何玉萍,江 湧,何玉珊,许翌嘉
动脉硬化(AS)是动脉血管壁的一种慢性炎症性疾病[1],细胞黏附分子(CAMs)是介导细胞与细胞之间、细胞与细胞基质之间相互黏附的糖蛋白,正常情况下呈低水平表达,在炎性反应刺激下表达明显上调。研究表明,AS处内皮细胞分泌的黏附分子增加,炎性基因的表达也增加[2]。本实验采用单核细胞-内皮细胞(MC-EC)联合培养的方法,观察氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)对人脐静脉内皮细胞(ECV304)CAMs表达的影响,探讨ox-LDL损伤血管内皮细胞(VEC)的作用及机制。
1.1 材料 ECV304细胞株(中山大学细胞库),人类单核细胞系U937(上海细胞生物研究所);RPMI-1640培养液(美国GIBCO);胎牛血清(美国 GIBCO);低密度脂蛋白(LDL,美国SIGMA);单克隆抗体CD106-FITC、CD54-PE、CD62E-PE、CD62P-PE、IgG-PE、IgG-FITC(均是美国PharMingen产品);流式细胞仪:(美国BECKMAN COULTE公司 ALTRA型),四色荧光,配套EXPO 32采集分析软件。
1.2 ox-LDL的制备 将LDL置于含10μmol/L CuSO4的PBS(pH7.2)溶液中,37℃温育24h,再将ox-LDL液置含200 μmol/L EDTA的PBS 4℃中透析24h,超滤除菌后4℃保存备用。
1.3 实验方法
1.3.1 MTT法检测不同浓度ox-LDL对细胞活性的影响细胞以5×104个/mL细胞数接种入96孔培养板,待细胞生长至稳定状态(约24h),分别加入ox-LDL高浓度组(100μg/mL)、中浓度组(50μg/mL)、低浓度组(25μg/mL),正常对照组加等量生理盐水,置于37℃、5%CO2、95%空气的培养箱培养24h后,每孔加入10g/L的 MTT 10μL,培养4h,弃去培养基,每孔加入150μL二甲基亚砜(DMSO),置微量振荡器上振荡10 min,酶标仪(波长570nm)测定吸光值(OD),筛选ox-LDL适宜作用浓度。
1.3.2 ox-LDL对血管内皮细胞黏附分子表达的影响 将ECV304细胞接种于24孔板,待细胞生长至稳定状态(约24 h),加入50μg/mL ox-LDL,对照组加等量生理盐水,置于37℃、5%CO2、95%空气的培养箱中培养,24h后,移去培养液,每孔加入含4×104人类单核细胞系U937细胞培养基细胞悬液,37℃孵育30min,移去培养液,用PBS轻洗2遍,去除未黏附的细胞,用0.25%胰蛋白酶和0.02%EDTA混合液消化收集细胞,测定细胞间黏附分子-1(ICAM-1,CD54)、血管细胞黏附分子-1(VCAM-1,CD106)、E-选择素(CD62E)和P-选择素(CD62P)。
1.4 FCM检测 VCAM-1、ICAM-1、CD62E、CD62P的表达率 收集上述单细胞悬液,PBS洗两次,分别加入CD106-FITC、CD54-PE、CD62E-PE、CD62P-PE单克隆抗体各10 μL,室温避光孵育30min后,PBS洗2遍,流式细胞仪检测,其结果以阳性百分率表示。每份样本均设阴性对照(加相应IgG抗体),以消除本底荧光的影响。
1.5 统计学处理 用SPSS16.0软件进行t检验,数据以均数±标准差(±s)表示。
2.1 MTT检测结果 ox-LDL作用的各组细胞活性均下降,与正常组比较,高、中浓度组有统计意义(P<0.05),而低浓度组无统计意义,提示50μg/mL ox-LDL为适宜的作用浓度。详见表1。
表1 ox-LDL不同浓度作用对内皮细胞ECV304活性的影响(±s)
表1 ox-LDL不同浓度作用对内皮细胞ECV304活性的影响(±s)
与正常组比较,1)P<0.05
组别 n MTT(OD值)正常组10 0.771±0.062低浓度组 10 0.699±0.067中浓度组 10 0.624±0.0301)高浓度组 10 0.589±0.0551)
2.2 ox-LDL对血管内皮细胞黏附分子表达的影响 ox-LDL作用损伤组细胞表面黏附分子VCAM-1、ICAM-1、CD62E、CD 62P表达率均明显增高,与正常组比较有统计学意义(P<0.01)。详见表2。
表2 ox-LDL对ECV304细胞黏附分子表达的影响(±s) %
表2 ox-LDL对ECV304细胞黏附分子表达的影响(±s) %
与正常组比较,1)P<0.05
组别 n VCAM-1 ICAM-1 CD62E CD62P正常组 10 3.66±1.19 50.82±6.62 12.27±1.43 5.54±0.76 ox-LDL损伤组 30 9.77±2.461) 77.62±3.181) 23.59±2.841) 18.96±2.171)
AS是危害人类健康最大的疾病之一,是心脑血管病的主要病理基础,其发病机制复杂,尚未完全阐明。自Ross提出AS发病机制的“损伤反应”学说至今,VCE损伤在AS的形成与发展中的地位日趋受到关注。在AS解剖学证据出现之前已有内皮功能紊乱的表现[3,4],而VEC功能紊乱是AS发病的早期关键性环节[5]。
ox-LDL是AS明确的危险因子,动脉壁中ox-LDL的存在是造成动脉壁持续损伤重要因素之一,ox-LDL可直接损伤内皮细胞,通过信号传导通路改变内皮细胞分泌活性,介导单核细胞对内皮细胞的黏附,导致内皮细胞的损伤[6,7]。人AS的斑块中有ICAM-1的表达,并在AS的病理过程中起重要作用[8]。高血脂患者血中的可溶性的ICAM-1、VCAM-1均升高,认为血中可溶性ICAM-1、VCAM-1是反应动脉粥样硬化的早期变化指标[9]。MC-EC黏附是内皮细胞功能受损而处于激活状态的表现之一,两种细胞黏附不仅是物理接触,而且涉及MC、EC细胞表面诸多分子之间的相互作用,在相互作用过程中两种细胞的功能均发生相应变化,促进细胞CAMs表达,而CAMs介导的炎症细胞与血管内皮细胞的黏附及损伤作用,被认为是AS重要的始动环节,可作为炎症活动的指标[2,10]。本实验采用对 U937- ECV304联合培养的方法,用ox-LDL为诱导损伤因素,FCM进行分析ECV304细胞表面VCAM-1、ICAM-1、E-选择素、P-选择素的表达,探讨ox-LDL致VEC损伤机制;结果显示,ox-LDL促使内皮细胞CAMs表达明显上调,提示ox-LDL在内皮细胞黏附分子合成或诱导过程中扮演了较为重要的角色,ox-LDL刺激诱导内皮细胞CAMs表达增高,而CAMs的高表达,又促进单核细胞黏附于内皮细胞,影响血管内皮细胞功能,参与AS化的形成和发展。
VEC是多种危险因子作用的重要靶器官。Ox-LDL通过介导单核细胞和血管内皮细胞黏附,上调血管内皮细胞CAMs的表达,致内皮细胞功能紊乱,损伤VEC。阻断或抑制ox-LD对内皮细胞功能的损害,能有效预防、治疗心血管疾病的发生、发展。
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