99Tcm(CO)3-BPHRGD的制备及正常鼠体内生物分布

2014-09-01 03:29陈宝军罗联哲阳国桂韩振义
核化学与放射化学 2014年2期
关键词:己酸吡啶氨基

卿 晶,陈宝军,罗联哲,阳国桂,洪 业,韩振义,3,胡 骥,*

1.中国原子能科学研究院 同位素研究所,北京 102413;2.原子高科股份有限公司,北京 102413;3.门头沟区食品药品监督管理局,北京 102300

99Tcm(CO)3-BPHRGD的制备及正常鼠体内生物分布

卿 晶1,2,陈宝军1,罗联哲2,阳国桂2,洪 业1,2,
韩振义2,3,胡 骥1,2,*

1.中国原子能科学研究院 同位素研究所,北京 102413;2.原子高科股份有限公司,北京 102413;
3.门头沟区食品药品监督管理局,北京 102300

制备了99Tcm(CO)3-BPHRGD,并进行体内外生物学评价。在pH=7、75 ℃条件下反应30 min,99Tcm(CO)3-BPHRGD的标记率均大于80%,纯化后标记物的放射化学纯度大于98%;体外稳定性实验显示,在37 ℃时,标记物在生理盐水、胎牛血清及半胱氨酸溶液中具有很好的稳定性;正常小鼠体内生物分布数据显示,99Tcm(CO)3-BPHRGD在血液中清除较快,主要通过肝肾代谢。

RGD;99Tcm;整合素αvβ3;生物分布

血管生成(angiogenesis)是恶性肿瘤生长和转移所必需的[1-2]。没有足够的血管,肿瘤就会坏死或凋亡[3]。研究发现,整合素αvβ3在肿瘤新生血管内皮细胞及多种肿瘤细胞表面有高度表达,而在成熟血管内皮细胞中表达很少[3-5],这使得整合素αvβ3已成为肿瘤诊断与治疗的一个重要靶点。RGD肽是含有精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(Arg-Gly-Asp)序列的一类短肽,能与整合素αvβ3受体特异性结合[6],因此,放射性核素标记的含RGD肽的放射性药物备受关注,并应用于肿瘤的诊断与治疗[7-12]。目前以RGD为核心的基础上衍生出多种形式,如环状RGD、多价RGD、糖基化或PEG修饰RGD、螯合剂偶联的RGD、纳米载体的RGD等。

利用90Y、111In、177Lu、99Tcm等核素标记多肽时,需要引入适当的双功能螯合剂,不同的双功能螯合剂会引起标记物体内性质的改变[13]。99Tcm有着优良的物理性质,在放射性药物在临床核医学诊断中占主导地位,其用量约占临床诊断用放射性药物的85%以上。

鉴于99Tcm标记药物在临床应用中的优势,国内外多用99Tcm-HYNIC标记RGD及其衍生物应用于肿瘤的诊断[14-15]。本研究通过对目前研究较多的c(RGDyK)(图1)进行结构修饰,设计并合成6-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸-RGD(BPHRGD)(图1),用[99Tcm(CO)3(H2O)3]+标记,拟得到99Tcm(CO)3-BPHRGD,并进行正常鼠体内外生物学评价。另外,BPHRGD中的3N结构同时也可以与Cu配位[16],因此可制备64Cu-BPHRGD用于PET显像研究。

1 实验材料

1.1实验动物

雌性昆明小白鼠,一级,约25 g,由中国医学科学院肿瘤研究所提供。

1.2试剂及仪器

2,3,5,6-四氟苯酚、N,N′-二环己基羰二亚胺(EDC)、2-氯甲基吡啶盐酸盐,均由美国阿尔法公司提供;半胱氨酸盐酸盐,上海康达氨基酸厂;NaBH4,分析纯,美国百灵威公司;c(RGDyK),纯度99.25%,吉尔生化(上海)有限公司;CO,纯度99.99%,北京市亚南气体有限公司;Na99TcmO4淋洗液,原子高科股份有限公司;甲醇、乙腈,色谱纯,美国Burdick&Jackson公司;其他化学试剂,分析纯,北京化学试剂公司。

RE-52型旋转蒸发仪,上海博通公司;高纯水器,美国Millipore公司;1470自动伽玛计数器,芬兰Perkin Elmer公司;C-18 Sep-Pak色谱柱,美国Waters公司;CRC-15R放射性活度计,美国Capintec公司。ProStar 320型HPLC,美国Varian公司;C18色谱柱,Hypersil ODSφ4.6 mm×250 mm;GABI型高效液相色谱放射性监控仪,德国Raytest公司。

