一小孔，然后向气管内向心方向插入玻璃毛细管（内径为0.5 mm）1根，使毛细管刚好接触气管底部表面，以吸取气管后部的痰液，玻璃毛细管应往头部倾斜60°。当毛细玻璃管内充满时，立即另换一根。以毛细玻璃管吸取痰液的长度作为评价药物的化痰效果。记录末次给药前2 h正常痰液分泌量，然后按10 mL·kg-1的剂量灌胃给药，其中空白对照组给予等体积的生理盐水，再观察给药后2 h内痰液分泌量。

2.3 对家兔离体气管纤毛动动的影响[6]

将检疫合格的新西兰兔12只，随机分为空白对照组、异丙肾上腺素组和橘红痰咳液组。取新西兰兔，耳缘静脉注射空气处死。迅速剥离取出喉结至气管分叉处的整段气管，每条气管分成3段，并纵向切成2半，每段长约1.5 cm。将气管段分别放入37℃氧饱和的台氏液、异丙肾上腺素液和橘红痰咳液的药液中，浸泡5 min，取出气管段，甩干上面附着的多余药液，放在经37℃氧饱和台氏液湿润的棉花上，气管内膜面向上，气管与棉花一起放在培养皿中，气管保持30°倾斜，喉结端朝上。标本放置稳定后，在气管下端滴0.5 μL的印度墨汁，观察测量印度墨汁4 min运行的距离，测定印度墨汁的运行速率。每观察一次，将气管片放入氧饱和的台氏液中漂洗2次，以充分清洗掉墨汁，再将气管段放入台氏液或各药液中浸泡5 min，同法重新测量一次，重复三次，求得印度墨汁平均运行速率。(运行速率（mm·min-1）=运行距离mm·4 min-1)。

2.4 对小鼠氨水引咳实验的影响[3,7]

取SPF级昆明种小鼠30只，随机分为模型对照组、右美沙芬组和橘红痰咳液组，每组10只。给药前小鼠禁食不禁水12 h，然后按0.01 mL·g-1体重灌胃给药，每天2次，连续给药3天。末次给药1 h后，将小鼠放入多功能诱咳引喘仪中，雾化喷入氨水（每只动物放入前，更换新鲜氨水5 mL）10 s，记录小鼠咳嗽潜伏期(s)和5 min内咳嗽次数（以小鼠腹肌剧烈收缩，肩背耸动伴有张嘴/伴有咳嗽声为准）

2.5 对枸椽酸致豚鼠咳嗽的影响[5,7]

实验前一天，将豚鼠逐只放入YLS-8A多功能诱咳引喘仪中，超声雾化喷入枸橼酸喷60 s引咳，迅速将豚鼠转移至正常环境中，观察5 min内豚鼠的咳嗽次数（以豚鼠出现响亮的咳嗽声为标准），剔除咳嗽次数＜10次和＞50次者或潜伏期＜10 s和＞120 s者。取上述合格的豚鼠30只，按体重随机区组分组法分为模型对照组、右美沙芬组和橘红痰咳液组，每组10只。给药前豚鼠禁食不禁水12 h，然后按5 mL·kg-1体重灌胃给药，每天2次，连续给药3天。末次给药1 h后，将小鼠放入多功能诱咳引喘仪中，雾化喷入17.5%枸橼酸溶液60 s引咳，记录5 min内动物咳嗽次数、潜伏期（s）。

2.6 对致敏源诱发大鼠哮喘的影响[8,9]

取SPF级SD大鼠40只，随机分为空白对照组、模型对照组、氨茶碱组和橘红痰咳液组。除空白对照组外，其余40只大鼠第1天和第8天给予腹腔注射卵清蛋白（OVA，100 mg）和氢氧化铝（100 mg）混于生理盐水中制成1 mL的混悬液致敏。各组在第9天开始灌胃给药，按5 mL·kg-1体重的剂量灌胃给药，每天1次，连续给药14天；空白对照组和模型对照组给予等体积的纯化水。实验第15天开始（给药第6天），各组给药后30 min，将大鼠置于不完全密闭的雾化吸入盒中，用超声雾化器雾化吸入1%卵清蛋白溶液激发，每天激发20 min，共激发8天。

