新型杀菌剂氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性及其在斑马鱼体内的生物富集

林琎，高云，慕卫,#，王开运,*，许辉，刘杰

1. 山东农业大学 植物保护学院，泰安 271018 2. 山东农业大学农药环境毒理研究中心，泰安 271018 3. 山东省高校农药毒理与应用技术省级重点实验室，泰安 271018 4. 山东省联合农药工业有限公司，济南 250100

新型杀菌剂氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性及其在斑马鱼体内的生物富集

林琎1,3，高云1,2，慕卫1,2,#，王开运1,3,*，许辉4，刘杰4

1. 山东农业大学 植物保护学院，泰安 271018 2. 山东农业大学农药环境毒理研究中心，泰安 271018 3. 山东省高校农药毒理与应用技术省级重点实验室，泰安 271018 4. 山东省联合农药工业有限公司，济南 250100

为评价新型杀菌剂氟吡菌胺对环境生物的毒性风险，避免其在使用过程中对我国特有的环境生物产生危害，测定了氟吡菌胺对意大利蜜蜂、日本鹌鹑、斑马鱼、家蚕、斜生栅藻、大型溞、玉米螟赤眼蜂、赤子爱胜蚓和黑斑蛙蝌蚪等9种代表性环境生物的急性毒性，并以斑马鱼为试材，研究了氟吡菌胺的生物富集性，即根据鱼类急性毒性结果LC50(96 h)=1.489 mg·L-1，设计生物富集试验水样浓度为LC50的1/2、1/10和1/100，即0.745 mg·L-1、0.149 mg·L-1和0.0149 mg·L-1，连续暴露8 d，采用液相色谱法测定3个浓度下氟吡菌胺在斑马鱼体内的富集量。结果表明，氟吡菌胺对斑马鱼、斜生栅藻和大型溞3种水生生物的急性毒性为中毒级，对黑斑蛙蝌蚪急性毒性为高毒级，其对蜜蜂、鸟类、家蚕、蚯蚓和天敌赤眼蜂等环境生物均为低毒或低风险；斑马鱼在0.745、0.149和0.0149 mg·L-1的氟吡菌胺水溶液中暴露192 h时，生物富集系数BCF分别为33.65、26.39和193.25；根据化学农药环境安全评价试验准则评价标准，10

氟吡菌胺；环境生物；急性毒性；生物富集因子

氟吡菌胺(fluopicolide)是德国拜耳公司开发的一种新型苯甲酰胺类内吸性杀菌剂，化学名称为2，6-二氯-N-[(3-氯-5-三氟甲基-2-吡啶基)甲基]苯甲酰胺[1]，是德国拜耳公司开发的一种新型苯甲酰胺类内吸性杀菌剂，主要用于防治蔬菜和葡萄上的常见卵菌纲病害，如立枯病、霜霉病、疫病、晚疫病、猝倒病等，具有保护和广谱治疗作用。氟吡菌胺具有很多含氟农药在性能上相对用量少、毒性低、药效高、易代谢等特点[2]。自2005年在多个国家上市以来，氟吡菌胺在马铃薯、葡萄、辣椒、莴苣、黄瓜、大白菜、葱、玫瑰、烟草、咖啡等多种作物上均有使用[3-10]，且销量逐年上升。目前，国内对氟吡菌胺的研究主要集中在毒力和药效方面，而其环境风险评估研究较少。虽然氟吡菌胺对部分环境生物的急性毒性数据可在美国国家环境保护局(US EPA)网站上查询到，如：山齿鹑急性经口LD50>2 250 mg·kg-1，鸭急性经口LD50>2 250 mg·kg-1，虹鳟LC50=0.36 mg·L-1(96 h)，蓝鳃太阳鱼LC50=0.75 mg·L-1(96 h)，大型溞EC50>1.8 mg·L-1(48 h)，水藻EC50>4.3 mg·L-1(72 h)，蚯蚓LC50>1 000 mg·kg-1(14 d)，蜜蜂触杀LD50>100 mg·蜂-1，但对我国而言，这些数据仅供参考，为避免氟吡菌胺在使用过程中对我国特有的一些环境生物产生危害，有必要研究其对国内代表性环境生物的急性毒性，其中包括家蚕、赤眼蜂等国内特有非靶标生物。初步研究结果表明，氟吡菌胺对水生生物表现出较高的毒性，故采用斑马鱼作为生物试材，进行了3个浓度下的生物富集试验，以期明确其施用后对水生生物的潜在危害，为氟吡菌胺的环境毒理试验研究及其安全使用提供参考。

