CD147与肿瘤生物学行为及预后关系的研究进展

2016-02-23 01:18蒋志龙
现代中西医结合杂志 2016年18期
关键词:肝细胞肝癌蛋白

金 勇,蒋志龙

(蚌埠医学院附属泰兴市人民医院,江苏 泰兴 225400)



综 述

CD147与肿瘤生物学行为及预后关系的研究进展

金 勇,蒋志龙

(蚌埠医学院附属泰兴市人民医院,江苏 泰兴 225400)

CD147;肿瘤生物学;预后

CD147又名细胞外基质金属蛋白酶诱导因子(EMMPRIN),能刺激邻近成纤维细胞合成基质金属蛋白酶(MMP)-1,还可以合成包括MMP-2、MMP-3以及MMP-9等一系列MMPs家族成员。不同来源的CD147命名方式也不尽相同,在人体内称为basigin,也被称为肝细胞抗原HAb18G;在鼠类和鸡类分别被称为OX47和neurothelin[1]。CD147在人体内分布广泛,可正常表达多器官组织中,但在人类多种恶性肿瘤中表达增高。它能调节MMPs分泌活动、参与肿瘤血管生成以及能和血管内皮生长因子、整合素α3β1和α6β1以及乳酸转运蛋白(MCT1、MCT4)等一些蛋白分子共同作用,参与肿瘤侵袭和转移[2]。

1 CD147结构特点

C147基因位于染色体19P13.3位置,其编码区域编码269个氨基酸残基, 由细胞外区域的185个氨基酸残基、跨膜区域的24个氨基酸残基、c端细胞内区域的39个氨基酸残基及剩余21氨基酸残基构成,其中21氨基酸残基构成信号肽[2]。CD147包括2种主要亚型,分别是CD147 Ig1-Ig2及CD147 Ig0-Ig1-Ig2。前者亚型表达在任何组织细胞中,它的n端序列的细胞外区域包括2个C2-type免疫球蛋白及3个Asn糖基化天冬氨酸序列位点,其中C2-type作用参与MMPs产生,遇到外来信号刺激就被激活分泌到细胞外基质中;而Asn糖基化天冬氨酸序列位点,对此研究者用F糖苷酶处理CD147后可产生分子量28 000~60 000蛋白分子,提示了n端高度糖基化,其程度与MMPs表达成正相关。CD147 Ig1-Ig2亚型c端侧翼区域内存在2个低氧诱导因子结合位点(HIF)[3]。后者特定表达于视网膜细胞内,参与视网膜母细胞瘤的形成[4]。在正常人当中,这2种亚型分别表达于正常组织及视网膜细胞中,由于某些因素使亚型改变即可成转变为致病因素,其中Ig0为特殊结构蛋白区域,其二聚体没有N端糖基化,和Ig1-Ig2一样可单独刺激细胞向机体分泌释放白细胞介素6以及一些促炎性因子,发挥致病作用。然而,Ig0区域蛋白相比Ig1和Ig2不同的是它有自己特殊结合受体,但是目前具体受体未知。另外,磁共振(NMR)研究显示CD147 Ig0-Ig1-Ig2、CD147 Ig1-Ig2和CD147 Ig0它们三者之间并没有直接相互作用的关系,是否存在某种间接关系也不得而知[4]。CD147基因包含1 797个碱基对(1 797 bp),其中上游-142~-112 bp片段区域内含有specificity protein 1(Sp1)、early growth response(EGR-2)以及AP1TFⅡ等结构,在CD147基因转录中起到了至关重要的作用[5]。

