天蚕素和溶菌酶对中华鳖腐皮病预防效果的研究

陈春山， 郭明磊， 魏凯， 马龙， 耿琰

(北京市水生野生动植物救护中心，北京102100)

天蚕素和溶菌酶对中华鳖腐皮病预防效果的研究

陈春山， 郭明磊， 魏凯， 马龙， 耿琰

(北京市水生野生动植物救护中心，北京102100)

为探讨天蚕素和溶菌酶对中华鳖Trionyxsinensis腐皮病的防治效果。本实验采用肌肉注射天蚕素(10 mg·kg-1)、溶菌酶(10 mg·kg-1)及天蚕素(6 mg·kg-1)和溶菌酶(5 mg·kg-1)混合物，观察其对鳗气单胞菌Aeromonasencheleia引起的中华鳖腐皮病的预防效果。以死亡率和相对保护率评价不同药物的保护效果；通过检测血清凝集效价、细胞吞噬功能和血清杀菌活力，比较不同药物对中华鳖免疫力和抗病能力的影响；比较庆大霉素和溶菌酶血药残留浓度，评估药物毒副作用。结果表明：天蚕素和溶菌酶二联法对中华鳖保护效果最好、免疫效果最佳，与其他组相比差异均有高度统计学意义(P<0.01)；血药残留分析表明，溶菌酶在用药后第6天全部代谢完毕，庆大霉素停药第12天仍有残留。天蚕素和溶菌酶二联法预防中华鳖腐皮病效果显著优于抗生素，无药物残留和耐药副作用，并提高免疫力，避免了应用抗生素所带来的危害，值得推广应用。

中华鳖； 天蚕素； 溶菌酶； 腐皮病； 预防

腐皮病是中华鳖Trionyxsinensis养殖过程中最为常见和难以治疗的多发病，主要症状为全身体表皮肤糜烂坏死，以脖颈与四肢最为典型，随着病情恶化，溃烂面积不断扩大，直至颈部皮肤及脚爪脱落，四肢骨骼外露，最后死亡(薛红玲，2000；吴惠仙，2004)。此病由多种细菌侵染引起(张德群，2000)。本实验从患病中华鳖体内检测出的鳗气单胞菌Aeromonasencheleia尚未见报道。目前常用抗生素药物治疗中华鳖腐皮病。随着抗生素药物的泛用和滥用，产生了一系列严重后果(汪以真等，2004)，如病原菌耐药、养殖水质恶化和药物残留，尤其是甲鱼肌肉抗生素残留对人体的损害尤为突出，已经引起人们广泛关注(丁明德，2015)。因此，寻找合适并有效的药物或方法替代抗生素，是中华鳖健康养殖的迫切需要。

抗菌肽(antimicrobial peptide)是从生物体内诱导出的一类具有抗菌活性的碱性多肽物质。目前世界上已知的抗菌肽共2 000多种(陈琛等，2014；尹昆仑等，2015)。抗菌肽对部分真菌、原虫、病毒及癌细胞等均具有很强的杀伤作用，但对正常的真核细胞无毒性(David & Ayyalusamy，2008)，可应用在医学、农牧业、水产养殖等领域(单红等，2012；李冠楠等，2014；梁英，2014；严沁等，2015)。天蚕素(cecropin)是第一个被发现的动物抗菌肽，是生物体抵御外源性微生物入侵而产生的一类具有抗菌活性的碱性多肽物质，具有强碱性、热稳定性以及广谱抗菌等特点(Zasloff，2002)。大量研究表明，天蚕素能抑制多种畜禽病原菌(侯振平等，2011；吕尊周等，2011)。用抗菌肽作为饲料添加剂，能很好地解决饲用抗生素的问题，这也是抗菌肽在畜牧业上最直接的应用。姜兰等(2002)将基因重组抗菌肽的发酵产物浓缩干燥，添加到饲料中，对中华鳖红脖子病、赤斑病、穿孔病等具有一定的防治效果。

溶菌酶(lysozyme)又称胞壁质酶或N-乙酰胞壁质聚糖水解酶，是一种能水解致病菌中黏多糖的碱性酶(徐永平等，2011)。溶菌酶作为一种天然杀菌蛋白，能够灭杀多种有害病菌(杨向科等，2005；刘莹等，2006；张琇等，2007；Guzzoetal.，2011；Diasetal.，2015)。王坛等(2016)在吉富罗非鱼Oreochromisniloticus的饲料中添加溶菌酶，可以显著提高罗非鱼血清抗菌性能。

本实验研究了天蚕素、溶菌酶对中华鳖腐皮病的预防效果，以期能够找到一种抗生素替代物。实验先通过1周的预防性用药，再人工感染病原菌，通过检测致病菌感染后中华鳖的死亡率和相对保护率、细胞吞噬活性、血清凝集效价、庆大霉素和溶菌酶的血药残留浓度等指标，论证天蚕素和溶菌酶替代抗生素的可行性。