1 材料与方法(Materials and methods)

1.1 仪器与试剂

97%氟吡菌胺(CAS号：239110-15-7)，由山东农业大学农药环境毒理研究中心提供，质量分数为50%的蔗糖水、丙酮、BG11培养基等。

FA2004电子天平(精度0.0001 g，上海精天电子仪器有限公司)；CXZ380B光照培养箱(宁波江南仪器厂)；微量点滴仪(英国BURKARD SCIENTIFIC)；JPB-607A型便携式溶解氧测定仪(上海精密科学仪器有限公司)；手持式酸度计(美国Beckman Coulter)；H193735水硬度测定仪(HANNA)；TES-1330A型数位式照度计(台湾泰仕电子工业股份有限公司)；SC-3A50加湿器(美的集团股份有限公司)；蜂盒(8 cm×12 cm)；不锈钢鸟笼；灌胃器；指形管；Agilent 1200高效液相色谱仪(C18反相柱，粒径5 μm，4.6 mm×250 mm，美国安捷伦公司)；MD200-1A型氮吹仪(杭州奥盛仪器有限公司)；C18固相萃取小柱(CLEANERT，博纳艾杰尔科技)；甲醇、乙腈(色谱纯，Fisher公司)；水(超纯水)；氯化钠、氯化钙(分析纯)等。

1.2 受试生物

意大利蜜蜂(Apis mellifera)，选择成年工蜂作为试验测试的标准蜂，体重约0.10 g；日本鹌鹑(Coturnix japonica)，同批孵化，30日龄，雌雄各半，体重(100±10) g；蓝斑马鱼(Brachydanio rerio)，抽检体长(2.59±0.305) cm；家蚕(Bombyx mori)，品种为春蕾×镇珠，试验用蚕为二龄起蚕；斜生栅藻(Scenedesmus obliquus)，引种于中国科学院水生生物研究所淡水藻种库，使用BG11培养基转接扩大培养；大型溞(Daphnia magna)，引种于中国疾病预防控制中心环境与健康相关产品安全所，为62D.M纯品系生物株，选用实验室条件下，孤雌繁殖3代以上、出生时间为6～24 h、健康活泼的幼溞；玉米螟赤眼蜂(Trichogramma ostriniae)，用麦蛾卵繁蜂；赤子爱胜蚯蚓(Eisenia foetida)，挑选已出现繁殖环带的健康成蚓，体重在400～550 mg之间的个体用于试验；黑斑蛙蝌蚪(Tadpole rana nigromaculata)，抽检体长(1.60±0.105) cm。

1.3 试验方法

1.3.1 氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性试验

将氟吡菌胺用吐温-80助溶后，用超纯水配制成1 000 mg·L-1储备液备用，本实验使用的助溶剂浓度不高于0.1 mg·L-1。

氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性试验均参考《化学农药环境安全评价试验准则》[10]中的推荐试验方法进行。

1.3.2 氟吡菌胺生物富集试验分析方法的建立

1.3.2.1 氟吡菌胺标准曲线和最低检出限

参照张小军等(2011)[11]方法。液相色谱检测条件：流动相为V(甲醇)∶V(水)=75∶25，检测波长265 nm，流速1.0 mL·min-1，柱温为20 ℃。

1.3.2.2 氟吡菌胺在水中溶解度的测定

参照农药理化性质测定试验导则中的方法[12]。称取97.0%氟吡菌胺原药0.0515 g于圆底烧瓶中，加入50 mL的超纯水，将圆底烧瓶置于(30±1) ℃的水浴中，用搅拌棒搅拌30 min后，置于(20±1) ℃的水浴中搅拌30 min，10 000 r·min-1离心5 min，取上清液过0.45 μm水系滤膜，液相色谱检测。

1.3.2.3 氟吡菌胺在水中添加回收率试验

方法1：称取0.0500 g的1 000 mg·L-1储备液，超纯水定容至50 mL，得到500 mg·L-1母液；用超纯水梯度稀释，得到50、5、0.5和0.1 mg·L-1水样，分别取水样5 mL加入5 mL甲醇，经0.22 μm有机滤膜过滤，液相色谱检测，外标法定量。

