程英雄,罗毅文,王斌,吴志方,庄洪
1.广州中医药大学附属骨伤科医院,广东 广州 510240;2.广州中医药大学第一附属医院,广东 广州 510405
补肾活血汤对SD大鼠骨折愈合过程中结缔组织生长因子表达的影响
程英雄1,罗毅文1,王斌1,吴志方1,庄洪2
1.广州中医药大学附属骨伤科医院,广东 广州 510240;2.广州中医药大学第一附属医院,广东 广州 510405
目的:探讨补肾活血法对SD大鼠骨折愈合过程中结缔组织生长因子表达的影响。方法:清洁级SD大鼠40只,6月龄,随机分为对照组(A组)及补肾活血汤组(B组),建立骨折模型。A组大鼠灌胃蒸馏水,B组大鼠灌胃补肾活血汤溶液,灌胃给药容积为10 mL/kg。造模后第3、7、14、21天,每组随机选取5只大鼠,切取骨痂标本,采用RT-PCR法和Western-blot法分别检测结缔组织生长因子(CTGF)的mRNA和蛋白质的表达。结果:结果显示,A组术后3天、7天及14天的CTGF mRNA和蛋白的表达逐渐增强,至21天表达下降,与术后14天比较,差异有统计学意义(P<0.05)。术后3天,B组CTGF mRNA和蛋白无表达,术后7天、14天及21天,B组的CTGF mRNA和蛋白的表达逐渐增强,术后21天与术后14天比较,差异有统计学意义(P<0.05)。术后21天,B组较A组的CTGF mRNA和蛋白的表达均显著升高,差异有统计学意义(P<0.05)。结论:补肾活血能够促进骨折愈合过程中结缔组织生长因子蛋白和mRNA表达,从而促进骨折愈合。
补肾活血汤;骨折愈合;结缔组织生长因子(CTGF);蛋白质;动物实验;大鼠
立足于骨折的三期辨证,早期气滞血瘀、中期营血不和及晚期的肝肾亏虚,多采用中药补肾活血法治疗,临床经典方补肾活血汤具有此功效。结缔组织生长因子(CTGF)在骨折愈合方面发挥着重要作用,有研究显示,CTGF促进软骨细胞和成骨细胞的增殖、分化,从而对骨折愈合产生直接影响[1]。因此,本研究采用补肾活血汤,探讨补肾活血法对SD大鼠骨折愈合过程中结缔组织生长因子表达的影响,现报道如下。
1.1实验动物与分组清洁级雄性SD大鼠40只,6月龄,体重260~300g,由广州中医药大学动物实验室中心提供,实验动物合格证号:6020911,随机分为2组:对照组(A组)、补肾活血组(B组),每组20只。
1.2主要试剂与仪器蛋白裂解液、30%丙烯酰胺、Tris(三羟甲基氨基甲烷)、SDS(十二烷基硫酸钠)、甲醇、过硫酸铵、TEMED(四甲基乙二胺)、PVDF膜(聚偏二氟乙烯膜)、脱脂奶粉、预染marker购自碧云天;内参蛋白GAPDH(甘油醛-3-磷酸脱氢酶)、CTGF兔多克隆抗体、山羊抗兔IgG二抗购自武汉博士德;ECL荧光试剂盒购自Pierce;RT-PCR试剂盒购自上海罗氏公司;紫外/核酸蛋白检测仪(Nano-Drop);垂直电泳仪(Baygene)。
1.3药物的制备中药补肾活血汤,处方:熟地黄、菟丝子、补骨脂各18 g,杜仲、肉苁蓉、枸杞子、山萸肉、独活、当归、没药各6 g,红花3 g,所有中药材由由广州中医药大学附属骨伤科医院药房提供。将中药材990 g(共10剂)放入铝锅中,加入5000 mL蒸馏水常温下浸泡24 h后,加热沸腾,文火煎煮3 h,用一层纱布过滤得到3820 mL药液,分装后,4℃保存。
1.4造模方法与标本的采集以10%水合氯醛按0.133 mL/100 g腹腔注射麻醉,2组均行闭合性股骨干骨折术[1]:麻醉后,取俯卧式,碘酒、酒精消毒右下肢膝关节皮肤,作膝关节内侧纵行切口,约1 cm,切开皮肤、皮下,暴露关节腔,将髌骨向外侧推开,极度屈曲膝关节,暴露髁间窝,摇钻将0.8 mm无菌克氏针打入股骨髓腔内,近段至粗隆下,远端不超过关节面,避免阻碍关节的自由活动。关节腔内滴入少量青霉素水溶液,缝合切口,将右股骨置于骨折发生装置下,股骨的中点与骨折发生装置的打击器对应,并且所有垂直打击力量通过弹簧长度保持一致。手术均在严格无菌条件下进行,术后根据分组放至笼中自由活动与进食。术后连续3天,青霉素肌肉注射预防感染。术后第1天开始,A组大鼠灌胃蒸馏水,B组大鼠灌胃补肾活血汤溶液,灌胃给药容积为10 mL/kg,每毫升相当于0.259 g原药材,相当于临床给药剂量的5倍,每天1次,直到实验结束。术后第3、7、14、21天,每组随机选取5只大鼠,切取骨痂标本,液氮保存。