2.7 对二甲苯致小鼠耳廓肿胀的影响[10-11]

取SPF级昆明种小鼠30只，随机分为空白对照组、阿司匹林组和橘红痰咳液组，每组10只。给药前小鼠禁食不禁水12 h，然后按0.01 mL·g-1体重灌胃给药，每天2次，连续给药3天，末次给药后60 min采用推注法（取致炎剂后快速推注加样器，使致炎剂快速滴到小鼠右耳前后面中点，然后任致炎剂自行浸润扩散）对每只小鼠（空白对照组除外）右耳前后两面各滴注二甲苯0.02 mL致炎，空白对照组用生理盐水替代，左耳作对照。滴注致炎剂后30 min，颈椎脱臼处死小鼠，用6 mm打孔器在相同部位取下左右耳片，于万分之一电子天平称重。以耳片肿胀度（右耳片质量差）作为炎症指标，并计算肿胀抑制率。

2.8 对小鼠腹腔毛细血管通透性的影响[12-13]

取SPF级昆明种小鼠30只，随机分为空白对照组、阿司匹林组和橘红痰咳液组，每组10只。给药前小鼠禁食不禁水12 h，然后按0.01 mL·g-1体重灌胃给药，每天2次，连续给药3天，末次给药后60 min各组小鼠均尾静脉注射0.5%伊文思蓝生理盐水溶液0.1 mL·10 g-1体重，并立即腹腔注射0.6%冰醋酸生理盐水溶液0.1 mL·10 g-1，20 min后脱颈椎处死小鼠，剪开腹腔，用6 mL生理盐水冲洗腹腔数次，收集全部腹腔内洗出液于刻度试管中，实验结束时各试管内均用生理盐水添加至10 mL，3 000 rpm离心10 min，取上清液于610 nm测定吸光度值A，作为各组炎症程度的指标，再于伊文思蓝OD值-浓度标准曲线测得小鼠腹腔渗入的伊文思蓝量，并计算抑制率。（抑制率=（模型组A-给药组A）/模型组A×100%）。

2.9 统计方法

实验数据采用SPSS软件进行统计学处理，所有计量资料以均数加减标准差表示,计量资料采用t检验，α=0.05，计数资料采用X2检验，P＜0.05，差异具有统计学意义。

表1 橘红痰咳液对小鼠气管酚红排泌的影响(±s)

表1 橘红痰咳液对小鼠气管酚红排泌的影响(±s)

注：与空白对照组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与氨溴索组比较，##P＜0.01。

组别空白对照组氨溴索组橘红痰咳液组样本数10 10 10剂量（mL·kg-1）—2.0 5.0酚红浓度（µg·mL-1）1.42±0.30**2.23±0.42##3.25±0.92

表2 橘红痰咳液对大鼠毛细管排痰量的影响(±s)

表2 橘红痰咳液对大鼠毛细管排痰量的影响(±s)

注：与空白对照组比较，*P＜0.05，**P＜0.01，与氨溴索组比较，##P＜0.01。

组别空白对照组氨溴索组橘红痰咳液组样本数10 10 10剂量（mL·kg-1）—1.0 2.5末次给药前(mm)21.70±15.93 52.60±21.43 43.10±19.41末次给药后(mm)40.00±17.36 72.60±14.54 89.90±30.29给药后2 h增加量(mm)18.40±18.77**20.00±13.34##46.80±17.91

3 结果

3.1 橘红痰咳液对小鼠气管酚红排泌的影响

以酚红量为横坐标，OD值为纵坐标作标准曲线得Y=0.065X-0.007，R2=0.999，根据曲线计算酚红的量，各给药组与对照组进行组间比较。

橘红痰咳液组小鼠气管酚红的浓度为3.25±0.92µg·mL-1，明显高于空白对照组的1.42±0.30µg·mL-1和氨溴索组的2.23±0.42 µg·mL-1，差异有统计学意义（P＜0.01）。提示橘红痰咳液能显著增加小鼠气管酚红的排放量，增强气管呼吸道黏膜分泌的功能，达到促进痰液排出的作用，疗效显著优于阳性对照药氨溴索（见表1）。