1 材料与方法

1.1 实验材料

1.1.1 实验动物 实验材料为北京市水生野生动植物救护中心饲养的健康中华鳖，体质量200 g±10 g，分别饲养在6个室内水池(200 cm×500 cm×80 cm)中。控温装置控制水温，驯养时间为1周，完全适应实验环境后开始正式实验。

1.1.2 细菌制备 鳗气单胞菌为本中心从患腐皮病的中华鳖分离获得。将活化的鳗气单胞菌接种于LB培养液，37 ℃摇床180 r·min-1培养过夜，现用现制备，保持细菌活力。

1.1.3 实验试剂 庆大霉素购自兽药市场，天蚕素购于美力盾公司，溶菌酶购于北京鼎国昌盛生物技术有限公司，庆大霉素酶联免疫试剂盒购自研域(上海)化学试剂有限公司，溶菌酶单克隆抗体购于SIGMA公司，其他试剂均购自北京鼎国昌盛生物技术有限公司。

1.2 实验方法

1.2.1 实验设计 全部实验时间为20 d。前7 d为预防性用药，第8天人工感染病原菌(一次性注射)，第9～20天观察并采样。

选取300只体质量为200 g±10 g的健康中华鳖，随机分为6组，每组50只。第1组为空白的阴性对照组，主要用于全部实验过程的质量控制，证实实验无外源因素干扰；第2组为病原菌感染的阳性对照组，用于与各个治疗组做对照；第3组为庆大霉素组；第4组为天蚕素组；第5组为溶菌酶组；第6组为天蚕素和溶菌酶联合组。实验环境光照、通风良好，水温31～33 ℃，饲料为甲鱼专用饵料，每天15∶00投喂1次。养殖1周后进行鳗气单胞菌感染实验。

给药剂量：生理盐水100 μL，庆大霉素4.0×104U·kg-1，天蚕素10 mg·kg-1，溶菌酶10 mg·kg-1，天蚕素6 mg·kg-1和溶菌酶5 mg·kg-1混合物。

给药方法：各种药物均采用后腿肌肉注射，09∶00和17∶00各注射1次，连续注射7 d停药。

鳗气单胞菌感染方法：将鳗气单胞菌制成浓度108cfu·mL-1的菌悬液备用。实验第8天，第2～6组实验中华鳖腹腔注射200 μL的活菌悬液，第1组注射等剂量的生理盐水，放回实验室水箱中饲养，直到第20天实验结束。

具体给药和感染方法见表1。

表1 中华鳖给药、感染方法

1.2.2 标本采集和数据统计 在鳗气单胞菌感染后第2、4、6、8、10、12天，每天从各组中随机取5只活鳖，断头取血，处理后保存备用。实验第20天，将各组剩余鳖全部断头法采血。将每只鳖的血液分为2份，其中1份用EDTA抗凝剂制备抗凝血；另1份于4 ℃、4000 r·min-1离心10 min，制备血清，-20 ℃保存备用。实验中途鳖死亡立即断头采血，血样处理后备用。

根据各实验特点，在SPSS 17.0中采用χ2检验和单因素方差分析，统计结果用平均值±标准差(Mean±SD)表示。显著性水平设为P<0.05。

1.2.3 相对保护率统计 每天统计每组实验中华鳖的死亡数，去除从各组中随机宰杀的30只，统计死亡率的实验中华鳖基数为20只。于实验第20天统计死亡个数，计算死亡率和相对保护率。

相对保护率=[1-给药组死亡率/阳性对照组死亡率)]×100%。

1.2.4 TTC还原法血细胞吞噬功能的测定 第6、8、10、12天收获的实验中华鳖，每组共20只。

将氯化三苯四氮唑蓝(TTC)用Hank’s液配成0.01%的溶液，取TTC 0.5 mL与抗凝血0.5 mL混匀后28 ℃孵育1 h，常规涂片，甲醇固定，用Wright’s液染色5 min，油镜下观察吞噬细胞结果。

吞噬率=(200个中性粒细胞中吞噬细菌的细胞数/200)×100%。

吞噬指数=200个中性粒细胞中吞噬细菌的细胞总数/200。

1.2.5 血清凝集效价的测定 第6、8、10、12天收获的实验中华鳖，每组共20只。采用玻片凝集法将待测血清按倍比稀释法进行稀释，取不同稀释度的血清30 μL置于96孔板中，分别加入30 μL的2%鸡血细胞悬液，混均后室温下放置30 min，观察有无发生凝集反应。对照组以磷酸盐缓冲液(PBS)代替血清，以发生凝集的血清最高稀释度作为血清的凝集效价。