方法2：取0.5000 g的1 000 mg·L-1储备液，超纯水定容至500 mL，得到100 mg·L-1储备液；用超纯水稀释得到0.015 mg·L-1水样，取50 mL水样，过C18固相萃取小柱(500 mg，6 mL)富集，小柱先用5 mL甲醇活化，5 mL超纯水平衡，缓慢加入50 mL的0.015 mg·L-1水样后，用10 mL甲醇淋洗，只接收淋洗液，氮吹后用甲醇定容至2 mL，过0.22 μm有机滤膜，液相色谱检测，外标法定量。

1.3.2.4 氟吡菌胺在鱼肉中添加回收率试验

参照余向阳等(2008)的方法[13]，略有改动。鱼肉中样品添加量分别为5 mg·kg-1和0.5 mg·kg-1，混合均匀，静置过夜。

鱼肉样品前处理：取鱼肉样品，加入2 g无水硫酸钠混匀后，转入10 mL离心管，用5 mL乙腈清洗装鱼肉的小烧杯，清洗液倒入离心管，匀浆2 min，于4 000 r·min-1下离心10 min，取上清液，残渣再用5 mL乙腈提取一次，合并提取液，室温氮气吹干后，用正己烷定容至2 mL，氟罗里硅土小柱净化。

净化：在内径1.5 cm、长20 cm左右的聚乙烯层析柱中依次填入1.0 cm高的无水硫酸钠、3.0 cm高的佛罗里硅土和1.0 cm高的无水硫酸钠，用5 mL正己烷活化柱子，将上述2 mL提取液加入到柱顶，用5 mL正己烷洗涤，再用15 mL淋洗液(V(正己烷)∶V(二氯甲烷)=1∶1)进行洗脱，收集洗涤液和洗脱液，氮气吹干后，用甲醇定容至2 mL，超声5 min，过0.22 μm有机滤膜，液相色谱检测，用氟吡菌胺甲醇标样外标法定量。

1.3.3 氟吡菌胺对斑马鱼的生物富集试验

采用3个月大蓝斑马鱼幼鱼为供试生物，试验依据《化学农药环境安全评价准则》标准方法进行[14]。根据鱼类急性毒性结果：LC50(96 h)=1.489 mg·L-1，设计试验富集水样浓度为其1/2、1/10和1/100，即0.745 mg·L-1、0.149 mg·L-1和0.0149 mg·L-1。

取10%氟吡菌胺悬浮剂用超纯水配制15 L药液，每个浓度重复2次。每缸放入250条鱼，共1 500条。每天喂食1次，每缸均匀喂食2 g鱼食，于0、24、48、96、144和192 h分别取各处理中水样与鱼样，测定水样和鱼样中的农药含量。

1.4 数据处理

氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性试验数据采用寇氏法分析，分别计算氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性端点数据值及其95%置信区间。

氟吡菌胺对斑马鱼的生物富集试验，鱼体对供试物的生物富集系数(BCF)等于平衡时鱼体内的供试物含量(mg·kg-1)与平衡时水体中的供试物含量(mg·L-1)的比值，按照BCF的大小，对农药生物富集等级进行划分。

2 结果与分析(Results and analysis)

2.1 氟吡菌胺对9种环境生物的急性毒性结果

急性毒性试验结果表明，氟吡菌胺对意大利蜜蜂接触毒性和经口毒性的LD50(48 h)>100 μg·蜂-1，对日本鹌鹑经口急性毒性LD50(168 h)>1 000 mg·kg-1体重，对赤子爱胜蚓急性毒性LC50(14 d)>100 mg·kg-1土，对家蚕急性毒性LC50(96 h)为276.53 mg·L-1，即氟吡菌胺对蜜蜂、鹌鹑、蚯蚓和家蚕均为低毒级；对玉米螟赤眼蜂为低风险性(安全系数>264.1)。对斑马鱼急性毒性LC50(96 h)为1.489 mg·L-1，对植物藻急性抑制毒性EC50(72 h)为1.238 mg·L-1、大型溞急性活动抑制EC50(48 h)为4.155 mg·L-1，即氟吡菌胺对斑马鱼、植物藻和大型溞3种水生生物的急性毒性均为中毒级；对黑斑蛙蝌蚪急性毒性LC50(96 h)为0.943 mg·L-1，为高毒级。经与US EPA数据(英国郝特福德大学生命科学院农业与环境研究室汇总的全球可用农化信息)比对，结果大致相同。但本研究评价了该药剂对我国特有非靶标生物如家蚕、天敌赤眼蜂和黑斑蛙等的毒性，可避免氟吡菌胺在我国施用产生的潜在风险性，详见下表1。