3.2 橘红痰咳液对大鼠毛细管排痰量的影响

橘红痰咳液组给药前后2 h内大鼠毛细管排痰增加量为46.80±17.91 mm，明显高于空白对照组18.40±18.77 mm和氨溴索组20.00±13.34 mm，差异有统计学意义（P＜0.01），提示橘红痰咳液能显著增加大鼠毛细管排痰量，疗效明显优于阳性对照药氨溴索（见表2）。

3.3 橘红痰咳液对家兔离体气管纤毛运动的影响

橘红痰咳液组印度墨汁的运行速率为1.72±0.49 mm·min-1，明显高于空白对照组的1.03±0.14 mm·min-1（P＜0.01）,略低于异丙肾上腺素组的1.97±0.43 mm·min-1，但差异无统计学意义（P＞0.05）；提示橘红痰咳液能显著加快印度墨汁的运动速率，对家兔气管纤毛运动有明显促进作用，有益于痰液的排放，疗效与异丙肾上腺素相当（见表3）。

3.4 橘红痰咳液对氨水所致小鼠咳嗽的影响

橘红痰咳液组潜伏期为66.20±13.37 s，咳嗽次数为94.20±31.75，明显优于空白对照组，同时，在试验剂量范围内，与阳性对照药物右美沙芬组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）。提示橘红痰咳液能显著延长小鼠的潜伏期，减少小鼠的咳嗽次数，在试验剂量范围内，疗效与右美沙芬相当（见表4）。

表3 橘红痰咳液对新西兰兔气管纤毛运动的影响(±s)

表3 橘红痰咳液对新西兰兔气管纤毛运动的影响(±s)

注：与空白对照组相比较，*P＜0.01，**P＜0.01；与异丙肾上腺素组相比较，#P＜0.05。

组别空白对照组异丙肾上腺素组橘红痰咳液组样本数12 12 12剂量—10 µg·mL-1 0.14 g·mL-1运行速率（mm·min-1）1.03±0.14**1.97±0.43 1.72±0.49

表4 橘红痰咳液对氨水所致小鼠咳嗽的影响(±s)

表4 橘红痰咳液对氨水所致小鼠咳嗽的影响(±s)

注：与空白对照组相比较，*P＜0.05，**P＜0.01，与右美沙芬组相比较，#P＜0.05;

组别空白对照组右美沙芬组橘红痰咳液组样本数10 10 10剂量（mL·kg-1）—3.0 5.0潜伏期/s 38.90±8.45**67.40±14.66 66.20±13.37咳嗽次数133.70±24.00**82.70±13.02 94.20±31.75

表5 橘红痰咳液对枸橼酸致豚鼠咳嗽的影响(±s)

表5 橘红痰咳液对枸橼酸致豚鼠咳嗽的影响(±s)

注：与空白对照组相比较，*P＜0.05，**P＜0.01，与右美沙芬组相比较，#P＜0.05;

组别空白对照组右美沙芬组橘红痰咳液组样本数10 10 10剂量（mL·kg-1）—1.5 2.5潜伏期/s 31.2±6.44**77.2±17.54 83.7±21.66咳嗽次数22.0±7.02**9.2±4.89 7.1±4.07

表6 橘红痰咳液对致敏源诱发大鼠哮喘潜伏期的影响(±s)

表6 橘红痰咳液对致敏源诱发大鼠哮喘潜伏期的影响(±s)

注：与空白对照组相比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与氨茶碱组相比较，#P＜0.05，##P＜0.01。

组别空白对照组模型对照组氨茶碱组橘红痰咳液组动物数10 10 10 10剂量——60 mg·kg-1 2.5 mL·kg-1第1次（s）1 115.40±70.74 650.00±89.00*916.50±62.20#896.20±51.48末次（s）1 056.60±82.93 186.60±44.24**430.10±75.53##466.75±80.38

表7 橘红痰咳液对二甲苯致小鼠对耳廓肿胀度（耳重差）及抑制率的影响(±s)

表7 橘红痰咳液对二甲苯致小鼠对耳廓肿胀度（耳重差）及抑制率的影响(±s)

注：与模型对照组相比，*P＜0.05，**P＜0.01；与阿司匹林组相比，#P＜0.05。

组别空白对照组模型对照组阿司匹林组橘红痰咳液组动物数10 10 10 10剂量200 mg·kg-1 5.0 mL·kg-1— —耳重差（）0.28±0.26 10.07±1.70**7.34±2.36 7.74±0.85肿胀抑制率(%)— —27.14 23.18