1.2.7 药物残留测定 在感染结束后的第2、4、6、8、10、12天，选取阳性对照组、庆大霉素组和溶菌酶组中的中华鳖各5只，断头法采血，血液于4 ℃，4000 r·min-1离心10 min，制备血清备用。

用庆大霉素酶联免疫分析(ELISA)试剂盒测定庆大霉素的残留量，按试剂盒说明书操作。

双抗体夹心法检测溶菌酶残留，在酶标板中加入血清100 μL/孔，37 ℃孵育30 min，弃上清，洗涤液洗涤3次，拍干，再加入不同浓度的酶标抗体100 μL/孔，37 ℃孵育30 min，弃上清，洗涤液洗涤3次，拍干，加底物A、B液总量达100 μL/孔，37 ℃孵育15 min，显色后加终止液50 μL/孔，酶标比色仪450 nm测光密度值。

2 结果与分析

2.1 相对保护率

阴性对照组死亡率0%，而阳性对照组高达95%；与阳性对照组相比，3、4、5组的死亡率显著降低(χ2检验，P<0.01)，其中尤以第6组的天蚕素和溶菌酶联合组效果显著(χ2检验，P<0.01)。天蚕素和溶菌酶单用的4、5组之间相对保护率的差异无统计学意义(χ2检验，P>0.05)；分别与第3组相比，差异有统计学意义(χ2检验，P<0.05)；而二者联用，相对保护率明显上升，第6组分别与第3、4、5组相比，差异有统计学意义(χ2检验，P<0.05)(表2)。

表2 不同药物对中华鳖腐皮病死亡率和相对保护率的影响(n=20， χ2检验)

注： 表中上标字母表示差异显著性水平， 相同字母表示差异无统计学意义(P>0.05)； 相邻字母表示差异有统计学意义(P<0.05)； 相间字母表示差异有高度统计学意义(P<0.01)； 下同。

Notes： The superscript letters in the table indicates the significant difference levels: same letter indicates there is no significant difference(P>0.05)， adjacent letters indicate there is a significant difference(P<0.05)； alternate letters indicate there is an extremely significant difference (P<0.01)； the same below.

2.2 白细胞吞噬功能检测

白细胞吞噬指数和吞噬率检测结果见表3。阴性对照组无菌感染。阳性对照组和给药组检测数据统计结果表明，给药组(3、4、5、6组)的吞噬指数和吞噬率均显著高于阳性对照组(P<0.01)。其中，4、5、6组的白细胞吞噬能力又优于第3组(P<0.01)。天蚕素和溶菌酶单用的差异无统计学意义(P>0.05)。而天蚕素和溶菌酶联用与单用的4、5组相比，效果显著提升(P<0.01)。

表3 不同药物对白细胞吞噬活性的影响(n=20)

2.3 血清凝集效价检测

阳性对照组、庆大霉素组、天蚕素组、溶菌酶组、天蚕素与溶菌酶联合组的血清凝集效价分别为1∶2、1∶4、1∶6、1∶6、1∶8。结果表明，给药组的效价均高于阳性对照组，其中尤以天蚕素与溶菌酶联用的效价最高，明显高于庆大霉素组，也高于天蚕素和溶菌酶单用组。

2.4 血清杀菌活力检测

不同药物作用下，血清杀菌活力结果见表4。阴性对照组无菌感染。给药各组与阳性对照组相比，血清杀菌活力均显著提高。第4、5、6组与第3组相比，杀菌活力明显较高，其中尤以联用组活力最高(第6组与第3组相比，P<0.01)。而第4组与第5组相比差异无统计学意义(P>0.05)(表4)。

表4 不同药物对血清杀菌活力的影响(n=20)

2.5 药物残留检测

庆大霉素和溶菌酶药物残留测定结果见表5。结果表明，庆大霉素自停药第8天开始，药物代谢速度明显下降，至第12天，仍有明显残留。而溶菌酶在第6天被全部吸收代谢，无任何残留。

表5 庆大霉素和溶菌酶药物残留

3 讨论

有资料证明，中华鳖腐皮病是由温和气单胞菌A.sobria、嗜水气单胞菌A.hydrophila、豚鼠气单胞菌A.caviae、维隆气单胞菌A.veronii等多种气单胞菌感染所致(崔青曼等，1998；薛红玲，2000；吴惠仙，2004；沈文英等，2010；罗方兴等，2013；郑天伦，张海琪，2015)。本实验从患病中华鳖体内检测出鳗气单胞菌，为革兰氏阴性短杆状。经感染实验，与常见腐皮病症状相同并具有高致死率。中华鳖腐皮病常规治疗药物是抗生素(崔青曼等，1998；薛红玲，2000；张德群，2000；张泰蒂，2003)，抗生素的泛用、滥用，已经不仅局限在人体医疗方面，也泛滥于家禽牲畜、水产等行业。土霉素、青霉素、庆大霉素等低廉的抗生素原料被广泛掺入家禽牲畜、水产等饲料，而由此造成的危害远远大于人类抗生素过度使用所带来的一系列副反应。但现代高密度集约化的养殖模式，病菌感染尤为常见和多发，从而造成实际应用中抗生素使用的必要性与政府禁用慎用之间的矛盾，因此，寻求新的替代类药物尤为重要。

