姚林华 胡奕 邓中民 张玲 张国新
[摘要] 目的 检查胃癌组织及癌旁组织中HCCR、pERK及pELK1的表达,探讨之间的相关性。 方法 通过免疫组化方法检测60例胃癌及癌旁组织中HCCR、pERK及pELK1的表达情况。 结果 HCCR、pERK及pELK1在胃癌组织中的阳性表达率分别为75.0%(45/60)、73.3% (44/60)及71.7%(43/60),均高于其在癌旁组织中的表达,差异均有统计学意义(P<0.05)。 结论 HCCR、pERK及 pELK1三者之间具有一定的协调表达率,在肿瘤组织中表达明显增高,可用来作为胃癌临床免疫组化的辅助指标。
[关键词] 胃癌;HCCR;pERK;pELK1
[中图分类号] R735.2 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701(2014)24-0001-03
韩国学者KIM首先在人宫颈癌中发现了人宫颈癌基因(human cervical cancer oncogene,HCCR),并在随后的研究中发现在多系统肿瘤中都有过表达,比如消化系统肿瘤、血液系统恶性肿瘤、生殖系统肿瘤等,人恶性肿瘤的发生、发展被认为有多种机制参与,而癌基因在其中作用较大,相关研究发现HCCR在消化系统肿瘤中的早期肝癌及乳腺癌中高表达[1]。那么研究HCCR在肿瘤细胞中的信号表达调控则非常重要,ERK/MAPK信号通路是目前较为常见的肿瘤调控通路,此次检测HCCR、pERK及pELK1相关蛋白在胃癌及癌旁组织中的表达,初步评价三者之间是否存在相关性,为更好的研究HCCR表达调控打好基础。
1 资料与方法
1.1试剂
鼠抗人pERK、pELK1:Cellsiganal公司;鼠抗人HCCR多抗:本实验制备[2];免疫组化试剂盒购自福州迈新公司。
1.2 组织标本
所需组织标本取自2008年12月~2011年9月在南京医科大学附属第一医院,共60例胃癌组织及其相应的癌旁组织,所有组织经病理证实为胃癌及癌旁未浸润,年龄39~81岁,平均(61.2±5.7)岁。所有标本均经4%中性甲醛溶液固定,石蜡包埋。
1.3方法
采用免疫组织化学染色SP法,将切好的组织芯片放置在60℃烘烤箱中,使切片紧密结合,约30 min后进行第二步常规二甲苯脱蜡,梯度酒精脱水,灭活内源性过氧化物酶:3%过氧化氢37℃孵育10 min,PBS冲洗3次,每次5 min;后在压力锅中加热至沸腾0.01M柠檬酸盐缓冲液,以便抗原修复组织芯片,加热使喷气持续2 min,后自然冷却组织芯片,并达20 min 以上,再用冷水冲洗缸子,加快冷却至室温。PBS洗3次,每次放置5 min,后放置4℃孵育一抗过夜,鼠抗HCCR(1∶100)、兔抗pERK及pELK1(1∶100),PBS代替一抗作阴性对照;按照免疫组化SP法完善余下操作。DAB显色5 min左右,三类附有不同一抗的组织芯片在显微镜下掌握染色程度,按照不同的DAB染色时间分别用水冲洗终止显色,并使用苏木素复染15 s,加入0.1%盐酸分化。梯度酒精脱水之后,透明,封片,拍照。结果判断:依照细胞阳性着色程度(抗原含量)可分为:弱阳性(+)为1分;中等阳性(++)为2分;强阳性(+++)为3分。依照阳性细胞数量,可分为:弱阳性(+),指阳性细胞总数25%以下;中等阳性(++),指阳性细胞总数25%~49%;强阳性(+++) ,指阳性细胞总数50%以上。采用积分综合计量,计算公式为:(+)%×1 +(++)%×2+(+++)%×3;总数值<1.0者为(+),1.0~1.5者为(++),>1.5者为(+++)。
1.4 统计学处理
应用SPSS 11.1软件处理,计量资料用均数±标准差(x±s)表示;计数资料用率表示,组间比较用χ2检验,P< 0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 HCCR、pERK及pELK1蛋白在胃癌组织中的表达
HCCR、pERK及pELK1阳性表达主要位于细胞胞膜和胞浆(图1)。HCCR在胃癌组织中阳性表达率为75.0%(45/60),而pERK及pELK1阳性表达率分别为73.3%(44/60)及71.7%(43/60),HCCR的表达略高于另外两项,三者均高于在癌旁组织中的表达(P<0.05)。见表1。
2.2 HCCR、pERK及pELK1表达与患者的临床特点分析
研究发现入组的胃癌患者中男性明显多于女性,但pELK1、HCCR、pERK表达与性别无明显统计学差异。患者的年龄、淋巴结转移与否、肿瘤细胞的分化程度与三种蛋白的表达阳性率无明显差异(表2),三种蛋白在肿瘤中同时阳性表达为53.33%(32/60),提示三者之间具有一定程度的协同表达。
3 讨论