表8 橘红痰咳液对小鼠血管通透性的影响(±s)

表8 橘红痰咳液对小鼠血管通透性的影响(±s)

注：与模型对照组比较，*P＜0.05，**P＜0.01；与阿司匹林组比较，#P＜0.05。

组别模型对照组阿司匹林组橘红痰咳液组动物数10 10 10剂量—200 mg·kg-1 5.0 mL·kg-1伊文思蓝浓度（µg/mL）3.44±0.84**1.59±0.67*2.36±0.61抑制率(%)—53.84 31.38

3.5 橘红痰咳液对枸椽酸所致豚鼠咳嗽的影响

橘红痰咳液组潜伏期为83.7±21.66 s，咳嗽次数为7.1±4.07，明显优于空白对照组，同时，在试验剂量范围内，与阳性对照药物右美沙芬组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）。提示橘红痰咳液能显著延长豚鼠的潜伏期，减少豚鼠的咳嗽次数，在试验剂量范围内，疗效与右美沙芬相当（见表5）。

3.6 橘红痰咳液对致敏源诱发大鼠哮喘潜伏期的影响

模型对照组大鼠的第1次和末次哮喘潜伏期分别为1 115.40±70.74 s和1 056.60±82.93 s，明显高于空白对照组，差异具有统计学意义（P＜0.01），提示造模成功；橘红痰咳液组大鼠的第1次和末次哮喘潜伏期为896.20±51.48 s和466.75±80.38 s,明显高于模型对照组的650.00±89.00 s和186.60±44.24 s（P＜0.01）,略低于氨茶碱组的916.50±62.20 s和430.10±75.53 s,但差异无统计意义(P＞0.05)，提示橘红痰咳液能显著缩短大鼠的第1次和末次哮喘潜伏期，疗效与氨茶碱相当。（见表6）。

3.7 橘红痰咳液对二甲苯致小鼠对耳廓肿胀的影响

橘红痰咳液组小鼠耳重差为7.74±0.85明显小于模型对照组的10.07±1.70，同时，在试验剂量范围内，与阳性对照药物阿司匹林组相比，差异无统计学意义（P＞0.05）。提示橘红痰咳液能显著抑制二甲苯所致小鼠耳廓肿胀，在试验剂量范围内，疗效与阿司匹林相当（见表7）。

3.8 橘红痰咳液对小鼠血管通透性试验

以伊文思蓝量为横坐标，OD值为纵坐标作标准曲线得Y=0.078 61X-0.002 07，r2=0.999 9，根据曲线计算伊文思蓝的量，各给药组与模型对照组进行组间比较。

橘红痰咳液组小鼠伊文思蓝浓度为2.36±0.61µg/mL明显低于模型对照组的3.44±0.84 µg/mL（P＜0.01），略高于阿司匹林组的1.59±0.67µg/mL。提示橘红痰咳液能显著抑制醋酸所致小鼠腹腔毛细血管的通透性增加，使伊文思蓝的在腹腔内的含量降低（见表8）。

4 讨论

咳嗽、痰多、气喘、炎症是呼吸系统疾病常见的临床表现。由于空气污染、气候变化、吸烟以及人口老龄化等因素，呼吸系统疾病发病率持续增高，有着庞大的患者人群。市场上止咳化痰药的品种主要分为中成药和化学药，化学药虽然起效快、疗效比较确定，但药效作用单一；中成药则又多以清热化痰为主，而能温性化痰治咳嗽的中成药比较少。“香雪”牌橘红痰咳液引经于宋《太平惠民和剂局方》中的“二陈汤”，进一步重用岭南道地名贵药材“化橘红”，并加以苦杏仁、白前、百部、五味子化裁而成，是温化寒痰的代表方剂。其功效主要为理气化痰，润肺止咳，用于咳痰阻肺，痰湿蕴肺所致的咳嗽、气喘、痰多。其主要成分化橘红在历代本草中多有记载，其首载于化州志，明代本草名著《本草纲目》亦有论述。其独特的涤痰止咳功效，亦备受历代医家所认颇和推崇[14]。同时现代药理研究证实，化橘红能促进胃液分泌，稀释痰液，促进痰液排出[15]。苦杏仁中的主要有效成份苦杏仁苷在体内分解产生微量氢氰酸，能轻度抑制呼吸中枢，使呼吸系统趋于安静，从而起到镇咳平喘的功效[16]。五味子、白前和百部的止咳祛痰抗炎作用亦有多篇文献报道[17-18]。根据上述单味药的作用，本研究对橘红痰咳液的止咳、化痰、平喘和抗炎的药效作用进行了初步实验研究，为验证其临床疗效提供科学的实验数据支持。