图1 c(RGDyK)与BPHRGD的结构Fig.1 Structure of c(RGDyK) and BPHRGD

2 实验方法

2.1质量控制方法

HPLC法:溶剂A为0.1%三氟乙酸(TFA)/H2O,溶剂B为0.1%TFA/乙腈,流速1 mL/min,紫外检测器波长220 nm。梯度洗脱程序为:0—1 min,0%溶剂B;1—15 min,0%~90%溶剂B;15—16 min,90%溶剂B;16—18 min,90%~0%溶剂B;18—20 min,0%溶剂B。

2.2BPHRGD的合成

BPHRGD的合成路线示于图2。

2.2.16-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸(6-(bis(pyridin-2-ylmethyl)amino)hexanoic acid)的合成[16]取2.624 0 g(0.02 mol)6-氨基己酸溶于30 mL水中,再加入6.889 7 g(0.042 mol)2-氯甲基吡啶盐酸盐和3.2 g(0.08 mol)NaOH,常温搅拌1 d。反应结束后,首先在碱性条件下用20 mL氯仿萃取3次,再用1 mol/L HCl调节水层的pH值为3,再用20 mL氯仿萃取3次,收集酸性萃取层,旋蒸除去溶剂后,得红色的油状物,经柱色谱纯化后得黄色油状物,真空干燥。

2.2.26-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸-(2,3,5,6-四氟)苯酯(2,3,5,6-tetrafluorophenyl 6-(bis(pyridin-2-ylmethyl)amino)hexanoate)的合成[17]取0.130 8 g(0.417 5 mmol)6-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸溶于4 mL二氯甲烷,再加入0.160 1 g(0.835 mmol)1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳酰二亚胺盐酸盐(EDC),常温下震荡30 min后,加入0.104 0 g(0.626 3 mmol)2,3,5,6-四氟苯酚,常温下震荡6 h。反应结束后,旋蒸除去溶剂后,用乙酸乙酯溶解产物,再用饱和Na2CO3洗乙酸乙酯4次,经柱色谱纯化后得黄色油状物,真空干燥。

2.2.3BPHRGD合成 取5 mg RGD溶于1 mLN,N-二甲基甲酰胺(DMF)和30 μL(0.24 mmol)三乙胺中,然后加入10 mg(0.021 7 mmol)6-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸-(2,3,5,6-四氟)苯酯,室温振荡2 h,用油泵抽去溶剂,残留物溶于0.5 mL水中,通过HPLC分离纯化,浓缩后,冻干,冷藏待用。

图2 BPHRGD的合成路线Fig.2 Synthesis of BPHRGD

2.3[99Tcm(CO)3(H2O)3]+中间体的制备

在10 mL青霉素瓶中先加入4 mg Na2CO3,5.5 mg NaBH4,15 mg酒石酸钾钠,然后加入0.5 mL去离子水溶解,密封后通入CO气体15 min,将瓶中空气排净。然后用注射器加入1 mL Na99TcmO4洗脱液(1.85×108~1.85×109Bq),在75 ℃条件下加热反应30 min(图3),冷却至室温后,用1 mol/L HCl调pH=7,用HPLC法分析其放化纯。

2.499Tcm(CO)3-BPHRGD的制备

取3 mL青霉素真空瓶,然后加入30 μL BPHRGD肽的溶液(1 g/L,pH=7)和0.1 mL新鲜制备的羰基锝溶液[99Tcm(CO)3(H2O)3]+,75 ℃下反应30 min(图3),待反应溶液冷却到室温后,用HPLC法分析标记物的标记率,再用C18 Sep-Pak反向萃取柱对标记物进行了纯化,用HPLC法分析标记物放化纯。

2.599Tcm(CO)3-BPHRGD的脂水分配系数测定

取20 μL纯化后的99Tcm(CO)3-BPHRGD,加入到含500 μL正辛醇和480 μL磷酸盐缓冲溶液(PBS,pH=7.4,0.05 mol/L)的EP管中,涡旋混匀30 min后在2 000 r/min条件下离心15 min,分别取100 μL有机相和水相测量放射性计数,计算标记物的脂水分配系数P(有机相计数/水相计数)及lgP。

2.699Tcm(CO)3-BPHRGD的体外稳定性

将标记物分别稀释于生理盐水、10%胎牛血清、0.01 mol/L半胱氨酸溶液中,于37 ℃下放置24 h,分别于1、2、4、6、24 h取样,用HPLC法检测标记物的放射化学纯度。