2 CD147与肿瘤

2.1 CD147与肿瘤的关系 CD147蛋白广泛存在人体内,在各种致病因素的作用下,CD147结构性能改变进而促进肿瘤的发生。已知CD147在肝癌[6]、大肠癌[7]、胃癌[8]、黑色素瘤[9]等多种肿瘤中高度表达。肿瘤的浸润转移机制主要为细胞外基质(ECM)成分的降解,而MMPs恰好通过降解ECM,破坏了细胞外基质正常结构,促使肿瘤细胞向胞外的浸润和转移。Zhu等[6]通过实时定量逆转录聚合酶链反应(qRT-PCR)和免疫印迹方法研究CD147与肝细胞癌浸润转移关系时,发现HAb18G/CD147是肝细胞癌(HCC)转移的一个重要因素,结果显示分化越差的肿瘤HAb18G/CD147表达越高,肿瘤越容易侵袭。CD147在肿瘤组织、癌旁组织中表达高,而在正常组织中低表达,且表达与肿瘤的分期呈正相关,与肿瘤患者的年龄、性别、肿瘤部位均无显著差异。体外实验中研究人员用小分子干扰RNA(siRNA)转染到恶性黑色素瘤细胞株A375[10]及大肠癌细胞株HT29[11]中去抑制CD147表达,结果均能下调CD147 mRNA的表达水平,抑制了MMPs分泌,阻止肿瘤的增殖、侵袭及转移。这些表明CD147高表达是肿瘤发生发展过程中关键所在。

2.2 CD147在肿瘤中的侵袭、转移机制

2.2.1 CD147刺激产生MMPs和多种物质 肿瘤的侵袭和转移是一个不连续的生物学过程,肿瘤细胞从原发部位穿过ECM浸润周围组织以及通过淋巴管、血管转移到远处。从上述概况已得知多种肿瘤都高表达CD147,通过自分泌、旁分泌等方式分泌MMPs、炎性细胞因子和介质,促进肿瘤侵袭和转移。ECM结构主要由胶原、弹性蛋白、黏着蛋白及蛋白聚糖等组成,MMP-2和MMP-9属于白明胶酶的一类,主要作用降解胶原,裂解ECM。CD147与MMPs的相互作用参与了机体内多种肿瘤的发生发展。在胃癌发生机制中,CD147能够促使肿瘤细胞生长及侵袭,并且主要通过ERK1/2信号通路实现,使MMP-9、MMP-2的分泌活动增加。此时的MMPs肩负了细胞的粘着、迁移、上皮间质转化等职责,并且能够与多种细胞因子、细胞因子受体及趋化因子相互作用,在肿瘤发生时起重要角色,还能调节肿瘤细胞增生和血管形成[12]。研究显示,CD147诱发产生MMP和VEGF等物质,它们之间相互作用可能通过某种机制产生了级联放大效应,增加破骨细胞活性和乳腺癌骨转移能力[13]。在对肝癌细胞中CD147表达水平测定时,当其显著增高会刺激成纤维细胞分泌MMP-2及MMP-9,而用CD147抗体、siRNA或三氧化二砷试剂时MMPs的分泌会减少,肿瘤的侵袭和转移能力随之下降,说明CD147在肝癌的侵袭转移中扮演重要角色,并且通过刺激成纤维细胞分泌MMPs增加它的入侵能力[14]。CD147在乳腺癌中通过刺激成纤维母细胞分泌MMP-2以及与P-糖蛋白、CD44和EGFR三者间相互作用调控肿瘤细胞侵袭。

2.2.2 CD147与其他蛋白相互作用、参与调控 CD147总是与其他蛋白如整合素α3β1和α6β1以及MCT1、MCT4等结合促使肿瘤的侵袭和转移。MCT为单羧酸转运蛋白,主要作用就是降低细胞内由于细胞代谢产生乳酸的含量,使得细胞有赖以生存的微环境,从而降低细胞毒性。而肿瘤的演进过程中细胞增殖代谢速度比正常细胞快许多,这将产生许多代谢产物如乳酸等物质,此时严重威胁细胞自身的生存,这都将有赖于MCT家族。研究表明MCT1、MCT4表达与CD147有关联。已证实CD147在多发性骨髓瘤(MM)细胞和人类多发性骨髓瘤细胞系(HMCLs) 中高度表达,它们之间作用同时需要MCT1和MCT4参与。Walters等[15]用PCR方法分析证实MCT1和MCT4 mRNA在MM细胞和人类MM细胞系中过度表达,在这些表达MCT1和/或MCT4的细胞中同样有CD147表达。免疫印迹显示,用siRNA干扰细胞后,MCT1与CD147表达同时下降,反之亦然。说明在MM发生机制中有MCT1和CD147相互结合、共同作用使细胞扩增及乳酸分泌增加。对Annexin A2(ANXA2) 蛋白研究发现他能与CD147相互作用促进HCC的侵袭和转移,在HCC肿瘤细胞中CD147表达主要通过微囊泡形式释放运至胞外,而ANXA2是钙离子依赖的磷脂结合蛋白,主要能够与质膜相结合,参与这一运输过程。