1.5RT-PCR法检测CTGF mRNA液氮研磨,组织块直接放入研钵中,加入少量液氮,迅速研磨,待组织变软,再加少量液氮,再研磨,如此三次,应用Trizol试剂盒提取总RNA。CTGF的引物序列为:上游引物:5’-GAGTGGGTGTGTGAC GAGCCCAAGG-3’,下游引物:5’-ATGTCTCCGTACATCTT CCTGTAGT-3’,PCR产物为499 bp。PCR反应体系为20 μL,PCR循环参数为:94℃预变性3 min,94℃变性30 s,54℃退火30 s,72℃复性30 s,共35个循环,最后72℃延伸7 min。每次PCR反应均以无菌双蒸水代替cDNA模板作为阴性对照。实时荧光定量,计算机分析各组CT值。
1.6Western blot印迹法检测CTGF蛋白的表达取各组的组织块研磨,提取总蛋白。将各组蛋白样品加loading buffer煮沸变性,并进行SDS-PAGE凝胶电泳,电转移至PVDF膜上进行转膜,用5%BSA封闭液封闭1 h,分别用GAPDH、CTGF一抗抗体试剂盒稀释浓度的适当量4℃孵育过夜。后加入羊抗兔二抗,室温反应1 h,洗膜后,在曝光房内,将PVDF膜用超敏发光液孵育1 min,用X-ray曝光显影条带。Image J分析条带灰度值,以CTGF/GAPDH表示蛋白表达量。1.7统计学方法所有数据采用SPSS19.0统计软件进行分析,计量资料用(±s)表示,2组间比较用t检验。多组间比较用单因素方差分析,方差齐,则用LSD;方差不齐用Dunett T3比较。
2.12组大鼠四个时相CTGF mRNA表达情况比较见表1,图1。RT-PCR结果显示,A组术后3天、7天及14天的CTGF mRNA表达逐渐增强,至21天表达下降,与术后14天比较,差异有统计学意义(P<0.05)。术后3天,B组CTGF mRNA无表达,术后7天、14天及21天,B组的CTGF mRNA表达逐渐增强,在21天时,与术后14天比较,差异有统计学意义(P<0.05)。在术后21天时,B组与A组CTGF mRNA表达含量比较,差异有统计学意义(P<0.05)。
表1 2组大鼠四个时相CTGF mRNA表达情况比较(±s)
表1 2组大鼠四个时相CTGF mRNA表达情况比较(±s)
与同组前一个时间点比较,①P<0.05;21 d时,与A组比较,②P<0.05
组别A组B组3 d 0.3051±0.05445 0.002693±0.000553 7 d 0.5088±0.0224 0.3268±0.04388 14 d 0.8128±0.03051 0.5152±0.3306 21 d 0.4309±0.3206①0.8282±0.3598①②
2.22组大鼠四个时相CTGF蛋白表达情况比较见表2,图2。Western Blot法结果显示,A组术后3天、7天及14天的CTGF蛋白表达逐渐增强,至21天表达下降,与术后14天比较,差异有统计学意义(P<0.05)。术后3天,B组无表达,术后7天、14天及21天,B组的CTGF蛋白表达逐渐增强,在21天时,与术后14天比较,差异有统计学意义(P<0.05)。在术后21天时,B组与A组CTGF蛋白表达含量比较,差异有统计学意义(P<0.05)。
图1 2组大鼠四个时相CTGF mRNA表达情况
表2 2组大鼠四个时相CTGF蛋白表达情况比较(±s)
表2 2组大鼠四个时相CTGF蛋白表达情况比较(±s)
与同组前一个时间点比较,①P<0.05;21 d时,与A组比较,②P<0.05
组别A组B组3 d 0.2651±0.02211 0.003693±0.000553 7 d 0.3988±0.01241 0.2402±0.02449 14 d 1.3934±0.06191 0.3219±0.02286 21 d 0.2759±0.02081①1.3561±0.03132①②
图2 2组大鼠四个时相CTGF蛋白表达情况
结缔组织生长因子是一种多功能的生长因子,参与体内多种病理生理过程,在胚胎发育、肿瘤形成、动脉粥样硬化、纤维化疾病以及骨折愈合中发挥重要作用。CTGF作为一种重要的效应分子,在软骨细胞和成骨细胞的增殖、分化方面发挥重要作用,对骨折愈合产生直接而重要的影响[1]。
Nakanishi等的研究结果显示,CTGF mRNA的过表达可促进软骨细胞株HCS-2/8细胞增殖,并促进软骨聚集蛋白多糖分泌和X型胶原表达[2]。欧阳冰等人采用MTT及SABC法观察CTGF生长因子对体外培养的兔关节软骨细胞增殖和表型的影响,结果显示100 μg/L的CTGF生长因子作用软骨细胞7天的增殖效果最好,而SABC检测到经CTGF刺激组的细胞Ⅱ型胶原表达较空白对照组有显著差异[3]。Nishida等研究表明rCTGF可轻度促进人骨肉瘤SaOS-2细胞和小鼠前成骨细胞—MC3T3-E1细胞的增殖,同时rCTGF可上调骨基质蛋白如I型胶原、骨桥素和骨钙素mRNA的表达,而且rCTGF可上调ALP的基因表达并增强其活性,而ALP是成骨细胞分化的一种标志物[4]。Amott JA等[5]人研究显示,CTGF通过激活avb5整合素转导,调控成骨细胞样细胞系的胞内激酶活性,从而促进局部黏附蛋白的形成和肌动蛋白细胞骨架的重构。Safadi FF等[6]发现,抗CTGF治疗可抑制骨基质的矿化和结节形成,其抑制钙盐沉积的作用呈剂量依赖性。另外CTGF在骨质樱花大鼠中呈过表达,同时该大鼠表现为破骨细胞功能缺陷,骨密度明显增高,骨基质和骨矿化相关基因高表达。上述研究结果提示,CTGF可能在正常骨塑建和骨重建中发挥某些作用。