2.2 氟吡菌胺生物富集试验分析方法建立2.2.1 氟吡菌胺溶解度、标准曲线和最低检出限

经过3次溶解度平行测定，得出氟吡菌胺在水中的溶解度为(4.065±0.214) mg·L-1，具体见表2。用氟吡菌胺甲醇系列浓度溶液进行液相色谱分析，保留时间为7.4～7.6 min，其浓度和峰面积得出标准曲线为y=11455x+1167.7，R2=1，最低检出限为0.03 mg·L-1×20L=6×10-7mg。

表1 美国国家环境保护局(US EPA)数据和本研究结果的对比Table 1 Comparison between US EPA data and results of the current study

表2 氟吡菌胺在水中溶解度Table 2 Water solubility of fluopicolide

2.2.2 氟吡菌胺在水中的添加回收率

氟吡菌胺在超纯水中的添加回收率实验设计5个添加回收水平，前4个处理方法一致，均为水样与甲醇体积比为1∶1混合后过膜检测；0.015 mg·L-1的水样处理方法为，取50 mL水样过C18固相萃取柱，浓缩后过膜检测，结果见表3。回收率均在95%～118.38%之间，符合分析试验对添加回收率的要求。

2.2.3 氟吡菌胺在鱼肉中的添加回收率

氟吡菌胺在鱼肉中的添加回收率实验设计2个添加回收水平(0.5和5 mg·kg-1)，结果见表4。洗涤液和3次5 mL的洗脱液分别接收后测定，总回收率均在91%～107%之间，符合分析试验对添加回收率的要求。

可见，洗涤液、洗脱液1、2、3中均可检出氟吡菌胺，故洗涤液和洗脱液均应当收集，且确定洗脱用溶剂体积为15 mL。

2.3 氟吡菌胺对斑马鱼的生物富集试验结果

用10%氟吡菌胺悬浮剂配制0.745 mg·L-1、0.149 mg·L-1和0.0149 mg·L-1的3个浓度水溶液，将2.5 cm左右斑马鱼放入持续染毒192 h，每天测量水样中氟吡菌胺的含量和鱼体中的氟吡菌胺的含量，结果见表5，典型液相色谱图见图1。

表3 氟吡菌胺在水中的添加回收率Table 3 Recoveries of fluopicolide in water

表4 氟吡菌胺在鱼肉中的添加回收率Table 4 Recoveries of fluopicolide in fish

注：洗涤液为通过固相萃取柱的正己烷，洗脱液1、2、3分别为15 mL淋洗液中的第1个5 mL、第2个5 mL和第3个5 mL，分别接收后检测氟吡菌胺的含量。

Note: Washing liquid is the n-hexane which flows through the solid phase extraction column. Elution liquid is in a total volume of 15 milliliter, and elution liquid 1, 2 and 3 are the first 5 milliliter of the eluent, the second 5 milliliter and the third 5 milliliter. Ater elution, the elution liquid was collected to detect the concontraiton of fluopicolide.

表5 氟吡菌胺在斑马鱼中的生物富集结果Table 5 Bioaccumulation results of fluopicolide in Brachydanio rerio

图1 斑马鱼对氟吡菌胺生物富集的典型液相色谱图注：A水样空白对照；B鱼样空白对照；C水样0 d分析(初始浓度为0.745 mg·L-1)；D水样8 d分析(初始浓度为0.745 mg·L-1)；E鱼样8 d分析(水样初始浓度0.0149 mg·L-1)；F鱼样8 d分析(水样初始浓度0.745 mg·L-1)。Fig. 1 Typical liquid chromatogram for bioaccumulation of fluopicolide in zebrafishNote: A. Water sample blank control; B. Fish sample blank control; C. Water sample colleted at the very beginning (on day 0) (Initial concentration in water is 0.745 mg·L-1); D. Water sample colleted at the eighth day (Initial concentration in water is 0.745 mg·L-1); E. Fish sample colleted at the eighth day (Initial concentration in water is 0.0149 mg·L-1); F. Fish sample colleted at the eighth day (Initial concentration in water is 0.745 mg·L-1).