本研究结果表明，橘红痰咳液能抑制因化学物质刺激呼吸道感受器的高敏感性而引起的反射性咳嗽，可显著性减少咳嗽次数和延长咳嗽潜伏期，如氨水引起的小鼠咳嗽、枸橼酸致豚鼠咳嗽；同时本研究结果亦表明，橘红痰咳液能有效促进呼吸道黏膜黏液的分泌，增加痰液的排出量，如可增加小鼠气管酚红分泌量、大鼠痰液的排出量，其促进气管纤毛运动的作用亦能使痰液排放更加顺利；此外，橘红痰咳液能降低支气管的反应性，延长实验动物的哮喘潜伏期，抑制毛细血管通透性增加，减轻小鼠耳廓肿胀度等，提示该药物具有良好外周性镇咳作用的同时兼具较好的化痰、平喘和抗炎作用。并且药效优于或等同于阳性化学对照药，这不仅为橘红痰咳液临床应用提供了药效试验数据支持，同时也体现了中药对疾病综合防治的优势，说明橘红痰咳液具有较好的临床应用价值。

综上所述，橘红痰咳液能抑制呼吸道感受器的高敏感性而引起的反射性咳嗽，具有良好的外周性镇咳作用，同时亦兼具显著的化痰、平喘和抗炎作用，疗效优于或等同于阳性化学对照药。

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Pharmacodynamics Research onAntitussive,Expectorant,Antiasthmatic andAntiinflammatory Effect of Ju-Hong Tan-Ke Liquid

Wang Yanhui,Huang Jiewen,Jiang Xiao,Wu Shuying,Lian Linsheng
(Guangzhou Xiangxue Pharmaceutical Co.,Ltd.,Guangzhou,510663,China)

This study was aimed to investigate the antitussive,expectorant,antiasthmatic and anti-inflammatory effect of Ju-HongTan-Ke(JHTK)liquid.The methods of cough induced by ammonia in mice and cough induced by citric acid in guinea pigs were used to observe the antitussive effects.The mouse phenolsulfonphthalein excretion method,rat capillary expectoration method and the rabbit tracheal cilia movement influence experiment were used to observe the expectorant effect.An experiment of allergen induced rats'asthma was used to observe the antiasthmatic effects.The anti-inflammatory effect was observed by mouse peritoneal capillary permeability test and xylene induced ear swelling in mice.The results showed that JHTK liquid could inhibit cough induced by ammonia in mice,decrease the frequency of cough induced by citric acid in guinea pig and prolong the latent period of cough.The medicine could also obviously increase phenol red output of trachea in mice,promote expectoration in rats,accelerate the movement of cilium of tracheal transparently and prolong the latent period of asthma induced by allergens in rats,inhibit capillary permeability and lighten ear edema in mouse model.It was concluded that JHTK liquid could inhibit the reflex cough caused by hypersensitivity of airway sensor.It is peripheral antitussive rather than central antitussive,which has significant antitussive,expectorant,antiasthmatic and anti-inflammatory effects.Its efficacy is superior or equivalent to positive chemical control medicine.

Ju-Hong Tan-Keliquid,antitussive,expectorant,antiasthmatic,anti-inflammatory,pharmacodynamics research

10.11842/wst.2017.08.021

R965

A

2017-02-19

修回日期：2017-06-23

＊ 广东省科技厅研发机构建设项目（编号：2015S-P095）：广东省中药（香雪）工程技术研究中心项目，负责人：连林生

＊＊ 通讯作者：王艳慧，制药工程师，主要研究方向：中药（复方）药效物质基础及质量标准研究。

（责任编辑：陈 宁，责任译审：王 晶）