2.7正常鼠体内生物学分布

取雌性昆明小白鼠16只,随机分组,每组4只。经尾静脉注射0.1 mL标记物(约1.5 MBq,含BPHRGD肽小于1 μg),于注射后10、30、60、240 min断颈处死小鼠,取血、心、肝、脾、肺、肾、胃、肠、肌肉、肾上腺等主要脏器,称重并测量其放射性计数,经衰变校正后,计算每克组织百分注射剂量率(ID%/g),获得标记物在正常小鼠体内生物学分布数据。

3 结果与讨论

3.16-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸(6-(bis(pyridin-2-ylmethyl)amino)hexanoicacid)的合成表征

随着反应的进行,反应液由无色变为红褐色,TLC展开剂为氯仿/甲醇(体积比为9∶1),Rf=0.3。此反应的副产物较多,纯化困难,经柱色谱纯化后得黄色油状物1.13 g,产率为18%。

1H-NMR(400 MHz,CDCl3,δ): 8.55~8.53(d,2H,HPy-6,J=4.9 Hz);7.68~7.64(t,2H,HPy-4,J=7.6 Hz);7.56~7.54(d,2H,HPy-3,J=7.8 Hz);7.19~7.15(t,2H,HPy-5,J=6.1 Hz);3.88(s,4H,HPy-α);2.62~2.58(t,2H,1-CH2,J=7.3 Hz);2.33~2.28(t,2H,5-CH2,J=7.4 Hz);1.64~1.56(m,4H,2-CH2+ 4-CH2);1.35~1.29(m,2H,3-CH2)。MS (ESI):m/z[C18H24N3O2]+(M+H)+,314.18;实测值,314.2。

3.26-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸-(2,3,5,6-四氟)苯酯(2,3,5,6-tetrafluorophenyl6-(bis(pyr-idin-2-ylmethyl)amino)hexanoate)的合成表征

反应通过紫外显色监测反应进程,TLC展开剂为氯仿/甲醇(体积比9∶1),Rf=0.5。经柱色谱纯化后得黄色油状物,干燥称重得0.077 g,产率为40%。

1H-NMR(400 MHz,CDCl3,δ):8.52~8.80(d,2H,HPy-6,J=4.9 Hz);7.67~7.62(t,2H,HPy-4,J=7.6 Hz);7.55~7.53(d,2H,HPy-3,J=7.7 Hz);7.16~7.12(t,2H,HPy-5,J=6.1 Hz);7.02~6.93(m,1H,ArF4H);3.84(s,4H,HPy-α);2.62~2.58(t,2H,1-CH2,J=7.3 Hz);2.61~2.56(t,2H,5-CH2,J=7.5 Hz);1.73~1.65(m,2H,4-CH2);1.64~1.56(m,2H,2-CH2);1.43~1.35(m,2H,3-CH2)。MS(FAB):m/z[C24H24F4N3O2]+(M+H)+,462.18;实测值,462.1。

图3 99Tcm(CO)3-BPHRGD制备路线图Fig.3 Preparation of 99Tcm(CO)3-BPHRGD

3.3BPHRGD的合成表征

为使RGD反应完全,6-(二(吡啶-2-甲基)氨基)己酸-(2,3,5,6-四氟)苯酯应适当过量。此偶联反应迅速,在室温下振荡1.5 h即可反应完全。由于DMF在HPLC中有较强的吸收峰,在用HPLC纯化产物时有很大的干扰,因此应先除去DMF溶剂后再进行纯化。纯化后经冻干得纯度大于99%的白色粉末3.77 mg,产率约为51%。MS(ESI):m/z[C45H63N12O9]+(M+H)+,915.48;实测值,915.1。

3.4[99Tcm(CO)3(H2O)3]+和99Tcm(CO)3-BPHRGD的制备

[99Tcm(CO)3(H2O)3]+的制备方法已经很成熟,在通入足量CO和保证NaBH4不发生潮解的情况下可以高产率地制得。放化纯(RCP)可以达到99%以上。制备完成后将pH值调为中性,常温下,[99Tcm(CO)3(H2O)3]+可稳定放置24 h以上。优化标记条件后,99Tcm(CO)3-BPHRGD的标记率可稳定在80%以上,经C-18 Sep-Pak柱纯化后,标记物放射化学纯度大于98%(图4),纯化后,99Tcm(CO)3-BPHRGD的比活度为3.29×1015Bq/kg(比活度=A·Y/m,其中A为总活度,Y为标记率,m为BPHRGD的投料质量)。