此外,研究发现miRNA-22能通过直接与CD147的3’非编码区(3’UTR)结合,下调Sp1水平进而抑制CD147表达[16]。Sp1属于转录因子,为锌指结构蛋白家属中的一员,包括Kruppel样转录因子(KLF)家族。Kong等[17]对CD147启动子区域的分析揭示了其存在几个Sp1潜在的转录因子结合位点,通过qRT-PCR及免疫印迹方法证实CD147转录最关键的序列位于基因的-217~+37 bp之间的254 bp中,其中一个Sp1的结合位点对CD147的转录起到至关重要作用;在NCI-H460,95-D,NCI-H446以及NCI-H292肺癌细胞系中若Sp1表达水平增高则会导致CD147上调,反之亦然。说明Sp1可能参与CD147转录监管和调控。

2.2.3 体外实验干扰对CD147调控的影响 许多研究者们在体外实验中通过某种特设条件来调控CD147的表达,并进一步观察它们之间的关系,均获得显著的成果。在胃癌肿瘤细胞研究中,用U0126抑制ERK1/2信号通路后发现CD147表达下调,从而使肿瘤细胞的扩增和侵袭能力均下降,同时MMP-2及MMP-9的活性降低[18]。Zhang等[19]体外实验研究表明在肝癌细胞与成纤维细胞的共同培养系中用si-ANXA2干扰细胞,结果能够有效抑制肝癌细胞侵袭转移能力,同时抑制MMPs分泌。肝细胞癌转移先决条件是要获得失巢凋亡抵抗能力,Ke等[20]研究表明,CD147可以增加细胞失巢凋亡的抵抗能力,进而促进了肝细胞癌的转移能力。用siRNA干扰CD147表达能激活PI3K/Akt信号通路,诱导细胞失巢凋亡,抑制肝细胞肿瘤的浸润转移。Wang等[8]用RNAi抑制胃癌细胞株SGC7091中CD147表达,细胞的增殖侵袭能力下降,在使用抗肿瘤药物如顺铂时,肿瘤细胞对顺铂敏感性增加,说明干扰CD147表达降低肿瘤细胞活性。研究用NF-κB配体的细胞因子受体激活剂(RANKL)处理人类乳腺癌细胞株MDA-MB-231过后,CD147、MMP及血管内皮生长因子(VEGF)表达增高,肿瘤细胞侵袭能力增强,表明乳腺癌溶骨病变可能是通过RANKL通路激活诱导CD147水平升高所致。上述体外实验均表明通过抑制CD147在肿瘤细胞中的表达进而抑制MMPs的表达,最终遏制肿瘤细胞浸润和转移[21],但是CD147在不同肿瘤相互作用时会有不同信号转导途径。

2.2.4 CD147与其他因素共同作用 最近几年的研究进一步发现,恶性肿瘤在综合下因素(外界因素包括环境、饮食、感染、基因突变,内在因素包括细胞的低氧微环境等)影响,其CD147表达水平随之改变,通过一种和/或多种信号传导通路促使肿瘤增殖、侵袭转移。Zhu等[6]研究表明,CD147/HAb18G与肝癌的侵袭转移有关,它与慢性乙肝病毒等因素相互作用参与肝癌发展过程。Sauter等[22]研究表明,在肺癌患者中若危险因素如吸烟量增加,可使胶原酶活性增高细胞黏附能力下降,小分子致癌物质容易侵入细胞内,mRNA稳定遭受破坏,末端的3’侧翼序列突变概率增加,使其结构改变导致病变发生。在黑色素瘤发展过程中若细胞处在低氧微环境下,CD147通过与钙离子信号调节亲环素配体相互作用,参与MMP-2的分泌活动调节[9]。诸多研究表明CD147可通过与多种因素共同作用来调节肿瘤的发生发展、侵袭转移。