由表5可知，氟吡菌胺在水样中含量随时间逐渐降低，鱼体中氟吡菌胺的含量逐渐升高，通过计算，192 h时，0.745 mg·L-1、0.149 mg·L-1和0.0149 mg·L-1氟吡菌胺的生物富集系数BCF分别为33.65、26.39和193.25。根据化学农药环境安全评价试验准则评价标准，10

3 讨论(Discussion)

就氟吡菌胺而言，US EPA数据库中仅有对蜜蜂接触毒性的报道，而缺少对蜜蜂经口毒性、家蚕、赤眼蜂、两栖类的毒性数据，本文填补了这些急性毒性数据的空白。首先，氟吡菌胺对蜜蜂不论接触毒性还是经口毒性，均大于100 μg·蜂-1，为低毒级，表明氟吡菌胺对有益昆虫(蜜蜂)有较高的安全性，这意味着该药在施用过程中，即使喷施在开花期的作物上，蜜蜂吸食后引起的死亡风险仍可接受；其次，氟吡菌胺对家蚕的毒性LC50(96 h)=276.53 mg·L-1，为低毒级，表明氟吡菌胺在经济昆虫(家蚕)所食用的桑叶上也可以施用，可在桑叶上用于防治卵菌纲病害；此外，氟吡菌胺对天敌玉米螟赤眼蜂的安全系数为264.1，即在田间推荐用量的264.1倍下施用，也不会对赤眼蜂造成危害，对该类天敌为低风险，这更增加了该药剂在推广过程中的安全性。鉴于氟吡菌胺对天敌赤眼蜂低风险，也可考虑在已经投放天敌赤眼蜂进行生物防治的地块，同时施用氟吡菌胺防治卵菌纲病害。

本文得出氟吡菌胺对两栖类的急性毒性LC50(96 h)=0.943 mg·L-1，毒性等级为高毒，结合氟吡菌胺对藻类、鱼类、溞类的急性毒性数据，可知氟吡菌胺对水生生物的毒性均在中高毒，这4种水生生物对同浓度氟吡菌胺的敏感性大小为：藻类>两栖类>鱼类>大型溞类，因此，可用藻类作为氟吡菌胺环境监测的最敏感试材，减少使用两栖类和鱼类等进行试验造成的成本浪费，同样也体现出对脊椎动物的福利。

氟吡菌胺对鱼的急性毒性、对胚胎、仔鱼和成鱼慢性毒性试验以及在鱼体内的富集，均表明氟吡菌胺对鱼类有一定影响[15]，US EPA数据库显示氟吡菌胺的生物富集系数为121，属于中等富集性农药[16]，本论文中，采用斑马鱼对氟吡菌胺进行了生物富集的研究，0.745 mg·L-1、0.149 mg·L-1和0.0149 mg·L-1浓度下暴露192 h后，氟吡菌胺的生物富集系数BCF分别为33.65、26.39和193.25，由此结果判断氟吡菌胺也属于中等富集性农药；对于此结果本论文和US EPA数据相符合，但本论文在3个浓度下的富集均进行了研究，并发现在0.0149 mg·L-1浓度下，生物富集系数最高，由此，不能因为农药在水中的含量低，就认为该农药在水生生物中不产生富集，相反的是，一些关于直链烷基苯磺酸盐(LAS)的研究表明，化学物质的BCF随水中暴露浓度的增加而降低[17-19]。影响水中化学物质的生物富集有很多因素，首先是水溶性，通常水溶性在0.5～50 mg·L-1之间的农药有被生物体富集的可能性，水溶性<0.5 mg·L-1的农药很容易被生物富集，氟吡菌胺在水中的溶解度为(4.065±0.214) mg·L-1，因此其有被生物体富集的可能性；另外，药剂的毒性效应、生物有效性、水中化学物质浓度、水体和生物体内脂肪含量等都有可能对生物富集的大小产生影响[20]，氟吡菌胺主要施用于蔬菜和水果，由于其具有强内吸性[21]，在施用过程中，不仅可通过内吸进入植株，而且还可通过各种农耕措施和雨水冲刷流入水体，导致水体污染。但目前国内对该药的残留尚无报道，2013年11月，欧盟食品安全局经欧盟专家组评估后对氟吡菌胺的残留限量定为土豆0.03 mg·kg-1，木薯、红薯、山药、竹芋为0.01 mg·kg-1，甜菜、辣根、大头菜、萝卜等为0.15或0.2 mg·kg-1，啤酒花为0.7 mg·kg-1[22-23]；我国于2014年8月1日发布的《食品安全国家标准-食品中农药最大残留限量》中，规定氟吡菌胺在马铃薯上的最大残留限量为0.05 mg·kg-1[24]；林琎等[15]的研究表明，氟吡菌胺在水中剂量超过0.0298 mg·L-1时，即会对斑马鱼胚胎、仔鱼的生长发育及成鱼的繁殖造成影响，同时本研究中的生物富集试验也证明，在0.0149 mg·L-1浓度下暴露8 d，氟吡菌胺会在鱼体中大量富集，即192 h持续暴露后，其在鱼肉中的含量可达到1.546 mg·kg-1。因此本研究进一步明确了氟吡菌胺对水环境的潜在风险，并提出应当规定其在水体中的含量控制在0.0149 mg·L-1以下。