天蚕素具有广谱杀菌效果(汪以真等，2004；李素萍等，2007；徐兴军等，2009；陈雯等，2012)，能够对多种水产常见菌株及耐药菌株产生抗菌活性(姜兰等，2002；李思明，2006；Chenetal.，2009；Leeetal.，2013)；溶菌酶对病原菌也具有较强的抑菌活性，而对诸如芽孢杆菌科Bacillaceae的有益菌则无抑制能力或抑制能力较弱(卢亚萍，潘宏涛，2008；Chenetal.，2014)。本研究表明，庆大霉素、天蚕素、溶菌酶及天蚕素和溶菌酶二联法对鳗气单胞菌引起的中华鳖腐皮病均具有保护作用。由死亡率和相对保护率结果分析，与阴性对照组相比，庆大霉素组的死亡率最高，保护效果较差，而联合组的死亡率最低，表明天蚕素和溶菌酶联合使用对中华鳖的保护效果最佳。通过检测中华鳖血细胞吞噬功能、血清凝集效价和血清杀菌活力，结果表明，给药的4组均比阳性对照组的免疫力强，表明这几种药物均具有保护作用；天蚕素组和溶菌酶组的免疫力高于庆大霉素组，而效果最明显的是天蚕素与溶菌酶联合组。

在血药残留的分析中，庆大霉素在停药后有一个明显的代谢高峰，但越到后期，代谢速度愈发减缓，而就是这少量的残留给机体带来一系列的问题。残留的药物浓度无抑菌保护作用，而细菌在这种低剂量药物刺激下产生变异和耐药性，使抗生素失效，如此就不得不加大抗生素用量，形成恶性循环。但溶菌酶的代谢不存在这个问题，体内代谢完全，无任何残留。天蚕素血药残留实验由于试剂出现问题未能完成，有待进一步研究。

目前，天蚕素已在畜牧水产养殖方面被广泛采用，而溶菌酶的应用也逐渐受到重视。本研究将二者联用，起到相辅相成、互助互益的功效，这在国内尚属首次。溶菌酶的发酵产品也已经研发成功，为将来溶菌酶在食品饲料行业的广泛应用奠定了基础。因此，本研究无论从新型抗生素替代治疗方法还是研究结果的实用推广，都具有重要意义。

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Study on Preventive Effect of Cecropin and Lysozyme on Skin Fester Disease ofTrionyxsinensis

CHEN Chunshan， GUO Minglei， WEI Kai， MA Long， GENG Yan

(Beijing Aquatic Wildlife Rescue and Conservation Center， Beijing 102100， China)

In order to study the preventive effect of peptides and biological antibiotics on the skin fester disease ofTrionyxsinensiscaused byAeromonasencheleia， 3 different groups of cecropin (10 mg·kg-1)， lysozyme (10 mg·kg-1) and mixed drugs (6 mg·kg-1cecropin and 5 mg·kg-1lysozyme， respectively) were used for intramuscular injection. The mortality rate and relative percent survival were then calculated to evaluate the protective effects of different drugs. Agglutination titer of serum， phagocytosis and bactericidal activity of serum were measured to compare the effects of different drugs on immunity and disease resistance ofT.sinensis. The residual concentrations of gentamicin and lysozyme were compared to evaluate drug toxic and side effects. The results showed that mixed drugs could extremely significant (P<0.01) protectT.sinensisand increase their immunity. Analysis of drug residue showed that lysozyme was completely metabolized after6 days， and in contrast， gentamicin still had residue until day 12 after withdrawal. Therefore， the preventive effect of mixed drugs is significantly better than antibiotics in skin fester disease ofT.sinensis. In addition， mixed drugs of lysozyme and cecropin are worthy of spreading to application in virtue of no drug residue and other side effects， especially avoiding the damage caused by abuse of antibiotics.

Trionyxsinensis； cecropin； lysozyme； skin fester disease； prevention

2016-12-24 接受日期：2017-02-22

北京市农业科技试验示范项目(20110821)

陈春山(1962—)， 男， 高级工程师， 研究方向：水生野生动物保护技术， E-mail:chenchunshan8888@126.com

10.11984/j.issn.1000-7083.20160368

Q959.6; S858.9

A

1000-7083(2017)03-0311-06