2.3 CD147与肿瘤治疗及预后 CD147在肿瘤治疗中作为潜在的治疗靶点,与肿瘤预后有关。CD147可作为多数肿瘤早期阶段分子标记物,可作为肿瘤复发和预后的一个指标。有学者检测子宫内膜癌患者CD147表达水平,发现CD147低表达的患者预后相对较好,而出现肿瘤复发的患者CD147表达水平较高[23]。研究证明CD147与肝癌侵袭程度、淋巴结转移等密切相关,也是肝癌预后评估主要指标[24]。Niu等[25]研究显示,肝细胞癌的预后和多重耐药性与CD147表达密切相关,CD147抗体可能有望成为治疗肝细胞癌治疗有效药物,通过降低MMP-2表达抑制肿瘤生长及转移。临床中已经用CD147单克隆抗体治疗肝细胞癌。CD147还能激活肝星状细胞,它可作为肝纤维化抗体治疗的靶点。此外,CD147可作为药物作用靶点治疗头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)。EDC22是一种细胞外药物,它是CD147单克隆抗体的共轭体,Sweeny等[26]在体内外试验研究中,发现EDC22作为抑制剂能有效抑制HNSCC的细胞增殖。

3 展 望

CD147是高度糖基化的跨膜蛋白质,参与肿瘤血管的形成、肿瘤侵袭转移、治疗及预后等。CD147分泌MMPs、促炎性因子、生长因子以及其他介质,通过降解ECM以及降低细胞黏附力,促使肿瘤细胞侵袭转移。CD147在肿瘤诊断及治疗中可作为肿瘤早期标记物及肿瘤药物作用靶点,并且它的表达与患者预后成负相关,但是由于没有大量的临床试验数据支撑,其疗效及不良反应待定。因此,明确CD147与肿瘤的发生机制及治疗关系显得尤为重要, 能进一步为肿瘤治疗提供新方向。

[1] Choi JW,Kim Y,Lee JH,et al. Prognostic significance of lactate/proton symporters MCT1, MCT4, and their chaperone CD147 expressions in urothelial carcinoma of the bladder[J]. Urology,2014,84(1):245,e9-e15

[2] Yu XL,Hu, T,Du JM,et al. Crystal structure of HAb18G/CD147: Implications for immunoglobulin superfamily homophilic adhesion[J]. J Biol Chem,2008,283(26):18056-18065

[3] Yang H,Zou W,Chen B. Overexpression of CD147 in ovarian cancer is initiated by the hypoxic microenvironment[J]. Cell Biol Int,2013,37(10):1139-1142

[4] Redzic JS,Armstrong GS,Isern NG,et al. The retinal specific CD147 Ig0 domain: From molecular structure to biological activity[J]. J Mol Biol,2011,411(1):68-82

[5] Liang L,Major T,Bocan T. Characterization of the promoter of human extracellular matrix metalloproteinase inducer (EMMPRIN)[J]. Gene,2002,282(1/2):75-86

[6] Zhu S,Li Y,Zhang Y,et al. Expression and clinical implications of HAb18G/CD147 in hepatocellular carcinoma[J]. Hepatol Res,2015,45(1):97-106

[7] Zheng HC,Wang W,Xu XY,et al. Up-regulated EMMPRIN/CD147 protein expression might play a role in colorectal carcinogenesis and its subsequent progression without an alteration of its glycosylation and mRNA level[J]. J Cancer Res Clin Oncol,2011,137(4):585-596

[8] Wang B,Xu YF,He BS,et al. RNAi-mediated silencing of CD147 inhibits tumor cell proliferation, invasion and increases chemosensitivity to cisplatin in SGC7901 cells in vitro[J]. J Exp Clin Cancer Res,2010,29(1):61-69