本次实验研究采用RT-PCR方法检测CTGF基因的mRNA表达,从核酸角度来分析基因的表达情况,并结合CTGF核酸的产物蛋白质,从蛋白水平来分析基因的表达情况。通常从核酸和蛋白两个层次来分析,可以得到更为确定的基因表达结果,更详细、更直观地说明基因表达的情况。实验结果显示:术后3天、7天和14天,补肾活血汤组的CTGF mRNA和蛋白表达较对照组低,在前三个时相中,2组大鼠CTGF的mRNA和蛋白表达均依次提高;在术后21天,补肾活血汤组较对照组的mRNA和蛋白表达显著性增加,而对照组则在第四个时相中CTGF表达较第三个时相降低。根据实验结果,我们分析认为补肾活血汤能促进CTGF的表达主要在7天、14天和21天,而在21天时最明显,从而促进骨折愈合,与Nakata E等[7]研究结果相近。
CTGF mRNA及其蛋白产物的表达在骨骼发育以及骨量维持方面发挥重要作用。因此,进一步研究CTGF对骨骼发育和骨重建的作用,以及开发促进和(或抑制)CTGF的药物,有助于进一步的了解骨质疏松性骨折的愈合机制,并为其防治提供新的策略。综上所述,在骨折愈合过程中,辨证使用补肾活血化瘀中药,能够促进骨折愈合过程中软骨骨痂向骨性骨痂转化的步骤,从而促进骨折愈合,这一结果对临床骨折愈合治疗及研究有一定的指导意义。
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[2]Nakanishi T,Nishida T,Shimo T,et al.Effects of CTGF/Hcs24,a product of a hypertrophic chondrocytespecific gene,on the proliferation and differentiation of chondrocytes in culture[J].Endocrinology,2000,141(1):264-273.
[3]欧阳冰,林绵辉,左文建,等.结缔组织生长因子对体外培养的兔关节软骨细胞增殖和表型的影响[J].中国组织工程研究与临床康复,2009,13(20):3816-3820.
[4]Nishida T,Kubota S,NakanishiT,et al.CTGF/Hcs24,ahypertrophicchondrocyte-specificgeneproduct,stimulatesproliferationanddifferentiation, butnot hypertrophy of cultured articular chondrocytes[J].J Cell Physiol,2002,192(1):55-63.
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[6] Safadi FF,Xu J,Smock SL,et al.Expression of connective tissue growth factor in bone:its role in osteoblast proliferation and differentiation in vitro and bone formation in vivo[J].J CellPhysiol,2003,196(1):51-62.
[7]Nakata E,Nakanishi T,Kawai A,et al.Expression of connective tissue growth factor/hypertrophic chondrocyte-specific gene product 24(CTGF/Hcs24)during fracture healing[J].Bone,2002,31(4):441-447.
(责任编辑:冯天保,郑锋玲)
R285.5
A
0256-7415(2016)09-0233-03
10.13457/j.cnki.jncm.2016.09.101
2016-05-08
广州中医药大学创新基金(K0070077)
程英雄(1976-),男,副主任中医师,研究方向:骨质疏松性骨折的防治。