此外，由斑马鱼在试验过程中的症状推测，氟吡菌胺对其心脏发育有显著影响，斑马鱼属于脊椎动物，且与人类基因的保守度高达85%[25]，考虑到人类及脊椎动物的健康，应当加强对该药施用后相邻水体的残留监测，并注意在水系统相邻的作物生产区域慎用该农药。

致谢：感谢山东农业大学植保学院博士生李北兴在文章修改中给予的帮助。

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Acute Toxicity of Fluopicolide to 9 Kinds of Environmental Organisms and Its Bioaccumulation in Zebrafish

Lin Jin1,3, Gao Yun1,2, Mu Wei1,2,#, Wang Kaiyun1,3,*, Xu Hui4, Liu Jie4

1. College of Plant Protection, Shandong Agricultural University, Tai’an 271018, China 2. Center of Pesticide Environmental Toxicology, Shandong Agricultural University, Tai’an 271018, China 3. Key Laboratory of Pesticide Toxicology & Application Technique, Shandong Agricultural University, Tai’an 271018, China 4. United Pesticide Industry Co., Ltd., Jinan 250100, China

Received 25 April 2016 accepted 6 June 2016

In order to evaluate the toxicity risk of fluopicolide to environmental organisms and reduce its risk to the special organisms in China, 9 types of environmental organisms were used to determine the acute toxicity. Tested organisms include Apis mellifera, Coturnix japonica, Brachydanio rerio, Bombyx mori, Scenedesmus obliquus, Daphnia magna, Trichogramma ostriniae, Eisenia foetida and Rana nigromaculata tadpoles. Bioaccumulation of fluopicolide was researched by using zebrafish as model organism. According to acute toxicity to fish (LC50(96 h)=1.489 mg·L-1), biological enrichment experiments were carried out with three concentrations. In detail, 0.745 mg·L-1, 0.149 mg·L-1and 0.0149 mg·L-1were adopted, which equal 1/2, 1/10 and 1/100 of the LC50(96 h) to zebrafish. After continuous exposure for 8 days, bioaccumulation was detected using liquid chromatography. The results indicated that fluopicolide had moderate toxicity to zebrafish (Brachydanio rerio), Scenedesmus obliquus and Daphnia magna, whereas it showed high toxicity to tadpoles. Moreover, it exhibited low toxicity or low risk to other tested environmental organisms. After continuous exposure for 192 h, bioconcentration factors (BCF) were determined as 33.65, 26.39 and 193.25 for 0.745 mg·L-1, 0.149 mg·L-1and 0.0149 mg·L-1, respectively. According to "Environmental Safety Evaluation Test Guidelines of Chemical Pesticides" in China, 10 < BCF ≤ 1000, fluopicolide is moderate-enrichment pesticides.

fluopicolide; environmental organisms; acute toxicity; bioconcentration factor

国家十二五科技支撑计划(2011BAE06B02)

林琎(1978-)，女，博士，研究方向为农药环境毒理及安全性评价，E-mail：linjin@sdau.edu.cn；

*通讯作者(Corresponding author)， E-mail: kywang@sdau.edu.cn

10.7524/AJE.1673-5897.20160425002

2016-04-25 录用日期：2016-06-06

1673-5897(2016)6-296-10

X171.5

A

王开运(1954-)，男，教授，博士生导师，主要研究方向为农药学及植物化学保护。

慕卫(1971-)，女，教授，硕士生导师，主要研究方向为农药残留分析及农药环境安全评价。

# 共同通讯作者(Co-corresponding author)， E-mail: muwei@sdau.edu.cn

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