牛 刚
浅谈禽流感血凝和血凝抑制试验注意事项
牛 刚
(河北省涿州市动物卫生监督所,河北涿州 072750)
禽流感血凝和血凝抑制试验可用于血清中抗体水平的监测,也可用于判断未使用疫苗群体的感染状态。这两种试验在实践中应用的比较多,但也容易出错,现对该试验过程中应注意的事项做一探讨。
禽流感血凝;血凝抑制试验;移液枪;保存
(1)采集的血液样品应及时分离血清,离心后吸出血清,对应编号冷藏送检,并禁止运输过程中剧烈震动。
(2)一般情况下,在5d内检测的样品可放置在4℃的冰箱中冷藏,待检血清超过1周的需低温冷冻保存。
(3)在检测前血清样品应充分混匀,混匀时采用上下缓慢颠倒几次的方法即可,切忌剧烈振荡而引起产生气泡。
(4)对出现胶冻状的血清样品,要反复搅动几下再离心有助于缓解该状态。可能是由于放置时间不够造成的血清未完全析出,不建议直接吸取其中少量的清亮血清。
(1)禽流感血凝抑制试验所用的抗原应保存在-20℃,试验前应提前将其恢复至室温,反复冻融会降低抗原的滴度,应避免反复冻融。
(2)pH7.2、0.01mol/L的PBS液的制备:应尽量现用现配,不应保存太久;
每次使用前应测PH值,以免时间过长而导致PH值发生改变;不建议使用生理盐水;全部试验均采用同一种稀释液。
(3)1%红细胞的制备
为避免有些鸡只的红细胞有自凝现象,因此配制1%红细胞悬液时应最好选择2~3只SPF鸡或未进行过任何免疫过的成年公鸡血液。采血时将血液与等体积阿氏液混合,以防血液凝固。
经2000~3000r/min,5~10min,弃去上液和红细胞上层的白细胞薄膜,再加入PBS液,上下缓慢颠倒(切忌用力过大使红细胞破裂),使其充分混匀,再离心弃去上清液,反复几次直至上清液清亮透明为止。
制备好的红细胞液如果放置后上清液变红,说明有溶血,不可再使用。不用的红细胞悬液应4℃冷藏,且不超过2d。
(1)四单位抗原应现用现配。先对抗原做血凝试验,以抗原和红细胞完全凝集的孔作为抗原效价,再根据抗原效价配制四单位抗原。
(2)每次做试验前,必须重新检测禽流感抗原的血凝效价,以免效价发生改变而导致抗原稀释倍数不准确,从而导致试验结果不准确。
(3)为保证配制的四单位抗原准确,还要进行回标试验。具体方法:做二排抗原回标,在第一、二排的第1~4孔各加25微升PBS,取四单位抗原25微升加在第1孔,混匀,从第2孔倍比稀释至第4孔,弃去25微升,各孔再加25μlPBS,然后各孔加25微升1%红细胞,震荡10s,静置30min观察结果。第二孔完全凝集表明四单位抗原配制准确,如果抗原回滴试验不成立,应相应调整抗原浓度直至回标试验成立。因为如果抗原浓度过高,则所测定的抗体效价水平偏低,如果抗原浓度过低,则所测定的效价偏高,所以不调整抗原浓度至回标试验成立的话会对结果有很大影响。
(1)使用时应采用一档吸液二档排液的方法。
(2)吸取液体时,枪头要深入液下缓慢平稳吸液。加缓冲液时应加在板孔底部。倍比稀释血清时,应每孔至少反复吹吸6次,以便混合均匀,还应注意尽量避免产生泡沫引起混合不均。加抗原及红细胞时应在板内液面上方加样,以免交叉污染,影响试验结果。
(3)加样、倍比稀释时应高度集中注意力,以免漏加、重复加样等。
每次试验必须设阳性及阴性(空白)对照血清,判别试验是否成立。判读结果时,将酶标板倾斜45°,以孔底沉淀的红细胞流动性好,呈泪珠样流淌,边缘无凝集颗粒为凝集完全抑制。
每次试验完毕后,应将酶标板中液体甩净,然后用自来水反复冲净每个孔,再放入3%NaOH中4h,清水反复冲净,再放入3%HCl中4h,清水反复冲净,再用蒸馏水反复冲洗几次,甩干水份,入干燥箱中干燥备用。实验用烧杯、量筒等也应充分洗净、高压消毒、干燥,以免器具内有杂物、污物以及残留物从而影响试验结果。
影响禽流感血凝试验和血凝抑制试验的因素很多,需要各个环节严格操作,平时多加练习,才能为实际的免疫工作提供准确的理论依据。
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