图4 纯化后的99Tcm(CO)3-BPHRGDFig.4 99Tcm(CO)3-BPHRGD purified

3.599Tcm(CO)3-BPHRGD的脂水分配系数

99Tcm(CO)3-BPHRGD的脂水分配系数P=0.227,lgP=-0.644,脂溶性较好,这可能是由于BPHRGD增长了RGD碳链的缘故,这与它们在肝中有较高的摄取值一致。

3.699Tcm(CO)3-BPHRGD的体外稳定性结果

37 ℃下,99Tcm(CO)3-BPHRGD在生理盐水和胎牛血清中具有很高的稳定性(图5)。放置24 h,其稳定性无显著变化,其放化纯始终高于95%。99Tcm(CO)3-BPHRGD的放化纯在半胱氨酸溶液中略有下降,但始终高于90%,表明99Tcm(CO)3-BPHRGD基本不与巯基发生配体交换反应。由于生物体内含有一些游离的巯基化合物,与99Tcm标记物在体内竞争络合,体外竞争稳定性实验结果可以间接反映99Tcm标记物在生物体内的稳定性,由此可推断99Tcm(CO)3-BPHRGD在生物体内比较稳定。

■——生理盐水(Saline),▲——胎牛血清(Serum),▼——半胱氨酸(Cysteine)

3.7正常鼠体内生物分布

表1列出了99Tcm(CO)3-BPHRGD在正常小鼠体内的生物分布数据。由表1可知,99Tcm(CO)3-BPHRGD注入体内10、30、60、240 min后,标记物在血液中的清除较快;肝中的摄取值最高,与标记物具有较高的脂水分配系数一致(lgP=-0.644),说明标记物主要通过肝脏代谢;肾作为药物的代谢产物的主要排泄器官,也有较高的摄取;因此可以判断标记物通过肝脏代谢、肾脏排泄。

4 结 论

本研究工作合成的RGD衍生物BPHRGD能很好地进行[99Tcm(CO)3(H2O)3]+标记,在体外具有很好的稳定性。在一系列标记条件优化实验基础上,99Tcm(CO)3-BPHRGD的标记率达到80%,纯化后标记物的放射化学纯度大于98%,标记物在正常鼠体内分布研究显示,99Tcm(CO)3-BPHRGD在血液中清除较快,主要通过肝肾代谢。在下一步的研究工作中,将通过荷瘤裸鼠实验进一步对99Tcm(CO)3-BPHRGD进行评价,以期研制出适于肿瘤显像诊断的多肽放射性药物。

表1 99Tcm(CO)3-BPHRGD在正常小鼠体内分布Table 1 Biodistribution of 99Tcm(CO)3-BPHRGD in normal mice

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Preparationof99Tcm(CO)3-BPHRGDandBiodistributionEvaluationinNormalMice

QING Jing1, 2, CHEN Bao-jun1, LUO Lian-zhe2, YANG Guo-gui2, HONG Ye1, 2, HAN Zhen-yi2, 3, HU Ji1, 2, *

1.China Institute of Atomic Energy, P. O. Box 275(104), Beijing 102413, China;
2.Atom Hi-Tech Co., Ltd., Beijing 102413, China; 3.Mentougou Food and Drug Administration, Beijing 102300, China

99Tcm(CO)3-BPHRGD was prepared, and theinvitroandinvivobiological evaluations were completed. The labeling yield of99Tcm(CO)3-BPHRGD is more than 80% under optimal conditions(pH=7, reacting at 75 ℃ for 30 min), and the radiochemical purity is more than 98% after purified. Stabilityinvitroexperiments show that the radiolabeled compound shows good stability in physiological saline, fetal bovine serum, and cysteine solution under 37 ℃. The biodistribution of99Tcm(CO)3-BPHRGD in normal mice shows that the metabolic pathways are mainly though liver and kidney with rapid clearance in blood.

RGD;99Tcm; integrin αvβ3; biodistribution

2013-12-20;

2014-02-20

卿 晶(1985—),男,四川内江人,博士研究生,放射性同位素技术专业

*通信联系人:胡 骥(1966—),男,安徽休宁人,博士生导师,研究员,放射性药物化学专业,E-mail: ji_hu@ciae.ac.cn

O615.4

A

0253-9950(2014)02-0086-06

10.7538/hhx.2014.36.02.0086

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