胃癌是常见的消化道肿瘤,目前在各种肿瘤中发病率最高,尤其在我国西北及东部地区,一般发病年龄在50岁以上,但有年轻化的趋势,所以研究胃癌的发病机制,特别是胃癌的早期阶段特异性指标非常重要。HCCR是新近发现的原癌基因之一,它因首先在人宫颈癌中发现而得名,定位于人染色体12q,其分为HCCR-1和HCCR-2两种亚型。对于基因的研究主要涉及在肿瘤组织及肿瘤细胞的表达,对于该基因的功能学特点等方面。对HCCR基因序列的研究发现在启动子区有多个转录因子结合区,比如E2F、ELK1、Barx等,我们的前期研究发现EGF能够使肿瘤细胞中HCCR表达增强,如在胰腺肿瘤细胞中,EGF通过p13K/Akt/mTOR激活HCCR表达,使肿瘤细胞的生物学活性增强,而肿瘤细胞的生物学功能亦加强[3]。而在肝癌细胞中发现,HCCR可以增强肿瘤细胞的增殖及细胞分裂,并且也是通过p13K/Akt通路[4]。一般目前认为肿瘤细胞的应答机制较复杂,往往有几条通路参与,并都占有一定的地位,而且往往不同肿瘤细胞的发生机制亦有差别,对于EGF促进肿瘤细胞的生物学研究较多,比较经典的有ERK(p42/p44 MAPK)信号通路。ERK(p42/p44 MAPK)信号通路要通过几种方式传导:①Ras的激活[5];②Ca2+对受体酪氨酸激酶Ras的激活[6];③蛋白激酶C对ERK通路的活化[7];④G蛋白对ERK的激活[8],ERK1传导引起细胞分化及增殖的信号。
HCCR过表达能够抑制P53基因功能的表达,从而达到致肿瘤效应,进一步的研究发现,HCCR绑定蛋白3能够负向调节p21及Bax,从而影响p53的功能[9]。在早期小细胞肝癌(直径<2 cm)的诊断上,目前临床上常规的检查方法具有一定的局限性,往往造成检出率较低,而肿瘤的治疗关键在于早期诊断,早期治疗,通过使用HCCR与AFP联合检测可以大幅度的提高早期小细胞肝癌的检出率[10]。在食管癌的检测中发现,HCCR在肿瘤组织中高表达,生存期的分析发现,HCCR高表达的食管癌患者预后较低表达的患者差,提示HCCR可作为食管癌患者预后分析的指标[11]。
对于HCCR的启动子区使用生物信息学手段已经找到多种转录因子的结合区,如ELK1等,故可以通过免疫组化的方法找到ELK1、HCCR及pERK表达是否存在相关性,进一步的研究如细胞生物学干预,通过阻断ERK通路是否影响HCCR的表达等,都能够证实ERK通路在HCCR表达中的作用,而对于HCCR表达调控的详细研究,有利于揭示该癌基因的真正特点。此次免疫组织化学检测在胃癌组织中HCCR、pERK及pELK1表达较癌旁组织明显增高,而且存在一定的相关性,提示HCCR的表达调控可能与ERK/ELK1通路有关,我们将进一步研究该通路调节HCCR表达的分子生物学机制。
[参考文献]
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(收稿日期:2014-01-22)
HCCR过表达能够抑制P53基因功能的表达,从而达到致肿瘤效应,进一步的研究发现,HCCR绑定蛋白3能够负向调节p21及Bax,从而影响p53的功能[9]。在早期小细胞肝癌(直径<2 cm)的诊断上,目前临床上常规的检查方法具有一定的局限性,往往造成检出率较低,而肿瘤的治疗关键在于早期诊断,早期治疗,通过使用HCCR与AFP联合检测可以大幅度的提高早期小细胞肝癌的检出率[10]。在食管癌的检测中发现,HCCR在肿瘤组织中高表达,生存期的分析发现,HCCR高表达的食管癌患者预后较低表达的患者差,提示HCCR可作为食管癌患者预后分析的指标[11]。
对于HCCR的启动子区使用生物信息学手段已经找到多种转录因子的结合区,如ELK1等,故可以通过免疫组化的方法找到ELK1、HCCR及pERK表达是否存在相关性,进一步的研究如细胞生物学干预,通过阻断ERK通路是否影响HCCR的表达等,都能够证实ERK通路在HCCR表达中的作用,而对于HCCR表达调控的详细研究,有利于揭示该癌基因的真正特点。此次免疫组织化学检测在胃癌组织中HCCR、pERK及pELK1表达较癌旁组织明显增高,而且存在一定的相关性,提示HCCR的表达调控可能与ERK/ELK1通路有关,我们将进一步研究该通路调节HCCR表达的分子生物学机制。
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(收稿日期:2014-01-22)
HCCR过表达能够抑制P53基因功能的表达,从而达到致肿瘤效应,进一步的研究发现,HCCR绑定蛋白3能够负向调节p21及Bax,从而影响p53的功能[9]。在早期小细胞肝癌(直径<2 cm)的诊断上,目前临床上常规的检查方法具有一定的局限性,往往造成检出率较低,而肿瘤的治疗关键在于早期诊断,早期治疗,通过使用HCCR与AFP联合检测可以大幅度的提高早期小细胞肝癌的检出率[10]。在食管癌的检测中发现,HCCR在肿瘤组织中高表达,生存期的分析发现,HCCR高表达的食管癌患者预后较低表达的患者差,提示HCCR可作为食管癌患者预后分析的指标[11]。
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