[9] Zeng W,Su J,Wu L,et al. CD147 promotes melanoma progression through hypoxia-induced MMP2 activation[J]. Curr Mol Med,2014,14(1):163-173

[10] Chen X,Lin J,Kanekura T,et al. A Small Interfering CD147-Targeting RNA Inhibited the Proliferation,Invasiveness, and MetastaticAc tivity of Malignant Melanoma[J]. Cancer Res,2006,66(23):11323-11330

[11] Li R,Pan Y,He B,et al. Downregulation of CD147 expression by RNA interference inhibits HT29 cell proliferation, invasion and tumorigenicity in vitro and in vivo[J]. Int J Oncol,2013, 43(6):1885-1894

[12] Roy R,Yang J,Moses MA. Matrix metalloproteinases as novel biomarkers and potential therapeutic targets in human cancer[J]. J Clin Oncol,2009,27(31):5287-5297

[13] Rucci N,Millimaggi D,Mari M,et al.Receptor activator of NF-kappaB ligand enhances breast cancer-induced osteolytic lesions through upregulation of extracellular matrix metalloproteinase inducer/CD147[J]. Cancer Res,2010,70(15):6150-6160

[14] Xu J,Xu HY,Zhang Q,et al. HAb18G/CD147 functions in invasion and metastasis of hepatocellular carcinoma[J]. Mol Cancer Res,2007,5(6):605-614

[15] Walters DK,Arendt BK,Jelinek DF. CD147 regulates the expression of MCT1 and lactate export in multiple myeloma cells[J]. Cell Cycle,2013,12(19):3175-3183

[16] Kong LM,Liao CG,Zhang Y,et al. A regulatory loop involving miR-22, Sp1 and c-Myc modulates CD147 expression in breast cancer invasion and metastasis[J]. Cancer Res,2014,74(14):3764-3778

[17] Kong LM,Liao CG,Fei F,et al.Transcription factor Sp1 regulates expression of cancer-associated molecule CD147 in human lung cancer[J]. Cancer Sci,2010,101(6):1463-1470

[18] Chen L,Pan Y,Gu L,et al. ERK1/2 signalling pathway is involved in CD147-mediated gastric cancer cell line SGC7901 proliferation and invasion[J]. Exp Biol Med (Maywood),2013,238(8):903-912

[19] Zhang W,Zhao P,Xu XL,et al. Annexin A2 promotes the migration and invasion of human hepatocellular carcinoma cells in vitro by regulating the shedding of CD147-harboring microvesicles from tumor cells[J]. PLoS One,2013,8(8):e67268

[20] Ke X,Li L,Dong HL,et al. Acquisition of anoikis resistance through CD147 upregulation: A new mechanism underlying metastasis of hepatocellular carcinoma cells[J]. Oncol Lett,2012,3(6):1249-1254

[21] 曹敏,卢宁. CD147与MMP-2和MMP-9在乳腺癌中的研究进展[J]. 医学综述,2015,21(7):1209-1211

[22] Sauter W,Rosenberger A,Beckmann L,et al. Matrix metalloproteinase 1 (MMP1) is associated with early-onset lung cancer[J]. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,2008,17(5):1127-1135

[23] Nakamura K,Kodama J,Hongo A,et al. Role of emmprin in endometrial cancer[J]. BMC Cancer,2012,12(1):191

[24] 封兰兰,朱少君,张阳,等. HAb18G/CD147在多种恶性肿瘤中的表达及其临床意义[J]. 细胞与分子免疫学杂志,2013,29(9):958-961

[25] Niu H,Wang R,Cheng J,et al. Treatment of (131)I-labeled anti-CD147 monoclonal antibody in VX2 carcinoma-induced liver tumors[J]. Oncol Rep,2013,30(1):246-252

[26] Sweeny L,Hartman YE,Zinn KR,et al. A novel extracellular drug conjugate significantly inhibits head and neck squamous cell carcinoma[J]. Oral Oncol,2013,49(10):991-997

蒋志龙,E-mail:txjzl@163.com

10.3969/j.issn.1008-8849.2016.18.042

R730.3

A

1008-8849(2016)18-2050-03

2015-11-20

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